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.2018年3月8日;9(1):1009.
doi:10.1038/s41467-018-03394-7。

HDAC9-MALAT1-BRG1复合物介导胸主动脉瘤平滑肌功能障碍

附属公司

HDAC9-MALAT1-BRG1复合物介导胸主动脉瘤平滑肌功能障碍

克里斯蒂安·利诺·卡德纳斯等。 国家公社. .

摘要

胸主动脉瘤(TAA)与影响TGF-β信号通路成员或血管平滑肌细胞(VSMC)肌动球蛋白细胞骨架成分和调节因子的突变有关。虽然这两个临床组表现出相似的表型,但潜在共同发病机制的存在仍不清楚。在此,我们表明,影响TGF-β信号传导和VSMC细胞骨架的突变均导致形成三元复合物,包括组蛋白脱乙酰化酶HDAC9、染色质重塑酶BRG1和长非编码RNA MALAT1。HDAC9-MALAT1-BRG1复合物结合染色质并抑制收缩蛋白基因表达,与组蛋白H3-赖氨酸27三甲基化修饰的获得相关。阻断Malat1或Hdac9可以恢复收缩蛋白的表达,改善主动脉壁结构,并抑制实验性动脉瘤的生长。因此,我们强调了共同的表观遗传途径导致两种TAA形式的VSMC功能障碍,对其他已知的HDAC9相关血管疾病具有潜在的治疗意义。

