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.2018年8月;20(8):800-812.
doi:10.1016/j.neo.2018.05.008。 Epub 2018年7月4日。

三维混合细胞球体模拟基质介导的肝癌化疗耐受性和侵袭性迁移

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三维混合细胞球体模拟基质介导的肝细胞癌化疗耐药性和侵袭迁移

伊夫蒂哈·阿里·卡瓦尔等。 肿瘤形成. 2018年8月.

摘要

肿瘤微环境(TME)中癌细胞与癌相关成纤维细胞(CAF)之间的相互作用在促进前纤维化微环境和上皮-间充质转化(EMT),导致肝癌(HCC)的肿瘤进展和耐药性方面发挥着重要作用。在本研究中,我们使用Huh-7肝癌细胞和LX-2星状细胞建立了一个混合细胞球体模型,以模拟体内肿瘤环境中肿瘤与CAF的相互作用。球形细胞是在超低附着板中从单个癌细胞(单球形细胞)或作为混合物(混合细胞球形细胞)培养而成。成功地建立了致密、混合良好且富含基质的混合细胞球体,其具有异质性细胞-细胞接触,表现为间隙连接和桥粒的存在。与单个球体中表达的水平相比,混合细胞球体中I型胶原(Col-I)和促纤维化因子(如转化生长因子β1(TGF-β1)和结缔组织生长因子(CTGF))的表达增强。E-cadherin和vimentin的表达改变显示,混合细胞球体中EMT表型明显。在混合细胞球体中观察到不同的药物敏感性,只有索拉非尼和奥沙利铂表现出剂量依赖性的抗增殖作用。同时使用TGF-β抑制剂治疗进一步提高了索拉非尼在混合细胞球体中的疗效,表明TGF-。在3D基质侵袭实验中,混合细胞球体显示成纤维细胞领导的集体细胞运动。总的来说,我们的结果提供了证据,证明Huh-7和LX-2细胞形成的混合细胞球体很好地代表了HCC肿瘤及其体内TME,因此有助于研究肿瘤-基质相互作用,作为与耐药性和细胞运动性增加相关的机制。

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图1
图1
三维混合细胞球体的形态特征。(A) HCC细胞(Huh-7)和HSC(LX-2)单独接种(单球)或混合接种(1:3比例,混合细胞球体),并在培养5天期间监测3D生长。比例尺,100μm。(B) 第5天单细胞和混合细胞球体的SEM和TEM图像显示了外围细胞质突起(红色箭头)和包含细胞-细胞相互作用的亚细胞结构:微绒毛(*)、缝隙连接(黄色箭头)和桥粒(黄色箭头头)。比例尺,2μm。H、 Huh-7;五十、 LX-2;NC,坏死细胞;¼,脂肪颗粒;+,糖原颗粒。
图2
图2
LX-2细胞和基质激活标记物在三维混合细胞球体中的分布。(A) 在与Huh-7细胞混合之前,用PKH26示踪剂(红色荧光)标记LX-2细胞。培养3天和5天的混合细胞球体的冷冻切片用于荧光成像。反染色,DAPI(蓝色)。比例尺,100μm。(B) 培养5天后,用免疫荧光染色法检测混合细胞球体中HIF-1α的表达。(C) 培养5天后,在LX-2和Huh-7单球体和混合细胞球体中检测到α-SMA、Col-I、TGF-β1和CTGF的表达。(D) 5天后,单球体和混合细胞球体横截面上染色生物标记物的相对荧光强度。比例尺,100μm。箭头,原纤Col-I排列。通过将染色强度标准化为DAPI(蓝色)来计算相对强度,并表示为五个以上重复的平均值±SE。N.s.=无意义**P(P)<.005和***P(P)<.001(通过单向方差分析)相对于单球体总和。
图3
图3
Huh-7/LX-2混合细胞球体与人肝癌和Huh-7异种移植物基质生物标记物的免疫组织学比较。人体肿瘤样本取自患者FFPE档案(详见方法)。皮下注射1×10的雄性Balb/c小鼠4周后获得Huh-7异种移植物7细胞。H&E染色和免疫组织学检测α-SMA、Col-I、TGF-β1和CTGF在混合细胞球体、人肝癌和异种移植组织以及正常小鼠肝脏石蜡切片中的表达。所有抗体都对人和小鼠抗原具有特异性。比例尺,100μm(插入)和50μm。T、 肿瘤区域;NT,非肿瘤区;S、 基质区;箭头,原纤维Col-I排列。
图4
图4
EMT标记在混合细胞球体和体内组织。(A) 通过LX-2和Huh-7单球体和混合细胞球体石蜡切片的免疫荧光染色检测EMT标记物E-cadherin和vimentin的表达。反染色,DAPI(蓝色)。比例尺,100μm。切片间的相对强度表示为五次以上重复的平均值±SE**P(P)<.005和***P(P)<.001相对于Huh-7单球体。(B) EMT标记物在Huh-7/LX-2混合细胞球体中的表达与人肝癌和邻近非肿瘤(NT)及肝癌异种移植组织标本石蜡切片中的表达比较。所有抗体均对人和小鼠抗原具有特异性。比例尺,100μm(插入)和50μm。T、 肿瘤区域;S、 基质区;箭头,面片中的表达式。
图5
图5
抗癌药物反应。(A) 二维和三维条件下培养的Huh-7和LX-2细胞索拉非尼敏感性的比较。将细胞暴露于不同浓度的索拉非尼(5、10、20、30和40μM)48小时,并通过APH测定分析细胞活力。(B) 球体培养5天,暴露于含有药物(10、30、100和300μM)的培养基中48小时,并通过APH分析检测药物活性。(C) 在索拉非尼(20μM)与TEW-7197(10μM)或己酮可可碱(100μM)联合治疗后,观察到混合细胞球体中的细胞活力降低。数据表示为来自三个或更多独立实验的五个以上重复的平均值±SE**P(P)<.005和***P(P)<.001(通过单因素方差分析)相对于单剂治疗的总和。(D) 索拉非尼和TEW-7197联合治疗后混合细胞球体中Ki-67和c-PARP表达水平的变化。反染色,DAPI(蓝色)。比例尺,100μm**P(P)<.005,相对于单剂治疗。
图6
图6
混合细胞球体的侵入迁移剖面。(A) 细胞从嵌入Matrigel中的单球体侵入和迁移72小时。比例尺,100μm。(B) 在混合细胞球体中,24小时后可见具有内陷体的小细胞突起,其在72小时内连续延伸到基质中。使用ImageJ软件量化相对侵犯面积。比例尺,100μm*P(P)<0.05和**P(P)< .005. (C) Huh-7细胞的荧光染料示踪(PKH26:红色),以显示混合细胞球体的迁移。红色箭头,侵入体;白色箭头,PKH26标记的Huh-7细胞;黄色箭头,DAPI染色的(蓝色)LX-2细胞;虚线,球体边缘。比例尺,50μm。

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