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.2018年3月7日;10(3):114.
doi:10.3390/v10030114。

HIV-1感染后原代人CD4+T细胞葡萄糖摄取和己糖激酶活性的上调

附属公司

HIV-1感染后原代人CD4+T细胞葡萄糖摄取和己糖激酶活性的上调

迈亚·卡瓦纳·威廉姆森等。 病毒. .

摘要

原代CD4+T细胞感染HIV-1与糖酵解增加相一致。我们研究了人类CD4+T细胞对HIV-1感染的反应中葡萄糖转运蛋白(GLUT)和糖酵解酶的表达。我们证明了激活后GLUT1、GLUT3、GLUT4和GLUT6在人类CD4+T细胞中的共同表达,以及它们在HIV-1感染细胞中的协同过度表达。糖酵解酶的研究表明,己糖激酶HK1和HK2在人CD4+T细胞中的激活依赖性表达,细胞己糖激酶活性在感染HIV-1后显著增加。HIV-1感染的CD4+T细胞显示HK1以及功能相关的电压依赖性阴离子通道(VDAC)蛋白的表达显著增加,但HK2没有。HIV-1感染细胞中GLUT、HK1和VDAC表达的升高反映了复制动力学,并且依赖于病毒复制,如使用反转录抑制剂所证明的。最后,我们证明了在HIV-1感染的CD4+T细胞中HK1的上调独立于病毒辅助蛋白Vpu、Vif、Nef和Vpr。尽管这些数据与HIV-1对CD4+T细胞葡萄糖代谢的依赖性一致,但不能排除感染的细胞反应机制。

关键词:GLUT1;GLUT3;GLUT4;GLUT6;HIV-1;HK1;T淋巴细胞;糖酵解;己糖激酶。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。资助者在研究设计中没有任何作用;收集、分析或解释数据;在手稿的撰写和发表结果的决定中。

数字

图1
图1
多个GLUT蛋白在活化的人类CD4+T细胞中表达,并在感染HIV-1后上调。()经qPCR:n.d.测定,6名供体活化后5、24和48小时,活化的GLUT1-14、CD69和IFNγmRNA相对于静止的CD4+T细胞的丰度表明未检测到。数据是三个参考基因(18S、B2M和EIF4A2)归一化后的平均值,误差条代表标准偏差;(b条)典型的Western blotting分析显示,在用GLUT特异性抗体刺激后5、24和48小时,在相同数量的静止(R)和激活的人类CD4+T细胞中检测到GLUT蛋白。GAPDH和HSP90的印迹作为对照;(c(c))用5名供体样品的qPCR测定HIV-1感染细胞与未感染细胞中GLUT1-14 mRNA的相对丰度;(d日)在奈韦拉平(NVP)存在或不存在的情况下,对未感染(ΔEnv)和HIV-1 NL4.3感染的原代CD4+T细胞的GLUT1、3、4和6的表达进行代表性Western blotting分析。使用相同数量的感染细胞和未感染细胞,HSP90显示为负荷控制;(e(电子))Western blotting分析的量化数据显示于(d日)来自六个不同的捐赠者。重要性表示为*第页≤ 0.05, **第页≤ 0.01, ***第页≤0.001,以及****第页≤ 0.0001. 对于qPCR数据,仅显示上调转录物的显著性,未检测到n.d.incicates,而ns表示无统计学意义。
图2
图2
阻止CD4+T细胞的葡萄糖摄取需要靶向多个GLUT蛋白的抑制剂。在无葡萄糖的情况下实时测定活化的CD4+T细胞的细胞外酸化率(ECAR,单位:mpH/min),然后依次注射0、1、5、12.5、25、50和100μM的GLUT抑制剂;葡萄糖(1 g/L);和2-脱氧葡萄糖(4.5 g/L)。()STF-31;(b条)英迪那韦(IDV);(c(c))利托那韦(RTV);(d日)GTI-2;(e(电子))WZB117型。所示数据是来自三到五个不同供体重复的代表性实验。
图3
图3
1HIV-1感染和未感染CD4+T细胞葡萄糖消耗和乳酸生成的H-NMR分析。()代表1感染HIV-1 NL4.3或非感染性对照(ΔEnv)的CD4+T细胞培养上清以及无细胞RPMI培养基的H-NMR谱。箭头表示对应于蔗糖、葡萄糖和乳酸的峰值;(b条)24小时后用于核磁共振分析的培养物(ΔEnv或wt NL4.3)中CD4+T细胞的数量;(c(c))在培养感染HIV-1 NL4.3或非感染ΔEnv对照的CD4+T细胞24小时后,细胞数校正了葡萄糖摄取和乳酸产生。重要性表示为*第页≤ 0.05.
图4
图4
未感染和HIV-1感染CD4+T细胞中的相对酶活性和糖酵解因子表达水平。()感染48小时后,未感染(∆Env)和HIV-1感染(NL4.3)细胞裂解物中糖酵解酶的相对活性:己糖激酶(HK)、葡萄糖-6-磷酸异构酶(GPI)、磷酸果糖激酶(PFK)、醛缩酶(ALDO)、三糖磷酸异构构酶(TPI)、甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)、磷酸甘油酸激酶(PGK)、,磷酸甘油酸变位酶(PGM)、烯醇化酶(ENO)和丙酮酸激酶(PK);(b条)细胞裂解物中糖酵解酶表达的典型Western blotting分析(); (c(c))Western blotting分析显示糖酵解酶的相对丰度(b条)来自五个捐赠者。蛋白质丰度相对于微管蛋白表达进行量化,数值标准化为用ΔEnv NL4.3处理的细胞中的含量;(d日)感染HIV-1 wt或ΔEnv NL4.3后24和48小时HK1、HK2和VDAC蛋白表达变化的时间进程分析。蛋白质丰度根据与HSP90表达相关的Western blots进行量化,并将数值标准化为ΔEnv NL4.3处理的细胞中存在的数量;(e(电子))表1所示数据的蛋白质表达的代表性蛋白质印迹分析(d日); (如果)HK1,p24表达的代表性Western blotting分析仪表感染后48小时,在奈韦拉平(NVP)存在和不存在的情况下,感染HIV-1 wt或ΔEnv NL4.3的CD4+T细胞中的Nef和HSP90;()根据Western blotting分析,HK1表达相对于HSP90的量化数据,并归一化为ΔEnv NL4.3处理的细胞中存在的数量,如(如果),供五名捐赠者使用。重要性表示为*第页≤0.05和***第页≤ 0.001.
图5
图5
感染HIV-1 NL4.3的CD4+T细胞中HK1的上调不需要HIV-1辅助蛋白。()对感染HIV-1 wt NL4.3病毒或Env、Vpu、Vif或Nef基因缺失的突变病毒的CD4+T细胞进行Western blotting分析。上述典型的Western blot中显示的量化数据与HSP90的表达有关,并与用ΔEnv NL4.3处理过的四个供体细胞中的HSP90表达量标准化;(b条)对感染HIV-1 wt NL4.3或Env或Vpr基因缺失的突变病毒的CD4+T细胞进行Western blotting分析。上面在代表性的蛋白质印迹中显示的定量数据是相对于HSP90表达的,并标准化为四个供体用ΔEnv NL4.3处理的细胞中存在的量。重要性表示为*第页≤0.05和**第页≤ 0.01.

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