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.2019年4月2日;27(1):294-306.e.5。
doi:10.1016/j.celrep.2019.02.111。

PI3K抑制通过反馈回路激活SGK1以促进基于染色质的ER依赖性基因表达调控

附属公司

PI3K抑制通过反馈回路激活SGK1促进基于染色质的ER依赖基因表达调控

Eneda Toska公司等。 单元格代表. .

摘要

PI3K通路将细胞外刺激整合到磷酸化效应器,如AKT和血清和糖皮质激素调节激酶(SGK1)。我们以前曾报道过PI3K通路通过AKT磷酸化赖氨酸甲基转移酶KMT2D调节乳腺癌中雌激素受体(ER)依赖性转录。在这里,我们发现PI3Kα抑制通过负反馈回路激活SGK1,以促进基于染色质的ER依赖性转录调节。PI3K/AKT抑制剂激活ER,ER通过与启动子直接结合促进SGK1转录。升高的SGK1反过来磷酸化KMT2D,抑制其功能,导致组蛋白H3(H3K4)上赖氨酸4甲基化的丧失,以及ER基因座处的抑制染色质状态,从而减弱ER活性。因此,SGK1通过KMT2D的直接磷酸化调节染色质景观和ER-依赖性转录。这些发现揭示了ER-SGK1-KMT2D信号通路,其目的是通过SGK1对染色质和ER转录输出的编程作用来减弱ER反应。

