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.2018年1月4日;69(1):9-23.e6。
doi:10.1016/j.molcel.2017.11.033。 Epub 2017年12月28日。

拓扑异构酶3α对人mtDNA的脱位和分离是必需的

附属公司

拓扑异构酶3α对人mtDNA的脱位和分离是必需的

托马斯·尼克尔斯等。 分子电池. .

摘要

线粒体DNA复制是如何终止的,新形成的基因组是如何分离的,目前尚不清楚。我们在此证明拓扑异构酶3α(Top3α)的线粒体亚型实现了这一功能,其作为Holliday连接重溶BLM-Top3 a-RMI1-RMI2(BTR)复合物的组成部分独立于其核作用。我们的数据表明,mtDNA复制终止是通过在H链复制起点形成的半萜烷发生的,Top3α对解决这种结构至关重要。衰变是线粒体网络内线粒体DNA分离单元(核仁)分离的先决条件。这一过程的重要性在TOP3A双等位基因致病性变体引起的线粒体疾病患者中得到了强调,以肌肉限制性线粒体DNA缺失和慢性进行性外眼肌麻痹(CPEO)+综合征为特征。我们的工作将Top3α确定为mtDNA复制机制的基本组成部分和mtDNA分离机制的第一个组成部分。

关键词:DNA复制;DNA分离;线粒体;核仁;进行性眼外肌麻痹;隔离;拓扑异构酶。

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数字

图1
图1。Top3α的缺失影响mtDNA的维持
(A) 通过分离细胞组分的western印迹对拓扑异构酶进行线粒体定位。HeLa细胞被分为细胞核/未破裂细胞、胞浆、整个线粒体和有丝分裂体。线粒体和有丝分裂体部分用蛋白酶K进行额外处理,以去除外部结合蛋白。使用的标记蛋白为组蛋白H3(细胞核)、TFAM(线粒体基质)和凋亡诱导因子(AIF;膜间间隙)。(B) 通过HeLa细胞裂解物的western blotting评估Top3α、Top2α和Top2β的消耗效率。β-actin用作负荷控制。星号(*)表示非特异性物种。(C) 通过HeLa细胞线粒体裂解物的western blotting评估Top1mt耗竭效率。电压依赖性阴离子通道(VDAC)用作负载控制。(D) 拓扑异构酶siRNA缺失后mtDNA拷贝数和7S DNA水平的Southern blot分析,如(B)和(C)所示。使用BamHI对mtDNA进行线性化,并使用探针(a)进行检测。28S rDNA用作加载控制。(E) 拓扑异构酶siRNA缺失后平均mtDNA拷贝数和7S DNA水平的量化(n=3)。误差条代表SEM。
图2
图2。病理学Top3α变异与线粒体DNA结构改变有关
(A) Top3α的结构域,表示已鉴定的复合杂合变异体的位点。MTS表示线粒体靶向序列,罗马数字表示保守结构域。(B) 定量单纤维实时PCR显示,大多数(但不是全部)COX缺陷纤维表现出高水平的克隆扩增mtDNA缺失,涉及MTND4型基因,多重线粒体DNA缺失的标志。数据表示Top3α患者的中值±SEM。(C)DNA重排。线条代表预测的mtDNA缺失(蓝色)或重复(红色)区域。Top3α患者骨骼肌DNA的(D和E)Southern blot分析表明存在高分子量mtDNA结构。用BamHI(D)在主弧中或用PvuII(E)在副弧中切割DNA,用琼脂糖分离,并用探针(a)(用黑条表示)进行印迹。(F) 用于生化表征的纯化Top3α变体。共分离出8 pmol的每种蛋白质,并在Mini-PROTEAN TGX无染色凝胶(Bio-Rad)上进行检测。(G) EMSA评估Top3α变异体与5′放射性标记80-nt ssDNA寡核苷酸的结合。总的来说,在37°C温度下,10 fmol ssDNA与不断增加的Top3α(0、107.5、215、430和860 fmol)孵育15分钟,然后用8%的PAGE分离。(H) DNA松弛试验。总共,200 ng负超螺旋pBluescript II SK(+)质粒DNA与越来越多的Top3α蛋白(1.75、5和10 pmol)在37℃孵育45分钟,然后在1%琼脂糖上分离并在UV光下成像。Nt.BspQI(缺口内切酶)处理代表缺口(开环)DNA和大肠杆菌TopoI治疗代表松弛、共价闭合DNA的迁移。–EtBr凝胶通道下方的数字表示完全松弛基质的百分比,Nt.BspQI处理的样品(通道1)设置为100%。
图3
图3。Top3α的M100V变体显示催化活性受损
