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.2019年2月28日;47(4):2056-2074.
doi:10.1093/nar/gky1241。

冠状动脉疾病相关tRNAThre突变改变线粒体功能、凋亡和血管生成

附属公司

冠状动脉疾病相关tRNAThre突变改变线粒体功能、凋亡和血管生成

贾紫东等。 核酸研究. .

摘要

线粒体tRNA突变的组织特异性在很大程度上尚不清楚。在本研究中,我们证明了tRNAThre 15927G>A突变的有害作用,该突变有助于冠心病的发病机制。m.15927G>A突变消除了tRNAThre反密码子茎的高度保守的碱基配对(28C-42G)。通过分子动力学模拟,我们发现m.15927G>A突变导致了不稳定的tRNAStr结构,这是由熔融温度降低和突变tRNA电泳迁移速度变慢所支持的。通过将一个携带m.15927G>a突变的中国家系线粒体和一个对照基因转移到线粒体DNA(mtDNA)缺失的人脐静脉内皮细胞中构建的杂交细胞,我们证明m.15927G>a突变导致氨酰化效率和tRNAThre稳态水平显著降低。tRNAThre代谢异常导致mtDNA-编码多肽的可变减少、呼吸缺陷、膜电位降低和活性氧生成增加。m.15927G>A突变促进了细胞凋亡,表现为细胞色素c向胞浆中的释放增加,凋亡激活蛋白:半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3、7、9和PARP水平增加。此外,在突变杂交中观察到较低的伤口愈合细胞和扰动的管形成,表明血管生成发生改变。我们的发现为冠状动脉疾病的病理生理学提供了新的见解,这种疾病表现为tRNAThr突变诱导的改变。

