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.2019年1月4日;8(1):3.
doi:10.1038/s41389-018-0112-0。

组蛋白去甲基酶KDM6B通过促进分化在神经母细胞瘤中具有抗肿瘤功能

附属公司

组蛋白去甲基酶KDM6B通过促进分化在神经母细胞瘤中具有抗肿瘤功能

利群·杨等。 肿瘤发生. .

摘要

诱导分化是高危神经母细胞瘤的一种治疗策略,神经母细胞瘤是一种儿童交感神经系统癌症。神经母细胞瘤分化需要神经元基因的转录上调。这一过程是如何在表观遗传水平上进行调控的,目前尚不清楚。在这里,我们报道组蛋白H3赖氨酸27脱甲基酶KDM6B是神经母细胞瘤细胞分化的表观遗传激活剂。KDM6B mRNA在低分化高危神经母细胞瘤中表达下调,在分化肿瘤中表达上调,KDM6B高表达可预测神经母细胞癌患者更好的生存率。在神经母细胞瘤细胞系中,KDM6B缺失促进细胞增殖,而KDM6B过度表达诱导神经元分化并抑制细胞增殖和肿瘤发生。从机制上讲,KDM6B通过去除抑制性染色质标记组蛋白H3赖氨酸27三甲基化,表观遗传学激活神经元基因的转录。此外,我们发现KDM6B在维甲酸-HOXC9轴下游诱导神经母细胞瘤细胞分化中发挥作用:KDM6B的表达通过HOXC9被维甲酸上调,并且KDM6B-是HOXC9-诱导神经母公司瘤细胞分化所必需的。最后,我们证明KDM6B与HOXC9相互作用以靶向神经元基因进行表观遗传激活。这些发现确定了KDM6B依赖的表观遗传学机制在控制神经母细胞瘤细胞分化中的作用,为减少组蛋白H3赖氨酸27三甲基化提供了理论基础,以此作为加强高危神经母细胞癌分化治疗的策略。