(A) 拓扑异构酶siRNA缺失后的mtDNA拓扑。未切割的DNA(3μg)在低百分比琼脂糖上分离、印迹,并使用探针(a)检测。BamHI处理的DNA标志着线性mtDNA和大肠杆菌TopoI-处理的DNA标志着松弛的、开放的圆形mtDNA的迁移。(B) Top3α缺失细胞中高分子量mtDNA物种的酶分解。如有指示,DNA经过处理大肠杆菌分离前使用Topo I、S1核酸酶或T7内切酶I。(C和D)Top3αsiRNA诱导的mtDNA连锁表型的拯救。用编码野生型(WT)或催化失活型(Y362F)稳定转染Flp-In T-REx 293细胞TOP3A公司cDNA为全长(FL)或N末端截短(Δ25)形式。使用2 ng/mL四环素在对照siRNA-处理细胞(1-5通道)或Top3αsiRNA--处理细胞(6-10通道)中诱导表达。(C) Top3α缺失和siRNA-resistant结构表达的Western blot。β-actin用作负荷控制。箭头表示Top3α的两种形式(细胞核和线粒体)。星号(*)表示非特异性物种。(D) 样品mtDNA的Southern blot,如(C)所示。使用BamHI限制总DNA样本(3μg),用琼脂糖分离,印迹,并使用探针(a)检测。28S rDNA用作加载控制。
图4
图4。Top3α的缺失诱导线粒体DNA儿茶酚胺的形成
(A和B)来自对照siRNA处理的细胞的单体开环形式mtDNA(A)和单体超螺旋mtDNA(B)的代表性EM图像。比例尺,200纳米。(C和D)来自Top3α缺失细胞的连锁mtDNA的典型EM图像,示例图像1(C)和示例图像2(D)。比例尺,0.5 mm。(E)来自Top3α/Top1mt缺失细胞的连锁mtDNA的典型EM图像。比例尺,0.5 mm。(F和G)缺失Top3α和Top1mt细胞后复制mtDNA分子的典型EM图像,示例图像1(F)和示例图像2(G)。比例尺,200纳米。(H) 根据EM分析,在指定的siRNA处理后,对单体(松弛和超螺旋)或连环拓扑形式中发现的mtDNA分子进行量化。数据以百分比表示,表示每个研究组重复进行的三个独立实验的平均值。误差条代表SEM。(I–L)患者成纤维细胞mtDNA的典型EM图像。(一) 单体开环(1n)。(J) 过冷单体mtDNA(1nsc)。(K) 由二聚体环组成的儿茶酚胺。(五十) 由三聚圆(2n+1nsc)组成的复杂悬链线。所有刻度条,200 nm。(M) 对照和患者成纤维细胞单体(开环和超螺旋)和链状mtDNA的EM定量。误差条代表SEM。数据以百分比表示,表示每个研究组两次独立实验的平均值。
图5
图5。Catenane组以OriH为中心
(A和B)X形、含NCR的线粒体DNA分子的代表性电子显微照片及其解释。用PvuII/XhoI(A)或BamHI/ClaI(B)进行限制性酶消化,产生的物种具有映射到OriH区域的臂长:PvuII/XhoI为1.8 kb/2.5 kb,BamHI/ClaI为1 kb/2.5 kb。比例尺,200纳米。(C) 使用HincII限制来自对照、Top3α或Top1mt缺失细胞的mtDNA,通过2D琼脂糖凝胶电泳分离,并使用探针(a)检测。在缺乏Top3α的细胞中,可以看到X形分子作为X弧。(D) 去除Top3α和Top1mt的细胞的总DNA用指示的酶限制,用琼脂糖分离,并用探针(b)进行印迹。只有当探测到的碎片包含分子连接时,才能看到X形分子。(E) X形物种比例的量化,归一化为相同消化的线性物种水平。黑色条表示探针。虚线表示所用限制酶的位点。基因位点和关键序列元素显示在图表上方。
图6
图6。线粒体Top3α与BTR复合物无关
(A) 通过细胞组分的western blotting对BTR复合物蛋白质组分的线粒体定位,如图1A所示。图1A再现了Top3α印迹,以供参考。(B) 通过HeLa细胞裂解物的western blotting评估BTR复合物成分的消耗效率。β-actin用作负荷控制。箭头表示Top3α的两种形式(核和线粒体)。(C) BLM、RMI1和RMI2的siRNA缺失后mtDNA拷贝数和7S DNA水平的Southern blot分析,如(B)所示。28S rDNA用作加载对照。(D) BTR复合蛋白siRNA缺失后的mtDNA拓扑结构。用低浓度琼脂糖分离未切割的DNA(3 mg),进行印迹,并使用探针(a)进行检测。BamHI处理的DNA标志着线性mtDNA和大肠杆菌TopoI-处理的DNA标志着松弛的、开放的圆形mtDNA的迁移。
图7
图7。Top3α的缺失干扰了线粒体网络内类核的分离和分布
(A) 在指示的siRNA处理后,HeLa细胞的典型共焦显微镜图像显示DNA和TOM20的合并通道(上部面板)和DNA的单通道(下部面板)。比例尺,10μm。(B) (A)中黄色方框区域的放大图显示共焦(灰色,左侧)和g-STED(绿色火焰LUT,右侧)中的成像核仁。比例尺,600 nm。(C) 在指定的siRNA处理后,量化每个细胞的核仁数。核苷酸数量以对照siRNA处理的细胞的百分比表示(来自4个独立实验,分析n≥9个细胞)。误差条代表SEM。(D)在指定的siRNA条件下,由g-STED测定的类核的平均大小。从三个独立实验分析的类核数:对照siRNA=244;Top3αsiRNA=357;Top3α+Top1mt siRNA=361;RMI1 siRNA=393。误差条代表SEM。(E)人类线粒体中Top3α作用机制的模型。在mtDNA复制后,Top3β需要解析mtDNA半链烷并分离新合成的mtDNAs。线粒体Top3α活性的丧失导致线粒体DNA连锁和核仁分离受损。

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