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.2018年7月10日;8(1):10416.
doi:10.1038/s41598-018-28835-7。

使用MEA系统对惊厥和抗惊厥药物在人诱导多能干细胞衍生的皮层神经元网络中的毒理学评估

附属公司

使用MEA系统对人类诱导的多能干细胞衍生皮层神经元网络中惊厥和抗惊厥药物的毒理学评估

奥达瓦拉等。 科学代表. .

摘要

使用人类诱导多能干细胞(hiPSC)衍生神经元进行功能评估可以预测新药的惊厥毒性和抗癫痫药物的神经效应。然而,不同类型的惊厥药物和抗癫痫药物的反应性差异以及能够比较体外反应和体内反应的评价指标尚不清楚。我们使用多电极阵列(MEAs)观察了不同作用机制的戊四唑(PTZ)和4-氨基普利啶(4-AP)诱发癫痫样活动的同步爆发模式的差异;我们还观察到,100µM的抗癫痫药物苯妥英钠抑制了PTZ诱导的癫痫样活动,但增加了4-AP诱导的癫痫活动。为了将体外结果与体内惊厥反应进行比较,进行了250 Hz以下的频率分析,不包括尖峰成分。体外培养的hiPSC衍生神经元与星形胶质细胞共培养后,在体内观察到高γ波和β波成分的惊厥放电增强。与星形胶质细胞共培养的hiPSC衍生神经元的MEA测量和我们的分析方法,包括频率分析,对于预测惊厥毒性、副作用及其作用机制以及体内诱发惊厥的比较,似乎是有效的。