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图1。
图1。
野生型和突变tRNA反密码干环的MD模拟. (A类)人线粒体tRNA的三叶结构(27–29).箭头指示m.15927 G>A突变的位置。(B类)野生型(黑线)和突变型(红线)tRNA的所有Cα原子的均方根偏差(RMSD)值的时间演变. (C类)从tRNA野生型(黑线)和突变型(红线)反密码子干环的主干原子生成RMSF曲线. (D类)野生型(棕色)和突变型(蓝色)tRNA反密码干环三级结构示意图.
图2。
图2。
体外构象、稳定性和t的分析6tRNA的A37修饰. (A类)变性和自然条件下通过PAGE分析评估构象变化。野生型(WT)和突变型(MT)tRNA的转录物通过天然或变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,用溴化乙锭染色。(B类)天然条件下tRNAs的Northern blot分析。将来自不同细胞系的两微克线粒体总RNA通过天然聚丙烯酰胺凝胶电泳,电印迹,并与特异于tRNA的DIG标记的寡核苷酸探针杂交,tRNA谷氨酸,tRNA伊斯和tRNA遇见分别为。(C类)WT和MT tRNA的熔化曲线在260nm处以1°/min的升温速率从25°到95°测量转录物(红色曲线)。一阶导数(dA类/d日T型)显示了温度曲线,以突出显示T型值转换(绿色曲线)。(D类)体外t的测定6A37改装。未修饰的人类线粒体野生型(G42)和突变型(A42)tRNA生成自在体外转录。未经修饰的tRNA转录物与酵母Sua5和Qri7在[14C] 苏氨酸。分别在5、10、15或20分钟后取出样品并停止。从反应的初始阶段计算相对改性效率。计算基于三个独立的测定。图表显示了典型实验的结果。
图3。
图3。
变性条件下线粒体tRNA的Northern印迹分析。(A类)通过变性聚丙烯酰胺凝胶电泳不同细胞系的两微克线粒体总RNA,电印迹,并与针对tRNA的DIG标记寡核苷酸探针杂交,tRNA赖氨酸,tRNA谷氨酸,tRNA亮氨酸(CUN)和tRNA序列(AGY)分别为。(B类)tRNA水平的量化。平均tRNA每个细胞的含量,归一化为tRNA每个细胞的平均含量赖氨酸,tRNA谷氨酸,tRNA亮氨酸(CUN)和tRNA序列号(AGY)来自一名携带m.15927 G>A突变的受试者(IV-3)的三个杂交细胞系和来自同一mtDNA单倍型群(B5)但缺乏该突变的一名中国对照个体(HZC25)的三种杂交细胞系。杂交细胞系的值表示为对照细胞系平均值的百分比。计算基于三个独立的测定。误差条表示平均值的两个标准误差,水平虚线表示每组的平均值。P(P)根据t吨-突变体和对照杂交细胞系之间的差异测试。
图4。
图4。
氨酰化分析。(A类)体外转录的人线粒体突变体和野生型tRNA的氨酰化未修饰的人类线粒体野生型(G42)和突变型(A42)tRNA与人类TARS2在[14C] 苏氨酸。分别在5、10、15或20分钟后取出样品并停止。从反应的初始阶段计算相对氨基酰化效率。计算基于三个独立的测定。图表显示了典型实验的结果。(B类)体内氨酰化分析。在酸性条件下,通过酸性(pH 5.0)10%聚丙烯酰胺/8M尿素凝胶在4°C下对从不同细胞系纯化的2微克线粒体总RNA进行电滋养,电印迹并与针对tRNA的DIG标记寡核苷酸探针杂交然后剥离印迹,并用tRNA特异性探针重新杂交伊利,tRNA亮氨酸(CUN)和tRNA序列(AGY)分别为。(C类)氨酰化tRNA的比例在突变体中,控制杂交细胞系和HUVEC。计算基于三个独立的测定。图3的图例中解释了图形细节和符号。
图5。
图5。
线粒体蛋白质的Western blot分析。(A类)将来自不同细胞系的5微克总线粒体蛋白通过变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,电印迹,并与突变细胞系、对照细胞系和HUVECs中的9个呼吸复合物亚基杂交,其中TOM20作为负载对照。ND1、ND3、ND4、ND5和ND6表示还原烟酰胺腺嘌呤二核苷酸脱氢酶的亚基1、3、4、5和6;CYTB,脱细胞色素b条; 合作2,细胞色素亚基IIc(c)氧化酶;ATP6和ATP8,H的亚单位6和8+-ATP酶。(B类)线粒体总蛋白水平的量化。HUVEC和六个杂交细胞系的线粒体蛋白质水平如其他地方所述(22–24)。突变杂交细胞系的数值表示为对照细胞系数值的百分比。计算基于三个独立的测定。(C类)9种多肽水平的量化。HUVEC和6个杂交细胞系中ND1、ND3、ND4、ND5、ND6、CYTB、CO2、ATP6和ATP8的水平如其他地方所述(22–24)。图3的图例中解释了图形细节和符号。
图6。
图6。
OXPHOS亚基的Western blot分析。(A类)通过变性聚丙烯酰胺凝胶电泳来自不同细胞系的20微克总细胞蛋白,电印迹并与针对每个OXPHOS复合物亚基的抗体鸡尾酒杂交,以β-肌动蛋白作为负荷控制。(B类)ATP5A、UQCRC2、SDHB、CO水平的量化2突变细胞系和对照细胞系中NDUFB8的测定如别处所述(52)。图3的图例中解释了图形细节和符号。
