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.2019年1月21日;10(1):70.
doi:10.3390/genes10070。

外显子开关调节微RNA对动脉粥样硬化进展中Cd34转录物的差异性连接

附属公司

外显子开关调节微RNA对动脉粥样硬化进展中Cd34转录物的差异性连接

米盖尔·休索等。 基因(巴塞尔). .

摘要

背景:CD34型内皮祖细胞(Endothelial Progenitor Cells,EPCs)在受损内皮细胞的恢复中起着重要作用,并参与动脉粥样硬化(ATH)的发病机制。之前我们描述了miR-125的潜在致动脉粥样硬化作用,我们在本研究中旨在证实这一作用。

方法:采用微阵列杂交、TaqMan低密度阵列(TLDA)卡、qPCR和免疫组织化学(IHC)分析miRNAs、蛋白质和转录物的表达。

结果:在这里,我们已经证明,在ATH进展期间,人和小鼠主动脉组织中的常驻CD34阳性细胞增加,并且在人ATH主动脉的内膜和外膜中存在成簇的CD34阳性的细胞。我们引入与miR-125共享种子序列的miR-351作为CD34的潜在效应器。我们在小鼠第8外显子的内部/隐秘剪接位点显示剪接事件抄送34调控miRNAs(包括miR-125)对编码区或3'UTR的差异加入的基因(外显子开关)抄送34.

结论:我们引入了新的ATH进展的潜在介质(CD34细胞簇,miR-351),并提出了一种新的miRNA作用机制,该机制与靶基因中的一个隐秘剪接位点相连,可以调节miRNA对同源结合位点的差异加入。

关键词:CD34细胞簇;CD34隐性剪接;ORF miRNA靶点;动脉粥样硬化;外显子开关;miR-125b。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突

