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.2017年9月21日;8(60):101520-101534.
doi:10.18632/目标21148。 eCollection 2017年11月24日。

抗血管生成多模仿生肽对肝癌的治疗潜力

附属公司

抗血管生成多模仿生肽对肝癌的治疗潜力

穆斯塔法A Barbhuiya等。 肿瘤靶点. .

摘要

肝细胞癌(HCC)是全球癌症相关死亡的主要原因。由于筛查方法不足以及功能性肝储备有限的共同存在,治疗选择有限。肝移植是早期肝癌唯一的治疗方式。有多学科的治疗选择,如消融治疗、放射治疗和系统治疗,可用于晚期患者或无法手术的患者。对这些肝癌患者来说,治疗抵抗和进展是不可避免的。需要探索新的治疗方法以更好地管理肝癌。肝癌是一种高血管性肿瘤,许多促血管生成蛋白在肝癌中显著过度表达。在这里,我们探索了我们小组开发的抗血管生成、抗淋巴管生成和直接抗肿瘤的仿生IV型胶原衍生肽的治疗潜力。人肝癌细胞株HuH7、Hep3b和HepG2经肽处理后,细胞粘附和迁移明显中断。与先前描述的多峰抑制特性一致,该肽被发现抑制HepG2细胞中的c-Met和IGF1R信号,并阻断HepG2-条件培养基对微血管内皮细胞(MEC)管形成的刺激。此外,与未经治疗的对照组相比,小鼠HepG2肿瘤异种移植物的肽治疗显著抑制了生长。在转基因小鼠模型中,还发现该肽可以提高原位Myc诱导的HCC的存活率。从机制上讲,我们发现肽治疗降低了原位肝肿瘤的微血管密度,同时增加了细胞凋亡。这项研究显示了我们的仿生肽在肝癌治疗中的潜在治疗前景。

关键词:HGF;IGF1R;血管生成;c-Met;肝细胞癌。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突ASP是联合创始人,担任CSO,JJG是联合创始人并担任CTO,NBP是AsclepiX Therapeutics,LLC的高级研发总监。这些安排的条款由约翰·霍普金斯大学根据其利益冲突政策进行管理。

