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.2017年12月20日;96(6):1264-1271.e.5。
doi:10.1016/j.neuron.2017.11.018。 Epub 2017年11月30日。

相反方向的微管之间的分化控制着极化的神经元运输

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相反方向的微管之间的分化控制着极化的神经元运输

罗德里克·帕塔斯等。 神经元. .

摘要

微管对神经元的极化运输至关重要,但其组织如何将运动蛋白引导至轴突或树突尚不清楚。由于不同的电机识别不同的微管特性,我们使用光学纳米显微镜检查微管取向、稳定性和修饰之间的关系。对超分辨率微管的电机进行纳米追踪并确定其极性,结果表明,在树突中,稳定的和乙酰化的微管大多为负向,而动态的和酪氨酸化的微管则相反。此外,具有相似取向和修饰的微管形成束,偏向运输。重要的是,由于脉冲导向的激动素-1选择性地与乙酰化微管相互作用,该组织引导该马达离开树突进入轴突。相比之下,激动素-3更喜欢酪氨酸化的微管,可以进入轴突和树突。将不同的微管亚群分离成相反方向的束,构成了神经元微管细胞骨架的关键结构原理,使不同的运动蛋白能够极化分类。

关键词:轴突;树枝晶;驱动蛋白;微管定向;微管极性;微管;运动蛋白;神经元极性;神经元;极化传输。

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数字

图1
图1
motor-PAINT:微管超分辨成像及其定向(A)分析:提取和固定后,添加纯化和荧光标记的马达,并通过单向运行绘制微管阵列。另请参见图S1和S2。(B) 通过对数千个运动结合事件进行亚像素定位获得的提取U2OS细胞的超分辨率图像。(C) 左:同一细胞的超分辨率重建,所有微管段均根据其绝对方向着色。图例箭头指向加号的方向。右:缩放显示自由微管正负端。另请参见图S2。(D) 在COS7细胞中诺卡唑洗脱后获得的中心体微管阵列的定向映射。(E) 培养大鼠海马神经元(DIV16–DIV17)树突和轴突微管的基于运动的超分辨率重建。顶部图像基于所有绑定事件(每个图像>42405个事件)。底部图像为绝对方向的彩色编码。轨迹插值用于所有基于跑步的图像。(F) 5μm长的近端、中部和远端树突状节段向内和向外运动的驱动蛋白定量,分别反映末端向外和向内的微管数减。(G) 根据(F)中所示的图表,近端、中部和远端树突状节段中负端外向型微管的百分比。(H) 近端、中部和远端树突节段中负向终末外向微管的平均百分比(平均值±SEM,n=7个神经元的每个类别的7个节段)。比例尺,5μm(B),1μm(D和E)。
图2
图2
树枝状微管阵列通过定向和修饰实现空间分离(A)树突的三个示例显示了优先极性束(左右)。基于所有绑定事件(顶部)、向内运行(右中部)、向外运行(左中部)或双向运行(底部)的基于马达的超分辨率重建。轨迹插值用于基于跑步的图像。(B) 沿着(A)所示的线向内和向外指向的微管的强度分布。另请参见图S3。(C) 对于(A)中标记为1或2的区域,向外和向内管路之间的比率或相反。DIV2神经元胞体酪氨酸化和乙酰化MT免疫染色的平均值±SEM。(D)STED图像(顶部)和单个酪氨酸化通道(左下方)和乙酰化通道(右下方)。(E) 从DIV2和DIV7轴突缩放,突出显示酪氨酸化和乙酰化MT之间的空间隔离。沿着指示线的相应强度剖面显示在右侧图像的旁边。另请参见图S4。比例尺,1μm(A和E),5μm(D)。
图3
图3
负端外向微管更稳定,乙酰化程度更高(A和B)在对照条件下(A)或与4μM诺可唑(B)孵育2.5小时后,酪氨酸化和乙酰化微管免疫染色的DIV9神经元的概述和缩放。(C和D)在对照条件下(C)或诺卡唑治疗后(D)对树突状节段进行motor-PAINT。(E) 对照组和诺卡唑处理的神经元树突段中负向终末外向微管的百分比。平均值±SD,对照组:n=7,诺卡唑:n=16,通过3个独立实验获得。t试验:∗∗∗p<0.001。(F) 树突节段的负端入(左)、负端出(中)和乙酰化微管(右)的相关重建图像。另请参见图S5。(G) 沿着(F)所示的线测量微管方向和乙酰化微管蛋白通道的强度分布。比例尺,5μm(A和B),1μm(C、D和F)。
图4
图4
在表达GFP-kif5a后1天,对GFP和乙酰化微管蛋白或GFP和酪氨酸化微管素进行严格染色,在DIV4极化神经元胞体(A)或神经突(B)的神经元轴突和树突(A和B)STED图像中,Kinesin-1优先选择稳定的、乙酰化的微管。另请参见图S6。(C) 图示树突微管组织的现有和新模型的卡通。微管上的箭头表示加号。激动素-1和激动素-3分别优先在稳定/乙酰化和动态/酪氨酸化微管上移动。(D) 新模型可以解释Kinesin-1选择性进入轴突的原因。箭头表示传输方向性偏差(另请参见图S7)。比例尺,2μm(A和B)。

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引用人

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工具书类

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