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.2018年1月9日;9(1):105.
doi:10.1038/s41467-017-02651-5。

微生物衍生的短链脂肪酸通过组蛋白脱乙酰化酶促进结肠中的组蛋白巴豆酰化

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微生物衍生的短链脂肪酸通过组蛋白脱乙酰化酶促进结肠中的组蛋白巴豆酰化

雷切尔·费罗斯等。 国家公社. .

摘要

最近发现的组蛋白翻译后修饰巴豆酰化将细胞代谢与基因调控联系起来。其调节和组织特异性功能尚不清楚。我们对肠上皮中组蛋白的巴豆糖基化进行了表征,发现组蛋白H3在赖氨酸18处的巴豆糖基化在小肠隐窝和结肠中是一种惊人的丰富修饰,并与基因调控有关。我们表明,这种修饰是高度动态的,在细胞周期中受到调控。我们确定I类组蛋白脱乙酰酶HDAC1、HDAC2和HDAC3是组蛋白脱羰基化的主要执行者。我们发现已知的HDAC抑制剂,包括肠道微生物衍生的丁酸盐,会影响组蛋白脱羰基化。与此一致,我们发现肠道微生物群的耗竭导致结肠组蛋白巴豆糖基化的整体变化。我们的结果表明,组蛋白巴豆酰化通过短链脂肪酸和HDAC将染色质连接到肠道微生物群,至少部分是这样。

