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.2019年2月;58(2):293-304.
doi:10.1002/mc.22928。 Epub 2018年11月14日。

Exportin-T促进肝细胞癌的肿瘤增殖和侵袭

附属公司

Exportin-T促进肝细胞癌的肿瘤增殖和侵袭

林建伟等。 摩尔癌. 2019年2月.

摘要

出口蛋白-T(XPOT)属于RAN GTP酶出口蛋白家族,介导tRNA从细胞核向细胞质的出口。XPOT上调提示乳腺癌患者预后不良。然而,XPOT与肝细胞癌(HCC)之间的相关性尚不清楚。在此,通过生物信息学分析,我们发现XPOT在肝癌中的高表达表明预后较差。同样,95对肿瘤和邻近正常肝组织(ANLT)的免疫组织化学染色也显示XPOT上调。利用小干扰RNA转染下调HepG2和7721细胞系的XPOT。采用细胞计数试剂盒-8(CCK8)分析细胞增殖情况。通过划痕愈合试验和迁移试验测量细胞迁移和侵袭。采用皮下异种移植模型探讨XPOT在体内肿瘤形成中的作用。XPOT的下调在体内外显著抑制肿瘤的增殖和侵袭。基因集富集分析(GSEA)结果表明,XPOT可能通过细胞周期和泛素介导的蛋白水解影响肿瘤的进展。此外,XPOT基因敲除导致G0/G1期阻滞,HCC细胞中细胞周期蛋白依赖性激酶1(CDK1)、细胞周期蛋白依存性激酶2(CDK2)、细胞因子依赖性激酶4(CDK4)、CyclinA1(CCNA1)、CcylinB1(CCNB1)、CyclinB2(CCNB2)和CyclinE2(CCNE2)的下调可证明这一点。总之,我们的研究结果表明,XPOT可以作为预测肝癌患者预后的新生物标记物和潜在的治疗靶点。

关键词:生物标志物;细胞周期;exportin-T(XPOT);肝细胞癌;泛素介导的蛋白质水解。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明,他们没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
与ANLT相比,XPOT在HCC组织中上调。根据TCGA(A;肿瘤,n个 = 369; 正常的 = 50, *P(P) < 0.01)和GEO(B‐F;GSE14520,肿瘤,n个 = 225; 正常,n个 = 220, ****P(P) < 0.0001; GSE45436,肿瘤,n个 = 95; 正常,n个 = 39中****P(P) < 0.0001; GSE62232,肿瘤,n个 = 81; 正常,n个 = 10, ****P(P) < 0.0001; GSE6764,肿瘤,n个 = 35; 正常,n个 = 23, ****P(P) < 0.0001; GSE36376,肿瘤,n个 = 240; 正常,n个 = 193中****P(P) < 0.0001). (H) 16对HCC标本及相应ANLT中XPOT表达的实时PCR分析(***P(P) = 0.0003). 全部*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]
图2
图2
(A) XPOT的表达与临床病理特征和不良预后相关。免疫组织化学染色显示正常肝组织和肝癌组织中XPOT低表达。刻度条指示50和20微米。(B‐C)肝癌患者组的总体生存率和无病生存率曲线。(D‐E)TCGA的总体生存率和无病生存率分析。全部*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]
图3
图3
抑制XPOT影响细胞增殖和侵袭。(A) 使用不同的siRNA序列下调XPOT表达。(B) 肝癌细胞系中XPOT的表达水平。(C) ‐(D)在转染SMMC‐7721和HepG2细胞中,通过CCK8分析评估XPOT沉默对细胞增殖的影响。(E‐G)XPOT的下调抑制了HepG2和SMMC‐7721细胞的侵袭能力。全部*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]
图4
图4
XPOT下调影响SMMC‐7721和HepG2细胞的运动。(A‐B)XPOT对转染SMMC‐7721和HepG2细胞(200×)伤口愈合的影响。(C‐D)数据计算为0和24时的相对细胞迁移率(%)h.所有*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]
图5
图5
XPOT基因敲除抑制体内HCC癌变。(A) 使用不同的shRNA下调XPOT表达。(B‐C)注射后28天处死裸鼠,显示各组肿瘤。(D) 在sh‐XPOT和对照组中测量肿瘤重量(****P(P) < 0.0001). (E) 注射HepG2细胞后肿瘤生长曲线。每7天计算肿瘤体积。(F‐G)不同治疗方法的肿瘤H&E染色。(H) ‐(I)不同治疗的肿瘤中Ki67的IHC染色。全部*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]
图6
图6
XPOT下调影响细胞周期,可能与泛素介导的蛋白水解有关。XPOT与GSEA中泛素介导的蛋白水解、RNA降解、剪接体和细胞周期的基因集相关。(A) XPOT的抑制触发了细胞周期中的G0/G1阻滞。(B‐D)。全部*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]
图7
图7
XPOT通过上调细胞周期蛋白和CDK促进HCC进展。(A) XPOT与CDK1、CDK2、CDK4、CCNA1、CCNB1、CCNBA2和CCNE2呈正相关。(B) 敲除XPOT可抑制CDK1、CDK2、CDK4、CCNA1、CCNB1、CCNBA2和CCNE2的蛋白表达。(C‐I)sh2‐XPOT组和对照组(CDK1**P(P) = 0.0019; CDK2****P(P) < 0.0001; CDK4、****P(P) < 0.0001; CCNA1、***P(P) = 0.0008;CCNB1、***P(P) = 0.0006; CCNB2、****P(P) < 0.0001; CCNE2、**P(P) = 0.0018). 全部*P(P) < 0.05, **P(P) < 0.01, ***P(P) < 0.001, ****P(P) < 0.0001. [彩色图可在wileyonlinelibrary.com]

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