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.2018年3月29日;8(1):5368.
doi:10.1038/s41598-018-23690-y。

EXD2外切酶的线粒体外膜位置与其在核DNA修复中的直接作用相矛盾

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EXD2外切酶的线粒体外膜位置与其在核DNA修复中的直接作用相矛盾

芬娜·亨森等。 科学代表. .

摘要

EXD2是最近发现的一种与核双链断裂修复有关的外切酶。鉴于我们对线粒体DNA维护的长期兴趣,以及EXD2也可能是线粒体蛋白的迹象,我们试图确定其细胞定位和可能的线粒体相关功能。我们的结果表明,EXD2确实显示线粒体定位,但令人惊讶的是,它主要与线粒体外膜有关。梯度纯化的细胞核仅显示EXD2存在的最微弱迹象,而预测的全长蛋白的过度表达显示了线粒体的专属定位。重要的是,通过X射线照射或Zeocin治疗诱导双链DNA断裂并不支持EXD2在双链断裂后重新定位到细胞核的观点,因此不太可能在细胞核DNA修复中发挥直接作用。EXD2的敲除或过度表达影响线粒体的细胞分布。这些结果表明,在EXD2缺失后报告的核DNA修复缺陷可能是线粒体动力学和/或功能改变的间接结果。

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利益冲突声明

作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
EXD2是一种线粒体外膜相关蛋白。通过差速离心分离的U2OS细胞粗线粒体和在碘克沙醇梯度上分离的纯核在对照siRNA和EXD2 siRNA处理的细胞中检测EXD2丰度(面板a1)。结果表明,与线粒体标记蛋白mtSSB和孔蛋白相似的EXD2绝大多数存在于线粒体部分,而不是核部分,其中核标记物核磷蛋白被鉴定。SiRNA治疗证实全长(fl)~70的一致性kDa EXD2蛋白和30种低丰度物种kDa和更高的分子量。用三个商业siRNA的组合池或每个单独的siRNA进行敲除,在Western blots上U2OS细胞的总细胞裂解物中显示出类似的敲除效率(面板a2)。同时,还鉴定了几个较低分子量的EXD2物种,它们似乎对每个单独的siRNA都同样敏感,这表明它们可能是分解或加工的EXD2形式。蛋白酶保护表明线粒体EXD2主要存在于线粒体外膜(图b)。用蛋白酶K(ProtK)单独处理HEK293细胞的线粒体和洋地黄素来源的有丝分裂体,或用蛋白酶K和Triton-X100(TX100)处理线粒体和洋地黄素源的有丝裂体,以溶解内外膜。结果表明,虽然TFAM是一种线粒体DNA相关蛋白,在缺乏TX100的情况下可以免受ProtK的保护,但EXD2则没有,这表明存在外膜定位*表示用针对不同线粒体候选蛋白的抗体探测的残余信号,与本文无关。阿娜2一氧化碳从HEK293细胞中提取的粗线粒体(图c)表明,与细胞色素类似c(c)氧化酶亚基I(一种完整的膜蛋白),全长EXD2主要存在于颗粒(膜)部分,而HSP60的大部分存在于上清液(非膜)部分。对于每个面板(除面板b外),裁剪后的图像显示了在相同的印迹上用后续抗体进行孵化的结果,用分割线表示(有关完整印迹图像,请参阅补充信息)。
图2
图2
全长EXD2在U2OS细胞中的敲除或过度表达证实了EXD2的线粒体定位。ProteinAtlas将我们在整个研究中使用的EXD2抗体描述为具有线粒体和可能的中间丝定位。为了测试其抗体的定位和有效性,我们测试了EXD2抗体,以及针对外膜蛋白Tomm20的抗体和针对中间丝蛋白波形蛋白(Vim)的抗体在转染非靶向对照siRNA池或三个EXD2隐形siRNA池后使用免疫荧光(a组)。在对照siRNA细胞中与Tomm20和vimentin共染色显示EXD2信号与线粒体和中间丝信号共定位。EXD2 siRNA处理表明,虽然EXD2线粒体信号不再被观察到,但中间丝信号仍然表明该信号不是非特异性的,或者所使用的siRNA池不会影响与中间丝相关的EXD2。预测的全长蛋白的瞬时过表达,无论是不带标记还是带有C末端组合的Myc/FLAG标记,都显示了Tomm20共染色所示的该蛋白的专属线粒体定位,而较高水平的过表达导致线粒体核周聚集(面板b)。随着过度表达,整个线粒体网络在一个大的核周簇中崩溃,失去了任何典型的线粒体网络样结构(补充图S1)。过度表达的全长EXD2没有核或中间丝定位的证据。请注意,本图中的图像是特意选择的,以最好地说明EXD2的线粒体定位。因此,我们选择了图像视图来显示线粒体网络清晰且延伸的细胞,同时试图避免线粒体网络浓缩/塌陷的细胞。
图3
图3
EXD2可在免疫荧光中加入抗体而无需线粒体溶解。多聚甲醛固定后的免疫荧光检测需要使用例如Triton X100进行线粒体裂解。在没有这种裂解步骤的情况下,线粒体基质蛋白和例如线粒体DNA是无法检测到的。因此(面板a)结果表明,在没有TX100裂解的情况下,EXD2被检测到,而IF既没有检测到MRPL12,也没有检测到mtDNA。在TX100分解中,三者都被检测到。类似的实验(面板b)表明,在没有TX100裂解的情况下检测到Tomm20和EXD2,但没有检测到mtDNA。高分辨率20×30使用EXD2和MRPL12抗体的细胞µM亚区表明,EXD2信号通常包裹MRPL12信号(面板c:一些示例由合并图像中的白色箭头指示),进一步说明EXD2的外膜定位。
图4
图4
SiRNA介导的U2OS细胞中EXD2的敲除导致线粒体网络更为广泛。为了了解EXD2敲除对线粒体网络行为的可能影响,我们用EdU标记细胞,以识别S期细胞,为了了解细胞周期介导的线粒体网络动力学效应导致的镶嵌现象(见正文)。为此,细胞被培养30转染后使用EdU的时间为min,48–60用非靶向对照siRNA库(Csi)或三个EXD2隐形siRNA库(EXD2si3x)孵育小时。在标记EdU掺入物(绿色,gr)后,用Tomm20(红色,r)和EXD2(白色)抗体进一步标记细胞。对照siRNA处理的细胞显示出线粒体网络的频繁且强烈的核周聚集,特别是在EdU阳性细胞中。相比之下,EXD2si3x通常显示一个分布更广、有时更为复杂的网络。每个条件显示两个视场。
图5
图5
核DNA损伤不会将EXD2重新定位到核。(a组)HeLa细胞用13Gy X射线照射诱发核DNA损伤并允许恢复30分钟。结果表明,这种损伤后,细胞核中H2AX磷酸化显著增加,而EXD2保留其主要的线粒体定位,类似于其在对照细胞中的位置。(b组)U2OS细胞用250μg/ml Zeocin 1次小时,并允许恢复1用常规培养基替换含Zeocin的培养基后hr。然后处理细胞进行γH2AX和EXD2的IF检测,结果与X射线照射HeLa细胞的结果相似。

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