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作者声明,他们没有相互竞争的经济利益。

数字

图1
图1
组蛋白巴豆酰化存在于肠道中。使用所示抗体对几种小鼠组织的全细胞提取物进行Western blot分析表明,组蛋白巴豆酰化在大脑和结肠中特别丰富;对两只小鼠的组织进行了分析。b条肠上皮细胞组分中H3K18cr的相对丰度,n个 = 误差线为标准偏差。c(c),d日小鼠结肠的抗泛巴豆酰抗体免疫荧光显微镜(绿色,左侧面板)和DAPI反染(青色,右侧面板)(c(c))和小肠(d日)组织切片,比例尺40微米
图2
图2
结肠上皮分析中的H3K18cr ChIP-seq。对两只小鼠分离的结肠上皮细胞进行ChIP测序。1号染色体片段的浏览器视图显示了H3K18cr峰分布的代表性剖面,与基因相关。显示了ChIP和输入的组合复制集在线性范围内的相对富集度,探针为500基点,250bp重叠。b条ChIP-seq标准化读取计数与基因的平均分布表明组蛋白H3K18cr在结肠上皮细胞的转录起始位点(TSS)上高度富集。c(c)H3K4me3和H3K18cr之间的链接,使用MACS峰值量化和对齐探针图。根据H3K4me3信号强度和跨度5对探头进行排名MACS峰值附近的kbp。d日阅读的平均分布与基因TSS呈线性关系,显示这些位点上的富集。e(电子)使用mRNA-seq(三个生物复制品)量化TSS上H3K18cr富集与小鼠结肠上皮细胞分离的相应基因mRNA水平之间的关系,并将基因的标准化读取计数从低表达基因(0–25%)分为百分位箱高表达基因(99%至100%)。H3K18cr超过TSS±0.5属于表达箱的基因的kbp被量化,并显示在box-whisker图中。如果KEGG途径术语及其调整第页-具有最高10百分位H3K18cr相关(MACS)峰值的基因的显著性值。仅包含–log的结果10(第页) > 图6所示,所有结果参见补充图6。突出显示癌症途径(红色术语)
图3
图3
微生物缺失影响结肠组蛋白巴豆糖基化和HDAC2。抗生素治疗导致小鼠内腔和血清SCFA水平下降(n个 ≥ 3,来自实验2)。气相色谱法测定结肠腔和血清中的醋酸盐、丙酸盐和丁酸盐浓度。未付款t吨-进行了测试*第页-价值 < 0.05和***第页-价值 < 0.001. 零值低于可检测水平。b条未治疗和治疗小鼠结肠提取物的western blot分析定量,n个 ≥ 3.实验1和实验2是重复实验。中心值(小条)是治疗组相对于未治疗组的平均值。对定量条带进行双向方差分析(双尾),以比较两个实验的治疗效果;*对应于第页-的值 < 0.05和***对应于<0.001。定量显示,抗Kcr抗体检测到的H4巴豆酰化以及抗生素治疗后的H4K8cr、H4K9ac和H3K18cr水平在统计学上显著降低。c(c)实验1中结肠提取物的典型西方印迹中所示的各种结肠组蛋白巴豆酰化和乙酰化标记以及HDAC2的全球变化。d日用抗HDAC2蛋白对western blotting分析的定量条带进行双向方差分析。观察到统计上显著增加(第页-价值 < 0.05)
图4
图4
丁酸和I类HDAC抑制促进组蛋白巴豆酰化。经48次治疗的小肠类有机物全细胞提取物指示抗体的Western blot分析h含有指定数量的SCFA。两个重复实验的代表性western blot。b条用MS275或DMSO(载体)处理HCT116细胞18h、 收集全细胞提取物,并使用指示的抗体进行western blot分析;抗Kcr:抗巴豆酰赖氨酸抗体,NT:未治疗。c(c)MS275处理HCT116细胞18小时后,组蛋白H3K18cr超过指示基因启动子和重复的异色位点(α卫星序列,NBL2)的增加h.三次重复实验的ChIP-qPCR数据汇总,误差条为SEM
图5
图5
MS275处理的HCT116细胞上的H3K18cr和H3K18-ac ChIP-seq。HCT116细胞上H3K18ac和H3K18-cr ChIP-seq的TSS(±10 kbp)读数的探针趋势图,有无MS275处理;b条H3K18cr和H3K18mac ChIP-seq分析显示,在MS275处理后,这些标记相对于TSS相对减少,误差条为SEM,n个 = 三,第页 < 0.05,成对t吨-测试;c(c)TSS上的对齐探针图(±5kbp),根据H3K18cr/MS275 ChIP-seq中的读取计数对校准探针进行排序。d日H3K18ac的读取计数与对照(载体处理)细胞的H3K18-cr MACS峰值的散点图e(电子)MS275处理细胞的H3K18ac与H3K18mr MACS峰值。如果对照细胞与MS275处理细胞的H3K18cr MACS读取计数峰值。MACS峰值关闭(+2kbp),并且在上调的基因中是红色的。对照细胞与H3K18ac的H3K19ac MACS峰值的读取计数,MS275处理细胞的MACS峰值,MACS峰值接近(+2kbp),并且在上调的基因内为红色。显示H3K18cr增加的MACS峰(如果)或H3K18ac()MS275上的处理为蓝色。对于H3K18cr和H3K18mac,与MS275-upregulated基因相关的MACS峰值数量不成比例地多,这也表明H3K18-cr增加(如果)或H3K18ac()与那些显示这些修饰减少的患者相比,使用MS275治疗(第页 < 0.0001,χ2测试)
图6
图6
组蛋白巴豆酰化是由I类HDAC调节的细胞周期。使用CDK4/6抑制剂abemaciclib和MS275对HCT116细胞进行细胞周期阻滞和释放实验。通道1和9:异步细胞,通道2:G1阻滞细胞,通道3–8:组蛋白巴豆糖基化(Kcr)、H3K18cr和H3K18mac释放到S期后增加。通道10–16:组蛋白巴豆酰化、H3K18cr和H3K18mac在G1期和S期上调,而I类HDAC被MS275抑制。在9–16号车道的实验中,使用15nM abemacilib,5人在场μM MS275,在1的存在下释放到S相μM MS275。细胞周期剖面图显示在顶部,western blots显示在中间,定量显示在底部,根据H3计算并归一化为DMSO(载体)样品。显示了两个实验的代表
图7
图7
I类HDAC是组蛋白脱甲酰酶。组蛋白H3通过HDAC1、HDAC2或HDAC3/Ncor1复合物在体外脱乙酰和脱乙酰;5.65μM组蛋白在体外巴豆酰化或乙酰化,然后通过所示HDAC去除修饰。HDAC1为0.25、0.12、0.06和0.03微米。HDAC2为0.18、0.09、0.05和0.02微米。HDAC3/Ncor1复合物分别为0.45、0.23、0.11和0.06微米。b条HDAC1脱羰基和脱乙酰基的比较动力学;5.65对µM组蛋白进行巴豆酰化或乙酰化,然后去除0.03的修饰不同时间长度的µM HDAC1。通过斑点印迹法对样品进行分析,并通过绘制随时间推移的底物去除情况来确定初始反应速率。动力学参数V(V)最大值,K(K)、和K(K),误差条为SEM,n个 = 三。c(c)HDAC抑制剂TSA、巴豆酸酯和丁酸盐对HDAC1体外脱乙酰和脱羰基的影响。显示了两个重复实验的代表性印迹。d日HDAC1在体外使用巴豆酸酯进行组蛋白巴豆酰化。将巴豆酸盐、乙酸盐或丁酸盐与或不与HDAC1孵育,然后用抗H3K18ac/bt/cr蛋白进行蛋白质印迹分析
图8
图8
BOC-Lys(巴豆基)-AMC通过HDAC1抑制脱乙酰化。荧光体外试验表明,HDAC1仅能有效地去乙酰化BOC-Lys(乙酰基)-AMC底物,但在存在相同数量的BOC-Lys-(巴豆基)-AMC。误差条为标准偏差,一式三份

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