图7。
图7。
呼吸分析。(A类)O的分析2在不同的细胞系中使用不同的抑制剂。首次测量2×10的耗氧率(OCR)4每个细胞系的细胞在基础条件下,然后在指定的时间连续添加寡霉素(1.5μM)、FCCP(0.8μM),鱼藤酮(3.0μM)和抗霉素A(1.5μM),以确定线粒体功能的不同参数。(B类)图中显示了HUVEC、突变和对照细胞系中的基础OCR、ATP-连锁OCR、质子泄漏OCR、最大OCR、储备容量OCR和非线粒体OCR。基础OCR测定为寡霉素前OCR减去鱼藤酮/抗霉素A后OCR。质子泄漏OCR被确定为基础OCR减去ATP-连锁OCR。最大OCR被确定为FCCP后的OCR减去非线粒体OCR。储备容量OCR定义为FCCP后最大OCR减去基础OCR之间的差异。鱼藤酮/抗霉素A治疗后,非线粒体OCR被确定为OCR。显示了每个细胞系6次测定的平均值。图形细节和符号在图3的图例中进行了说明。
图8。
图8。
线粒体膜电位分析。使用荧光探针JC-10分析系统,通过BD-LSR II流式细胞仪系统测量突变和对照杂交细胞系的线粒体膜电位(ΔΨm)。记录Ex/Em=488/590 nm和488/525 nm荧光强度的比值(FL590/FL525),以确定每个样品的ΔΨm水平。H25-03和IV-3-13的流式细胞术图像(A类)和(C类)FCCP公司。Ex/Em=490/530 nm和490/590 nm时JC-10荧光强度的相对比值(B类)缺席和(D类)存在10μM的FCCP。图3的图例中解释了图形细节和符号。
图9。
图9。
线粒体活性氧的测定。含或不含H的生命细胞中ROS生成水平之间的几何平均强度比率2O(运行)2刺激。采用BD-LSR II流式细胞仪系统,利用线粒体红超氧化物指示剂分析了三个突变杂交细胞系、三个对照细胞系和HUVEC的线粒体ROS生成速率。流式细胞术直方图显示H25-03(红色)和IV-3-13(绿色)的MitoSOX-红色荧光,无(A类)或使用(C类)H(H)2O(运行)2刺激。荧光强度的相对比值(用H刺激与未刺激2O(运行)2)计算结果:(B类)和(D类). 图3的图例中解释了图形细节和符号。
图10。
图10。
细胞凋亡分析。(A类)细胞色素的分布c(c)用细胞色素进行免疫荧光标记,从对照杂交细胞株(H25-03)、突变杂交细胞系(IV-3-13)和HUVEC中观察到c(c)通过共聚焦荧光显微镜分析与Alex Fluor 488(绿色)缀合的抗体。用红色和蓝色荧光分别鉴定线粒体和DAPI染色细胞核。(B类)通过变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,电印迹,并与细胞色素杂交,对来自不同细胞系的20个总蛋白微结构进行电泳c(c)以β-肌动蛋白作为负载对照的抗体。(C类)细胞色素定量c(c)水平。细胞色素水平c(c)对照和突变细胞系如别处所述进行测定(53)。计算基于每个细胞系中的三个独立测定。(D类)通过变性聚丙烯酰胺凝胶电泳不同细胞系的20微克总蛋白,电印迹,并与裂解的PARP、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3、7和9抗体杂交,以β-肌动蛋白作为负荷对照。(E类)四种凋亡激活蛋白的定量。如别处所述,测定不同细胞系中半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶9、3、7和PARP的水平(52)。计算基于每个细胞系中的三个独立测定。图3的图例中解释了图形细节和符号。
图11。
图11。
伤口愈合试验。(A类)三个对照细胞系和三个突变杂交细胞系伤口愈合试验的代表性图像。抓伤后立即和受伤后24小时直接拍照。轮廓显示伤口的间隙区域。比例尺,100μm。(B类)伤口愈合率的量化。如别处所述,在受伤后24小时进行细胞迁移的定量测量(53)。计算基于每个细胞系中3-4个独立测定。图3的图例中解释了图形细节和符号。
图12。
图12。
试管形成试验。电池(1×105)从三个对照组和三个突变杂交细胞中培养出细胞,用培养基重新悬浮,并将其装载在Matrigel顶部。在37°C下培养12小时后,在倒置显微镜下直接分析每个孔的试管形成。(A类)三个对照杂交种和三个突变杂交种在Matrigel上电镀16小时后形成试管的代表性光学显微照片(B类)使用血管生成分析仪(ImageJ)分析显微照片,用不同的颜色标记肾小管网络的不同结构,代表其自身特征:主节段(橙色)、网格(天蓝色)、由连接符号包围的节点(红色被蓝色包围)和分支(绿色)。(C类)用ImageJ血管生成分析仪定量分析毛细血管形成的特定参数。这些参数包括总管长度、节点数、连接数、主分段数、主线段总长度、网格数、总网格面积、分支数和总分支长度。数据表示每个细胞系的平均九个字段。比例尺,500μm。图3的图例中解释了图形细节和符号。

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