数字

图1
图1
ATH进展中小鼠miR-125a/miR-125b-1/miR-125b2基因簇的结构和表达。(A类)三个miRNA基因簇的图解。miRNA基因位置(相对位置)取自Ensembl基因组浏览器[36]。miR-125a的集合代码为ENSMUSG00000065479,miR-125b-1的集合代码是ENSMUSG100000093354,miR-125 b-2的集合代码则是ENSMusG00000065772。仅显示miRNA基因,没有显示其他编码/非编码基因。图形(基因组区域和基因框)不是按比例绘制的,每个簇的比例不同(参见染色体中绝对位置的编号)。右边的数字表示每个图形所覆盖的基因组序列的数量。(B类)miR-125a/miR-125b-1/miR-125b-2之间的同源性。图中显示了成熟miRNAs的序列。(!)代表同源核苷酸,而(.)代表删除的核苷酸。下划线为种子序列。(C类)小鼠miR-125a、miR-125b和U6-snRNA(作为标准化因子)在对照组、用对照SC-siRNA治疗的小鼠(24W,ATH进展)和用特异性抗CD40 siRNA治疗的鼠(siRNA治疗,24W)的基础样本(8W)中的绝对表达(无标准化)。所示为每个样本的Cts。表达数据是从原始Taqman低密度阵列卡(TLDA)实验中提取的[25]。
图2
图2
人主动脉组织中CD34阳性细胞的检测。按照材料和方法中的描述,分离、切片、制备用于IHQ分析的整个人类动脉,并对CD34进行染色。(A类,B类)所示为两种不同新生内膜的代表性图像,抗CD34染色,不同放大倍数(3A为20×,3B为40×)。中的圆圈(A类)显示了一簇CD34阳性细胞,箭头在(B类)CD34染色显示±±个成纤维细胞阳性。组织用血-伊红染色。棒材为100μm。(C类)正常切片(非病变)的人体主动脉组织的代表性图像,显示内膜和肌肉层(垂直箭头),并进行抗CD34染色。组织用血卟啉-伊红进行复染。棒材为100μm。(D类)人类外膜抗CD34染色的代表性图像。中的圆圈(D类)显示CD34阳性细胞簇。组织用血卟啉-伊红进行复染。棒材为100μm。(E类)的表达式CD34型qPCR检测人类ATH斑块与正常腹主动脉的mRNA。(F类)的表达式CD34型与非CKD患者相比,CKD患者主动脉壁正常组织中的mRNA表达。
图2
图2
人主动脉组织中CD34阳性细胞的检测。如材料和方法中所述,分离、切片、制备全人类动脉用于IHQ分析并对CD34进行染色。(A类,B类)所示为两种不同新生内膜的代表性图像,在不同放大倍数下(3A为20倍,3B为40倍)进行抗CD34染色。中的圆圈(A类)显示了一簇CD34阳性细胞,箭头在(B类)CD34染色显示±±个成纤维细胞阳性。组织用血-伊红染色。棒材为100μm。(C类)正常切片(非病变)的人体主动脉组织的代表性图像,显示内膜和肌肉层(垂直箭头),并进行抗CD34染色。组织用血卟啉-伊红进行复染。棒材为100μm。(D类)人类外膜抗CD34染色的代表性图像。中的圆圈(D类)显示CD34阳性细胞簇。组织用血卟啉-伊红进行复染。棒材为100μm。(E类)的表达式CD34型qPCR检测人类ATH斑块与正常腹主动脉的mRNA。(F类)的表达式CD34型与非CKD患者相比,CKD患者主动脉壁正常组织中的mRNA表达。
图3
图3
检测小鼠主动脉血管周围组织中的CD34阳性细胞。按照材料和方法中的描述,分离、切片、制备ApoE-缺陷小鼠的主动脉,并对其进行CD34染色,将用打乱的(SC)siRNA处理24周作为对照,或用抗CD40特异性siRNA处理也处理24周。(A类,B类)显示SC-siRNA对照中单个CD34阳性细胞的代表性字段(箭头)(A类)或在抗CD40特异性siRNA中(B类). 组织用血-伊红染色。棒材为100μm。(C类)对接受上述治疗的ApoE缺陷小鼠的PVAT、主动脉内膜和外膜中CD34阳性细胞进行定量。两名不同的研究人员共检查了10个视野,结果表示为CD34阳性细胞占视野中嗜酸性粒细胞阳性细胞核总数的百分比。
图4
图4
小鼠的结构和表达抄送34遗传位点及其与miR-125和其他miRNAs的相互作用。(A类)小鼠示意图抄送34基因。外显子由彩色方框表示,基因间区域由实线表示,剪接事件由点线表示。仅显示外显子6、7和8。前外显子X在此显示为外显子8的“a”部分(见正文)。图中还显示了外显子8处的两个终止密码子(TGA1、TGA2)以及内部/隐秘剪接位点(I/CSS(英文))在外显子8a/b的虚拟接合处。编号指的是NCBI参考序列中的位置:NC_000067.6。按比例绘制(1cm=100bp)。(B类)显示这两者的图表抄送34转录物起源于外显子8的内部/隐秘剪接事件。编码区域用彩色方框表示,而3'UTR用白色条表示。还显示了两个终止密码子(大写的活性密码子)、内部/隐蔽剪接位点和靶向扫描小鼠在3’UTR预测的miRNA结合位点抄送34转录变体1。问号下显示了转录变体2编码区等效位置的结合位点。编号是指转录本的Genbank登录号。按比例绘制(1cm=100bp)。的信号群代码抄送34-TV1:ENSMUST00000110815。的信号群代码抄送34-TV2:ENSMUST00000016638。(C类)图中显示了CD34转录变体1和2(TV1、TV2)编码的两种不同蛋白质。图中显示了两种蛋白质亚型的糖基化N末端胞外域(Nt)、跨膜域(TM)和不同C末端域(Ct)。蛋白激酶C磷酸化位点标记在TV2中。编号是指成绩单的Genbank登录号(见B)。按比例绘制(1cm=100Aa)。PM代表质膜。
图5
图5
的详细结构抄送34预测的miRNA结合位点所在的区域。(A类)3'端1 kb序列图抄送34图中显示了两个终止密码子(TGA1和TGA2)的位置、内部/隐秘剪接位点(I/CSS)和miRNA结合位点的位置。Expanded是70 bp的序列,它集中了miRNA结合位点。框中显示了miRNAs的种子序列以及miR-125和miR-351的比较。(B类)靶向miRNAs的表达抄送34在不同的实验条件下。将数据归一化为U6-snRNA后显示。从原始Taqman低密度阵列卡(TLDA)实验中提取的表达数据[25]。(*)只能分析一个样品。

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