数字

图1
图1。体外AXT050对肝癌细胞的作用
(A)AXT050显著降低HuH7、Hep3b和HepG2肝癌细胞系的粘附性。数据表示为平均值±SEM;通过单向方差分析得出HuH7(p=<0.0001)、Hep3b(p=<0.0001)和HepG2(p=0.0001)。*,**,或***通过Tukey检验,将p值分别指定为≤0.05、0.01或0.001,以比较0μM AXT050样品的差异。(B)AXT050显著抑制HuH7、Hep3b和HepG2肝癌细胞系的迁移。数据表示为平均值±SEM;单因素方差分析显示HuH7(p=<0.0001)、Hep3b(p=<0.0001)和HepG2(p=<0.0001)。*,**,或***通过Tukey检验,将p值分别指定为≤0.05、0.01或0.001,以比较0μM AXT050样品的差异。(C)AXT050治疗(10μM、32μM和100μM)完全抑制HepG2肿瘤条件培养基中培养的HMEC的试管形成。
图2
图2。AXT050抑制肝癌细胞IGF1R和c-Met信号
(A)Western blotting显示AXT050治疗HepG2细胞后HGF介导的pMet、pAkt和pErk信号通路的失调。显示的数字是从原始膜的图像中裁剪出来的,这些膜在大约70-75 kDa处切割。按照该顺序,对pMet的顶部进行吸墨纸标记,对GAPDH、pAkt和pErk 1/2的底部进行吸墨图标记。由于这种顺序印迹技术,GAPDH的条带在pErk 1/2图像中仍然可见(最低条带)。(B)蛋白印迹显示AXT050治疗HepG2细胞后IGF1介导的IGF1R信号的失调。显示的数字是从原始膜的图像中裁剪出来的,这些膜在大约70-75 kDa处切割。顶部为pIGF1R,底部为GAPDH。(C、D)活化pMet、pAkt、pErk和pIGF1R信号带强度的半定量评估标准化为GAPDH,显示随着AXT050浓度的增加(10μM、32μM和100μM)Met和IGF1R的信号显著下调。数据表示为平均值±SEM(N=3);pMet(p=0.0009)、pAkt(p=0.0029)、pERK 1/2(p=0.002)和pIGF1R(p=0.003)通过单因素方差分析得出。***通过Tukey检验,与生长因子0μM AXT050处理样品相比,分别指定显著(<0.05)和高度显著(<0.01)差异。(E、F)具有代表性的蛋白质印迹显示了使用AXT050治疗后HepG2裂解物中Met、AKT、ERK 1/2(E)和IGF1R(F)的总蛋白水平。GAPDH作为加载控制提供。按照磷酸化当量(A和B)的描述制备印迹。
图3
图3。AXT050处理体内皮下HepG2异种移植瘤的延迟生长
(A)治疗方案:允许肿瘤生长到75毫米的体积,将5只小鼠随机分为两组:(1)不治疗,溶媒对照;(2) AXT050治疗。每天腹膜内给予处理臂中的小鼠单剂量10mg/kg体重的AXT050。(B)AXT050治疗后显著的肿瘤生长延迟(在第48天,对照组的平均值±SEM=797.9±262.9,(n=5);治疗的平均值±SEM=329.9±72.00,(n=5)p=0.002)。(C)治疗后两周,对照组和治疗组的肿瘤总体积显示肿瘤缩小。(D)AXT050治疗后肿瘤重量显著减轻(对照组的平均值±SEM=1980±349.9(n=5);治疗的平均值±SEM=1120±174.4,(n=5)p=0.004)。(E)AXT050抑制肿瘤生长体内治疗4周以上,肿瘤倍增4倍。Kaplan-Meier生存分析,其中该事件被认为是肿瘤四倍生存的时间。AXT050导致具有统计学意义的平均肿瘤生长延迟:AXT050=12天>车辆控制=8天(p=0.02)。
图4
图4。AXT050提高了Myc诱导的原发性肝癌小鼠的生存率,降低了HCC肿瘤微血管密度,增加了细胞凋亡
(A)治疗方案。八周龄时,通过从饮用水中去除强力霉素,在小鼠体内诱导Myc致癌基因。四周后,对小鼠腹部进行体检,以确定是否存在肝肿瘤。在确认腹部增大、出现所描述的苦行液后,将小鼠随机分为治疗组和对照组。治疗组小鼠每天腹腔注射一次10mg/kg AXT050(按体重计)。记录死亡人数以进行生存分析。(B)大体病理显示AXT050治疗小鼠的肿瘤负担减轻。(C)AXT050显著提高Myc诱导的原位肝肿瘤小鼠的生存率。Kaplan-Meier生存分析显示,AXT050治疗组(N=15)与对照组(N=15)小鼠的生存率存在显著差异。中位生存率AXT050=22天>车辆控制=8天(p=0.001)。(D)载体对照中肿瘤细胞广泛替代正常肝细胞(i)。治疗组肿瘤浸润范围较小,凋亡细胞较多(箭头,ii)。(E)裂解caspase 3免疫组化显示治疗组细胞凋亡增加。(F)显示裂解caspase 3阳性细胞平均百分比的直方图显著高于对照肿瘤(对照的平均±SEM=31.10±0.2982,(n=20)vs AXT050的平均±SEM=44.60±0.5956,(n=20),p<0.0001)。(G)CD31免疫组化显示治疗组的血管密度降低。(H)直方图显示,与对照肿瘤相比,AXT050治疗肿瘤中CD31染色的平均百分比显著降低(对照的平均±SEM=49.20±0.4115,(n=20)vs AXT050=37.50±0.8946,(n=20),p<0.0001)。
图5
图5。AXT050对肝癌细胞的多模式抗癌特性及可能作用机制在体外(抑制细胞迁移)和在本地小鼠模型中体内(诱导凋亡)

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引用人

工具书类

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