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作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
HDAC9上调与TAA相关的人类遗传变异有关。 转化生长因子βVSMCV公司基因群。b条siSMAD3中常见失调基因mRNA表达的热图(HDAC9倍变化 = 1.6)和siACTA2(HDAC9折叠变化 = 2.0)经处理的人类VSMC。比例尺指示折叠变化Z轴-得分。c(c)对siSMAD3、siTGFB2、siACTA2和siMYH11处理细胞中HDAC9转录诱导的QPCR验证。绘制了四个实验重复。d日用空载体TGFR2转染人VSMC中HDAC9转录物的QPCR分析g357瓦或ACTA2179兰特等位基因。绘制了四个实验重复。e(电子)定量western blot分析HDAC9在细胞核和细胞质提取物中的分布表明TGFR2增加了细胞核定位G357瓦或ACTA2179兰特等位基因。对三个实验重复进行了量化。(f)siHDAC9治疗VSMC逆转TGFR2表达诱导的MMP活性G357瓦或ACTA2179兰特通过体外明胶酶谱测定人血管平滑肌细胞的等位基因。siHDAC9治疗VSMC可缓解TGFR2表达诱导的迁移活动抑制G357瓦或ACTA2179兰特通过伤口愈合试验检测人类VSMC中的等位基因。0和48时伤口愈合试验的连续显微照片如图所示,VSMC为红色。条形图 = 200微米。小时TAA患者和非动脉瘤对照组人主动脉组织核提取物中HDAC9蛋白的定量western blot分析。免疫荧光染色显示HDAC9蛋白在不同类型TAA病因的人类TAA样本中的核定位相似。主动脉腔向右。(20×,巴 = 50微米;100×,巴 = 10微米)。家族性胸主动脉瘤与解剖;TAA,胸主动脉瘤。条形图表示为带误差条(±S.D.)的平均值,学生T型-测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT.补充图8中显示的全长蛋白质印迹
图2
图2
TAA相关的人类基因变异会破坏肌动蛋白细胞骨架的稳定性。TGFR2转染VSMC的免疫荧光G357瓦或ACTA2179兰特等位基因(通过抗V5染色鉴定,左栏)和抗HDAC9染色(红色,右栏),通过抗F-actin染色证明有组织的肌动蛋白细胞骨架结构的丧失(绿色,两栏)。酒吧 = 20µM,箭头表示3倍变焦插入面板的焦点。b条Western blot显示TGFR2组α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、钙调素(CNN1)和平滑蛋白(SMTN1)表达减少G357瓦或ACTA2179兰特表达细胞。对三个实验重复进行了量化。c(c)与对照主动脉组织相比,人主动脉样本(顶行)的Masson三色染色(蓝色)代表胶原沉积,来自不同病因(底行)的人TAA样本的免疫荧光显示,抗SM22α(洋红,所有列)的F-actin染色(绿色)减少。注意,F-actin染色在无定形弹性蛋白纤维自身荧光之间。(20×,巴 = 50微米;63×,棒材 = 15微米)。d日肌动蛋白分级分析显示TGFR2降低了F-Actin与G-Actin的比率G357瓦或ACTA2179兰特表达细胞。对三个实验重复进行了量化。条形图表示为带误差条(±S.D.)的平均值,学生T型-测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT.补充图8中显示的全长蛋白质印迹
图3
图3
HDAC9与BRG1和lncRNA MALAT1相互作用。TGFR2中HDAC9蛋白表达增加G357瓦或ACTA2179兰特与人类VSMC中其他HDAC亚型相比,通过western blot表达等位基因。对三个实验重复进行了量化。b条BRG1的免疫沉淀显示HDAC9在TGFR2中结合G357瓦和ACTA2179兰特表达突变细胞。三个重复实验的蛋白质水平定量。c(c)Top,CLIP-seq对抗HDAC9和抗BRG1免疫复合物的分析,如文氏图所示,显示在基线或TGFR2表达期间用两种抗体纯化检测到的转录物数量g357瓦或ACTA2179兰特等位基因。底部,通过巧妙途径分析107个核心转录物的细胞功能。d日TGFR2表达期间已知心血管lncRNA的定量PCR分析G357瓦或ACTA2179兰特等位基因。e(电子)与抗HDAC9或抗BRG1免疫复合物相关的心血管lncRNA的定量PCR分析。四个实验重复被量化。(f)BRG1和HDAC9的连续免疫沉淀证明了lncRNA MALAT1与BRG1-HDAC9免疫复合物的关联。三个重复实验的蛋白质水平定量。通过珠固定化生物素化MALAT1或LacZ反义RNA探针的UV交联捕获的HDAC9和BRG1蛋白的Western blot分析。对三个重复进行量化。小时HDAC9和BRG1的免疫荧光表明,HDAC9在siMALAT1处理的细胞中缺乏核定位。酒吧 = 15µM,圆圈表示siMALAT处理细胞中的细胞核位置,箭头表示明显的HDAC9细胞质聚集。对来自对照组和siMALAT1处理的VSMC的核提取物(NE)和细胞质提取物(CE)的HDAC9和HDAC1进行半定量western blot分析。j个siMALAT1治疗VSMC降低TGFR2G357瓦或ACTA2179兰特通过体外明胶酶谱介导MMP活性的诱导。条形图表示为带误差条(±S.D.)的平均值,学生T型-测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT.补充图8中显示的全长蛋白质印迹
图4
图4
HDAC9–MALAT1–BRG1复合物负调控平滑肌收缩基因。荧光原位杂交(FISH)显示TGFR2中MALAT1水平增加G357瓦或ACTA2179小时表达细胞,(学生的T型-测试**第页 < 0.01). 酒吧 = 15微米b条MALAT1、BRG1和HDAC9在TGFR2中的空间共定位G357瓦-表达或ACTA2179兰特-表达细胞。3D超分辨显微镜显示TGFR2中HDAC9(绿色)、MALAT1(红色)和BRG1(黄色)的核内共定位G357瓦或ACTA2179兰特表达细胞。显示了每种情况下100个细胞中BRG1-HDAC9和BRG1-MALAT1之间空间重叠的Global Pearson共定位(GPC)。酒吧 = 2µM上面板,Bar = 1.2µM下面板(c(c))合成和收缩SMC表型分子标记的定性PCR分析,主要证明TGFR2中收缩标记的抑制G357瓦或ACTA2179兰特表达VSMC(*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT)量化了四个实验重复。d日ChIP显示TGFR2收缩基因启动子处H3K27me3标记增加G357瓦或ACTA2179兰特表达细胞(*第页 < 0.05 vs.WT)。染色质免疫沉淀分析(ChIP)显示,在收缩性VSMC基因的启动子处,包括CNN1(calponin)、TAGLN(Sm22)、SMTN(smoothlin)、VCL(vinculin)和cTNN3(肌钙蛋白),通过RNA纯化(ChiRP)MALAT1 RNA,HDAC9和BRG1蛋白的占有率增加,染色质分离(Student’sT型-测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT)。四个实验重复被量化。e(电子)BRG1和HDAC9的系列免疫沉淀(ReChIP)显示BRG1-HDAC9免疫复合物与VSMC收缩启动子的MALAT1依赖性关联。对三个重复进行量化。条形图表示为带误差条(±S.D.)的平均值,学生T型-测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01与WT
