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.2017年9月22日;8(60):101345-101361.
doi:10.18632/oncotarget.21167。 eCollection 2017年11月24日。

MicroRNA-182通过靶向HOXA9下调人骨肉瘤细胞中Wnt/β-catenin信号传导,抑制增殖并促进凋亡

附属公司

MicroRNA-182通过靶向HOXA9下调人骨肉瘤细胞中Wnt/β-catenin信号传导,抑制增殖并促进凋亡

Zi-Feng Zhang先生等。 肿瘤靶点. .

缩回

摘要

我们研究了microRNA(miR)-182促进人骨肉瘤(OS)细胞凋亡和抑制增殖的机制。比较人类OS和正常细胞中miR-182和同源框A9(HOXA9)的表达水平。受试者分为OS组和正常组。我们分析了miR-182和Homeobox A9(HOXA9)的靶向关系。然后,将细胞分为空白组、阴性对照组、miR-182模拟物组、miR182抑制剂组、siRNA-HOXA9组或和miRNA-182抑制剂+siRNA-HOXA9组。采用CCK-8、流式细胞仪和伤口愈合试验检测细胞功能。此外,我们分析了异种移植小鼠模型中OS肿瘤的生长情况。双荧光素酶报告分析表明miR-182直接靶向HOXA9。与对照组相比,经miR-182模拟物或siRNA-HOXA9处理的骨肉瘤细胞中,反转录定量PCR和western blotting显示miR-182、WIF-1、BIM和Bax的表达增加,HOXA9、Wnt、β-catenin、Survivin、Cyclin D1、c-Myc、Mcl-1、Bcl-xL和蜗牛的表达减少。当使用miR-182模拟物或siRNA-HOXA9治疗时,骨肉瘤细胞也表现出细胞增殖、迁移和肿瘤生长减少,凋亡增加。相应地,在异种移植小鼠模型中,当细胞接受miR-182抑制剂治疗时,骨肉瘤的体积和生长增加,而接受miR-82模拟物或siRNA-HOXA9治疗时,肿瘤体积和生长减少。这些结果表明,miR-182通过抑制HOXA9的表达,下调Wnt/β-catenin信号传导,抑制细胞增殖,并促进骨肉瘤细胞凋亡。

关键词:同源盒A9;microRNA-182;骨肉瘤;wingless-type/β-catenin信号通路。

PubMed免责声明

利益冲突声明

利益冲突作者声明不存在利益冲突。

数字

图1
图1。OS与正常组织HOXA9表达的免疫组化分析
(A类)正常组织;(B类)OS组织。*P(P)< 0.05.
图2
图2。与正常组织相比,OS中miR-182、WIF-1、BIM、Bax、HOXA9、Wnt、β-catenin、Survivin、Cyclin D1、c-Myc、Mcl-1、Bcl-xL和蜗牛表达的RT-qPCR分析
*P(P)< 0.05.
图3
图3。与正常组织相比,OS中WIF-1、BIM、Bax、HOXA9、Wnt、β-catenin、Survivin、Cyclin D1、c-Myc、Mcl-1、Bcl-xL和蜗牛表达的Western blot分析
(A类)直方图显示OS与正常组织相比WIF-1、BIM、Bax、HOXA9、Wnt、β-catenin、Survivin、Cyclin D1、c-Myc、Mcl-1、Bcl-xL和蜗牛的相对表达;(B类)OS与正常组织蛋白质表达的Western blot图像比较;*P(P)< 0.05.
图4
图4。MiR-182在SOSP-9607、U-2OS和MG63细胞中的表达
*P(P)与SOSP-9607细胞相比,<0.05;#P(P)与MG63细胞相比,<0.05。
图5
图5。HOXA9是miR-182的靶点
(A类)miR-182的预测结合位点HOXA9型3′UTR;(B类)NC和miR-182模拟组荧光素酶活性的比较;*P(P)与NC组相比,<0.05。
图6
图6。转染后miR-182、WIF-1、β-catenin、BIM、Bax、HOXA9、Survivin、Cyclin D1、c-Myc、Mcl-1、Bcl-xL和蜗牛表达的RT-qPCR分析
(A类)显示miR-182相对表达的直方图,HOXA9型β-catenin和无线网络-1在6组中;(B类)直方图显示Survivin公司,c-Myc公司,细胞周期蛋白D1,以及蜗牛在6组中;(C类)直方图显示比姆,Mcl-1型,Bcl-xL公司,以及Bax公司在六组中。*P(P)与NC组相比,<0.05。
图7
图7。转染后各组WIF-1、BIM、Bax、HOXA9、β-catenin、Survivin、Cyclin D1、c-Myc、Mcl-1、Bcl-xL和蜗牛表达的Western blot分析
(A类)评估所有蛋白质的Western blot图像;(B类)直方图显示了六组中HOXA9、WIF-1和β-连环蛋白的相对表达;(C类)显示六组中c-Myc、Survivin、Snail和Cyclin D1相对表达的直方图;(D类)显示六组BIM、Mcl-1、Bcl-xL和Bax相对表达的直方图;*P(P)与NC组相比,<0.05。
图8
图8。CCK-8分析六组细胞增殖的差异
图9
图9。PI染色分析六组细胞周期进展的差异
(A类)显示六组hFOB细胞细胞周期期差异的图像;(B类)六组中处于指定细胞周期阶段的hFOB细胞百分比;(C类)显示六组U-2OS细胞细胞周期期差异的图像;(D类)六组中处于所示细胞周期阶段的U-2OS细胞百分比;*P(P)与空白组和NC组相比,<0.05。
图10
图10。Annexin-V/PI染色分析OS细胞凋亡
(A类)hFOB细胞凋亡分析;(B类)六组hFOB细胞凋亡百分比的差异;(C类)U-2OS细胞凋亡分析;(D类)六组间凋亡U-2OS细胞百分比的差异;*P(P)与空白组和NC组相比,<0.05。
图11
图11。用伤口愈合试验分析细胞迁移
(A类)六组hFOB和U-2OS细胞迁移的图像比较;(B类)六组之间hFOB和U-2OS细胞伤口闭合的比较;伤口闭合:(距离0小时–距离48小时)/距离0小时;*P(P)与空白组和NC组相比,<0.05。
图12
图12。六组异种移植瘤大小和生长率的比较
(A类)细胞生长;(B类)肿瘤大小;(C类)六组HOXA9、WIF-1和β-catenin蛋白表达的Western blot分析;(D类)显示六个实验组裸鼠肿瘤组织中HOXA9、WIF-1和β-catenin相对表达的直方图;(E类)显示六组小鼠肿瘤组织中c-Myc、Survivin、Snail和Cyclin D1相对表达的直方图;(F类)显示六组小鼠肿瘤组织中BIM、Mcl-1、Bcl-xL和Bax相对表达的直方图;*P(P)与空白组和NC组相比,<0.05。

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