PubMed免责声明

利益冲突声明

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数字

图1
图1。KDM6B系列神经母细胞瘤患者的表达与预后不良相关。
c(c)基因芯片检测小鼠神经母细胞瘤球形细胞中Kdm6b表达下调(),qRT-PCR(b条,误差条,s.d。,n个 = 3) 和免疫印迹(c(c))与原代肿瘤细胞比较。α-微管蛋白水平显示为负荷控制(c(c)). 使用双尾Student’s分析数据t吨-测试。d日e(电子)KDM6B系列神经母细胞瘤患者无事件生存率降低与表达相关(d日),高危神经母细胞瘤(e(电子),左面板)和肿瘤的晚期(e(电子),右侧面板)。患者数据分析(d日e(电子))在线进行(R2基因组学分析和可视化平台),并进行结果图和对数秩检验(d日)和学生的t吨-测试(e(电子))第页已下载个值**第页 < 0.01***第页 < 0.001
图2
图2。KDM6B抑制神经母细胞瘤细胞的增殖和致瘤性。
BE(2)-C细胞中HA标记KDM6B过度表达的免疫印迹分析。α-微管蛋白水平显示为负荷控制。b条c(c)人神经母细胞瘤细胞系的生长曲线(b条)和小鼠神经母细胞瘤球形细胞系(c(c))具有或不具有通过台盼蓝排除测定获得的HA标记的人KDM6B的过表达。d日BE(2)-C和SK-N-AS细胞的异种移植试验,无(载体控制)或HA标记KDM6B过度表达。肿瘤重量通过散点图进行分析,水平线表示平均值(n个 = 6). 使用双尾Student’s分析数据t吨-使用测试第页指示的值。e(电子)(f)定量RT-PCR(e(电子))和免疫印迹((f))在感染对照组(shGFP)或表达shKDM6B的慢病毒7天后,分析BE(2)-C细胞中KDM6BmRNA和蛋白的表达。值(e(电子))对应于三个技术重复±s.d.的平均值,并且是两个独立实验的代表。α-微管蛋白水平显示为负荷控制((f)).感染表达shGFP(对照)或shKDM6B慢病毒的人神经母细胞瘤细胞系的生长曲线。所有细胞生长数据(b条,c(c),)对应于四个技术重复±标准差的平均值,并代表至少两个独立实验。数据通过双向方差分析进行分析第页指示的值
图3
图3。KDM6B诱导神经母细胞瘤细胞向神经元分化。
BE(2)-C和SH-SY5Y细胞的相位对比图,无(载体控制)或HA标记的KDM6B或KDM6B-H1390A过度表达。b条qRT-PCR分析GFRA3、NEFM、和房地产税BE(2)-C和SH-SY5Y细胞中的mRNA表达没有(载体控制)或HA标记的KDM6B或KDM6B-H1390A过度表达。误差线代表s.d(n个 = 3). 数据由双尾Student’s分析t吨-测试。c(c)免疫印迹分析BE(2)-C和IMR32细胞中NEFM水平,无(载体控制)或HA标记的KDM6B或KDM6B-H1390A过度表达。NEFM水平根据α-微管蛋白进行量化,并表示为载体控制细胞中NEFM含量的分数。d日e(电子)KDM6B的ChIP-qPCR分析(d日)和H3K27me3(e(电子))启动子区的水平NEFM公司在BE(2)-C细胞中没有(载体控制)或HA标记的KDM6B过度表达。数据对应于三个技术重复±s.d.的平均值,并且代表了两个独立的ChIP实验。数据由双尾Student’s分析t吨-测试***第页 < 0.001
图4
图4。维甲酸诱导KDM6B系列通过HOXC9。
b条定量RT-PCR()和免疫印迹(b条)载体(DMSO)或5处理的BE(2)-C细胞中指示基因的mRNA和蛋白表达分析指示时间的µM RA。β-肌动蛋白水平显示为负荷控制(b条).c(c)qRT-PCR分析HOXC9型KDM6B系列感染表达shGFP或shHOXC9的慢病毒并用二甲基亚砜或5µM RA持续7天。d日e(电子)qRT-PCR分析KDM6A系列KDM6B系列mRNA表达(d日)KDM6B和HOXC9蛋白表达的免疫印迹分析(e(电子))在缺乏强力霉素(Doxy)的情况下诱导HOXC9表达的BE(2)-C细胞中。所有qRT-PCR数据均以平均值±标准差表示(n个 = 3). α-微管蛋白水平显示为负荷控制(e(电子)).(f)HOXC9水平的ChIP-qPCR分析KDM6B系列在没有Doxy的情况下诱导表达Myc-tagged HOXC9的BE(2)-C细胞中的位点。数据对应于三个技术重复±s.d.的平均值,并且代表了两个独立的ChIP实验。所有数据均由双尾Student’s分析t吨-测试***第页 < 0.001
图5
图5。KDM6B是HOXC9诱导的神经元分化所必需的。
b条定量RT-PCR()和免疫印迹(b条)感染表达shGFP或shKDM6B慢病毒的BE(2)-C和SK-N-DZ_tetoff-myc-HOXC9细胞KDM6BmRNA和蛋白表达分析。误差线代表s.d(n个 = 3). α-微管蛋白水平显示为负荷控制(b条).c(c)表达shGFP或shKDM6B-36的BE(2)-C和SK-N-DZ_tetoff-myc-HOXC9细胞的生长曲线,这些细胞在Doxy存在或不存在的情况下培养指定时间。数据对应于四个技术重复±标准差的平均值,并代表至少两个独立实验。数据通过双向方差分析进行分析第页指示的值。d日qRT-PCR分析GFRA3、NEFM、和房地产税表达shGFP或shKDM6B-36的BE(2)-C_tetoff-myc-HOXC9细胞的mRNA表达,这些细胞在存在或不存在强力霉素(Doxy)的情况下培养9天。数据由双尾Student’s分析t吨-测试***第页 < 0.001
图6
图6。KDM6B与HOXC9相互作用,以靶向神经元基因进行表观遗传激活。
基因启动子区HOXC9、KDM6B和H3K27me3水平的ChIP-qPCR分析NEFM公司BE(2)-C_tetoff-myc-HOXC9细胞,在没有Doxy的情况下培养6天。b条基因启动子区KDM6B水平的ChIP-qPCR分析NEFM公司在BE(2)-C细胞中,HA标记的KDM6B过度表达,没有(shGFP)或被shHOXC9-9敲除HOXC9。所有ChIP-qPCR数据均对应于三个技术重复±s.d.的平均值,并代表了两个独立的ChIP实验。数据由双尾Student’s分析t吨-测试***第页 < 0.001.c(c)Co-IP显示HOXC9与BE(2)-C_tetoff-myc-HOXC9细胞中内源性KDM6B的相互作用。IgH免疫球蛋白重链
图7
图7。HOXC9-KDM6B协同RA诱导神经母细胞瘤细胞神经元分化的模型。
RA诱导HOXD8,进而转录激活HOXC9表达。HOXC9随后激活KDM6B系列通过去除抑制性染色质标记H3K27me3,转录并与KDM6B相互作用靶向神经元基因进行表观遗传激活

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