图5
图5
HDAC9–MALAT1–BRG11是EZH2募集到染色质所必需的。合成和收缩基因的定性PCR分析显示TGFR2中HDAC9和MALAT1依赖性抑制G357瓦或ACTA2179兰特表达VSMC。b条HDAC9染色质免疫沉淀分析(ChIP)显示MALAT1和BRG1与VSMC启动子的依赖性关联。c(c)MALAT1荧光原位杂交(FISH)显示与H3K27me3标记和致密异染色质区域共定位(虚线)。酒吧 = 1.2µM,顶排和中排,Bar = 120nM,最下面一行(d日)体外表达EZH2的Western blot显示与TGFR2中BRG1和HDAC9免疫沉淀物的顺序相关G357瓦或ACTA2179兰特表达细胞。e(电子)染色质免疫沉淀分析(ChIP)显示EZH2与VSMC启动子的HDAC9、BRG1和MALAT1依赖性关联。(学生的T型-测试,NS不显著*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT)条形图表示为带误差条的平均值(±S.D.),学生的T型-测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01 vs.WT.补充图8中显示的全长蛋白质印迹
图6
图6
Malat1或Hdac9基因突变可改善实验性主动脉瘤。从中解释的VSMCFbn1公司1039克/+与野生型细胞相比,小鼠主动脉Hdac9-Brg1和Malat1-Brg1的共定位增强。图中显示了Hdac9–Brg1和Malat1–Brgl之间空间重叠的Global Pearson共定位(GPC)。酒吧 = 2.5微米b条野生型Hdac9–Malat1–Brg1复合物和Fbn1公司103克/+通过共聚焦显微镜观察升主动脉标本。酒吧 = 40微米c(c)的QPCRHdac9型,马拉特1、和轴承1在中显示上调Fbn1公司103克/+主动脉条形图表示为带误差条的平均值(±S.D.)n个 = 6只6个月大的动物(d日)改进的主动脉定量尺寸Fbn1公司1039克/+:马拉特1−/−Fbn1型1039克/+:Hdac9型飞行/飞行:标记核心小鼠与Fbn1公司1039克/+老鼠。主动脉根部(红色)和升主动脉(黑色)超声定量野生型(n个 = 18),马拉特1−/−(n个=18),Hdac9型飞行/飞行:标记核心(n个 = 17),第1层1039克/+(n个 = 24),Fbn1公司1039克/+:马拉特1−/−(n个 = 19) 、和Fbn1公司1039克/+:Hdac9型飞行/飞行:标记核心(n个 = 15; 单向方差分析*第页 < 0.05, **第页<0.01, ***第页 < 0.001). 显示6个月时的主动脉尺寸和16至24周之间的主动脉生长。6月龄小鼠胸骨旁长轴收缩超声主动脉根部的典型图像。红色箭头表示主动脉根部,白色箭头表示升主动脉。酒吧 = 1毫米(e(电子))Malat1和Hdac9缺陷可挽救Fbn1公司1039克/+主动脉。六个月龄注射乳胶野生型的代表性显微照片,马拉特1−/−,Hdac9型飞行/飞行:标记面积,Fbn11039克/+,Fbn1公司1039克/+:马拉特1−/−、和Fbn1公司1039克/+:Hdac9型飞行/飞行:Tagln克心脏和升主动脉(左栏,Bar = 1mm,中柱和右柱,棒材 = 40微米)。红色箭头表示主动脉的上升部分。主动脉用Verhoeff-Van-Gieson染色(中央面板)和F-actin免疫荧光染色(右面板)。主动脉外膜面向左侧,而主动脉腔面向右侧。主动脉构筑定量和F-actin染色(单向方差分析*第页 < 0.05, **第页 < 0.01, ***第页 < 0.001). 补充图8所示的全长蛋白质印迹
图7
图7
Malat1或Hdac9的基因破坏可恢复体内收缩蛋白的表达。 马拉特1Hdac9型缺乏降低体内主动脉MMP活性Fbn1公司1039克/+老鼠。野生型,Fbn1公司1039克/+、和Fbn1公司1039克/+:马拉特1−/−、和Fbn1公司1039克/+:Hdac9型飞行/飞行:标记核心小鼠在处死和离体成像之前在体内注射MMP sense 680。酒吧 = 1.5毫米。b条6个月大的升主动脉收缩和合成VSMC标记物的热图Fbn1公司1039克/+,Fbn1公司1039克/+:马拉特1−/−、和Fbn1型1039克/+:Hdac9型飞行/飞行:标记核心老鼠。通过折叠变化(FC)与野生型显示的水平。(n个 = 每个基因型7只小鼠)。c(c)小鼠主动脉组织体内染色质免疫沉淀(ChIP)分析(n个 = 每个基因型6只小鼠)在近端使用H3K27me3抗体胶转蛋白(Sm22α)启动子。d日 马拉特1Hdac9型缺乏可挽救多种VSMC收缩蛋白表达减少Fbn1公司1039克/+老鼠。野生型主动脉的Western blot,马拉特1−/−,第1层1039克/+,Fbn1公司1039克/+:马拉特1−/−、和Fbn1公司1039克/+:Hdac9型飞行/飞行:标记核心老鼠。显示了三个重复实验的蛋白质水平的量化。(学生的T型-测试,NS不显著*第页 < 0.05, **第页 < 0.01)条形图表示为带误差条(±SD)的平均值。补充图9中显示的全长蛋白质印迹
图8
图8
疾病诱导的HDAC9–BRG1–MALAT1复合物的转录抑制。在健康主动脉中,负责正常主动脉内稳态的基因由多种转录因子(TF)转录,如MEF2、Myocardin和Myocardian相关转录因子(MRTF)。b条疾病过程激活HDAC9–BRG1–MALAT1复合物的组装。通过复合物的作用和通过多梳抑制复合物2(PRC2)获得组蛋白3赖氨酸27三甲基化,靶基因的启动子沉默。c(c)减少MALAT1和/或HDAC9的剂量会导致复合物不稳定,并允许沉默基因位点的表达和有害表型的逆转

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