关键词:AKT;KMT2D;PI3K抑制剂;PI3K途径;SGK1;乳腺癌;染色质调节;雌激素受体。

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数字

图1。
图1.ER通过PI3Kα通路抑制激活SGK
(A) mRNA水平新加坡元1,新加坡元2、和SGK3号机组在激素缺失的MCF7或T47D细胞中用RT-qPCR检测3天,然后用二甲基亚砜、雌激素E2(100 nm)、BYL719(1μM)或E2+BYL71治疗2、4、8、24、48和72小时。数据代表至少三个生物重复。(B) 用于ER和Pol II(pS5)结合的ChIP-qPCR新加坡元1,新加坡元2、和SGK3号机组T47D和MCF7细胞中的启动子。数据表示两个生物重复。(C) ATAC-seq(Toska等人,2017)开放染色质新加坡元1,新加坡元2、和SGK3号机组用BYL719(1μM)处理24小时后,T47D细胞中的启动子。峰值以百万分之一读数(RPM)表示。ATAC-seq数据代表两个生物重复。(D) 使用DMSO或BYL719处理24、32或48小时的T47D细胞中的指示抗体进行免疫印迹。数据代表至少三个生物重复。使用Student t检验计算p值。误差线表示±SD。另见图S1。
图2。
图2.SGK1与KMT2D相互作用并使其磷酸化在体内体外试验
(A)体外用HA-KMT2D野生型(WT)或S1331A作为293T细胞和重组His-SGK1免疫沉淀底物的激酶分析。数据代表了至少三种生物重复。IP,免疫沉淀。EV,空矢量。(B)体外用HA-KMT2D WT或S1331A作为底物和重组His-SGK2进行激酶分析。数据代表至少三个生物重复。(C)体外HA-KMT2D野生型或S1331A底物和重组His-SGK3的激酶分析。数据代表至少三个生物重复。(D) 对转染HA-KMT2D和FLAG-SGK1的293T细胞进行共免疫沉淀试验,并用HA和FLAG抗体进行检测。WCL,全细胞裂解物。数据代表至少三个生物重复。(E) JIMT1细胞中KMT2D和SGK1之间的内源性免疫共沉淀。数据代表两个生物重复。(F) 用靶向SGK1的对照siRNA或siRNA处理MCF7或T47D细胞,并在S1331进行磷酸化KMT2D(pKMT2D)免疫印迹。数据代表两个生物重复。(G) 用DMSO或SGK1抑制剂(SGK1-inh)(10μM)处理的T47D细胞中磷酸化KMT2D(S1331)的免疫印迹。数据代表至少两个生物重复。(H) 测定ATP K的Michaelis-Menten反应使用带有KMT2D(GRGRGRAKSTA)肽的重组谷胱甘肽S-转移酶(GST)标记的全长AKT1或SGK1激酶。数据表示两个生物重复。另请参见图S2。
图3。
图3.SGK1在标准ER靶位点诱导抑制染色质状态
(A) ATAC-seq的MA图显示转染空载体(EV)或组成活性SGK1(S422D)的T47D细胞。x轴表示平均对数2标准化计数(正常C计数),y轴表示对数2折叠变换(log2FC)。红点代表SGK1表达上的显著差异可及位点。(B) EV控制单元和SGK1(S422D)单元中获得或丢失的可访问站点的热图,显示在距峰值中心±5 kb的水平窗口中。(C) 丢失的可接近位点中的富集基序,核激素受体(p=1×10−10)和FOXA1(p=1×10−22). (D) 在SGK1(S422D)表达后失去可访问性的站点,ER ChIP-seq(Toska等人,2017)、ER ENCODE(ENCFF532GWP)、FOXA1 ChIP-seq(Toska等人,2017年)和FOXA1 ENCODE的热图。(E) 染色质可及性区域的ATAC-seq示例与典型ER基因座结合区域的ER ChIP-seq(Toska等人,2017)对齐。峰值表示为百万读(RPM)。ATAC-seq数据代表了一种生物重复。另请参见图S3。
图4。
图4.SGK1降低ER位点KMT2D和H3K4me1/2的占用率
(A) T47D细胞中KMT2D ChIP-qPCR在典型ER靶基因处过度表达空载体(EV)或SGK1(S422D)。使用Student t检验计算p值。误差条表示±SD。数据表示三个生物重复。(B) 表达EV或SGK1(S422D)的T47D细胞中H3K4me1和H3K4me2的热图显示在距峰中心±5 kb的水平窗口中。(C) 表达EV或SGK1(S422D)的T47D细胞中结合峰的平均H3K4me1或H3K4me2读取密度图,显示在距峰中心±5 kb的水平窗口中。(D) 方框图表示T47D细胞中SGK1(S422D)表达时H3K4me1或H3K4me2的平均信号峰值。使用Mann-Whitney检验计算p值。(E) 表达对照或SGK1的T47D细胞中ER位点(ENCODE和ENCFF532GWP)H3K4me1或H3K4me2富集的热图。还显示了从ENCODE(ENCFF845PAS)获得的FOXA1结合,该结合位于距峰中心±5 kb的ER位点。(F) 方框图表示穿过ER位点(ENCODE和ENCFF532GWP)表达SGK1后H3K4me1或H3K4me2峰值的平均信号。使用Mann-Whitney检验测量p值。(G) 方框图显示了在T47D细胞中SGK1过度表达时失去染色质可及性的H3K4me1和H3K4me2峰值的平均信号。使用Mann-Whitney检验计算p值。ChIP-seq数据代表了一种生物重复。另请参见图S4。
图5。
图5.SGK1调节ER-依赖性转录和ER-FOXA1-PBX1调节网络的招募
(A) 过表达空载体(EV)或组成活性SGK1(S422D)的T47D细胞中共享靶基因启动子或增强子区域ER、FOXA1、PBX1和免疫球蛋白G(IgG)控制的ChIP-qPCR。(B) 经DMSO或SGK1-inh抑制剂(10μM)处理24小时后,T47D细胞共享靶基因位点中ER、FOXA1、PBX1和IgG的ChIP-qPCR检测24小时(D)用dCAS9-VP64–2A-GFP-HSF1-P65载体转导的对照EV、SGK1-sg3或SGK1-sg 4 MCF7细胞中候选靶基因的表达。还显示了这些细胞中SGK1的western blot测试。(E) 在接受对照或SGK1 siRNAs和DMSO或E2(100 nM)、BYL719(1μM)或两者处理24小时后,对激素缺失的T47D细胞进行RT-qPCR。使用Student t检验计算p值。误差条表示±SD。所有数据表示至少两个生物重复。另请参见图S5。
图6。
图6.建议的模型:ER-依赖性转录的反馈抑制
PI3Kα介导ER上调新加坡元1转录,导致SGK1蛋白水平升高。SGK1升高反过来直接磷酸化KMT2D,削弱其功能,导致H3K4me1/2占用率和ER位点的整体损失,ER-FOXA1-PBX1调控网络与共享位点的结合减少,导致ER靶基因表达下调。

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