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图1
图1
用24孔MEA系统对hiPSC衍生的皮层神经元的自发放电进行细胞外记录,并与hiPSC派生的星形胶质细胞共同培养。(A类)24孔MEA板。(a) MEA板概述。(b) 每孔16个电极的相位对比图。比例尺 = 100微米。(c) 11周时MEA芯片上神经元和星形胶质细胞共培养的免疫荧光图像在体外(WIV)。图像显示神经元使用β-微管蛋白III(绿色),星形胶质细胞使用GFAP(红色)免疫染色。比例尺 = 50微米。(B类)8 WIV下的典型自发放电模式。(a) 5次自然发火的光栅图24孔384个电极的最小值。与星形胶质细胞样本共培养显示低于192个电极。192个电极上方的光栅图是神经元样本的数据。(b) 1的同步突发发射(SBF)的典型波形神经元(左)每孔16个电极,与星形胶质细胞共培养(右)。(C类)神经元仅培养样本和共培养样本的信噪比。(n) = 5口井,双尾成对学生井t吨-测试,**p < 0.01)(a)神经元和共培养样本中的峰值振幅。在10次自发放电中检测到负电压峰值min.将峰值振幅计算为绝对值。(b) 神经元和共培养样本中的噪声。噪声按|平均值计算 + S.D.公司| + |无尖峰电压1的平均−S.D.|第二。(c) 通过将每口井的峰值振幅平均值除以噪声,计算信噪比。
图2
图2
自发放电的发展和功能成熟。(A类)神经元每个活动电极的放电率以及与星形胶质细胞的共培养(平均10最小值)从3到10 WIV。白条和黑色分别是神经元和共培养。采用双向方差分析和Holm–Bonferroni方法分析神经元和共培养样本之间的放电频率差异。(**p < 0.001). 折线图显示每16个电极的活动电极数百分比。n个 = 4口井。(B类)谷氨酸受体的电生理功能。(a) 神经元样本中自发放电的光栅图前分钟,25µM AP-5,累计30µM CNQX给药。(b) 共培养样本中的光栅图。(c) 神经元(白色)和共培养(黑色)在AP-5和CNQX给药之前(100%,基线)和之后的总峰值数量变化。(神经元,n = 4口井,共培养,n = 10口井,单因素方差分析和事后Dunnett检验,*p < 0.05,**p < 0.01).
图3
图3
戊四氮(PTZ)和4-氨基吡啶(4-AP)对癫痫样活动的诱导作用,以及苯妥英在9WIV下的抗惊厥作用。在24孔MEA板的不同孔中进行PTZ和4-AP实验。(A类)PTZ诱导癫痫样活动和苯妥英钠的抑制作用。(a) 1的光栅图神经元样本中PTZ和苯妥英钠给药时的min。将PTZ以增加的浓度添加到培养基中(1微米,10100微米µM和1mM)。然后添加苯妥英钠(100µM和200微米)。(b) PTZ和苯妥英钠在与星形胶质细胞共培养中的反应。比例尺 = 1最小值(c)与之前相比,药物治疗期间神经元和与星形胶质细胞共培养期间SBF数量的变化(%)(n = 5口井,**p < 0.01). 数据采用单向方差分析,然后采用Holm–Bonferroni方法进行分析。(B类)使用4-AP诱导癫痫样活动以及苯妥英钠的影响。(a) 1的光栅图神经元样本中4-AP和苯妥英钠给药时的min。4-AP以增加的浓度添加到培养基中(1微米,10微米,30µM和60微米)。然后添加苯妥英钠(100200微米µM和300微米)。(b) 4-AP和苯妥英钠在与星形胶质细胞共培养中的反应。比例尺 = 1最小值(c)与之前相比,以及在药物治疗期间,神经元和星形胶质细胞共培养中SBF数量的变化(%) = 6口井,*p < 0.05,**p < 0.01).
图4
图4
PTZ和4-AP给药SBF期间的峰值时间。(A类)PTZ 1处SBF的代表峰值mM管理。(a) 上图显示了在16个电极上获得的SBF期间峰值的直方图(橙色圆圈;SBF的开始时间,黄色圆圈;SBF的峰值时间,蓝色圆圈;STF的结束时间)。下图显示了16个电极的自发放电光栅图。(b) 神经元和共培养样本的剂量依赖性(n ≧ 5,N.S.不显著)。采用单因素方差分析和事后邓内特检验对数据进行分析。(B类)4-AP 60时SBF的代表峰值µM给药。(a) 在SBF期间尖峰的峰值时间移动到SBF的开始。(b) 神经元和共培养样本的剂量依赖性(n ≧ 5,**p < 0.01).
图5
图5
使用PTZ和4-AP对SBF进行频率分析。(A类)PTZ诱发SBF的小波分析。(a) 100之前SBF的局部场电位(LFP)µM和1mM PTZ由同一电极获得。LFP,高通滤波1记录赫兹。红线表示250以下的频率分量Hz,使用FIR高截滤波器。(b) 在应用PTZ期间,相应的时间刻度图显示为左轨迹。标量图是根据原始记录道计算的,而不是高质量过滤数据。小波相位相干性用它自己的颜色条显示在它的右侧。(c)1之间的差异的标尺图mM PTZ和给药前。标尺图下方的图表显示了神经元和共培养样本中每个像素的平均小波变换系数量化的每个频带中的正负变化。N是6个电极的分析数据。分析每个电极的五个SBF,并使用平均值。选择了高信噪比的电极,并选择了五种具有多个活性电极的典型SBF。统计分析采用Holm–Bonferroni方法*表示β波段的显著差异(15-25Hz),以及表明与高γ波段(70–150赫兹;(*p < 0.05,**p < 0.01,第页 < 0.05,††第页 < 0.01). (B类)4-AP诱发SBF的小波分析。(a) SBF之前的局部场电位(LFP),1µM和30同一电极获得的µM 4-AP。(b) 4-AP应用期间相应的时间尺度谱图显示为左迹线。(c) 30之间差异的光谱图µM 4-AP和给药前。标量图下方的图表显示了神经元和共培养样本中每个像素的平均小波变换系数量化的每个频带中的正负变化。(n) = 每个电极分析5个SBF*是15–25赫兹。是70-150赫兹*第页 < 0.05,**p < 0.01,第页 < 0.05,††第页 < 0.01).

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引用人

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