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.2018年1月1日;27(1):160-177.
doi:10.1093/hmg/ddx397。

ALS-FTLD蛋白CHCHD10的体内外研究揭示了新的线粒体拓扑结构和蛋白质相互作用

附属公司

ALS-FTLD蛋白CHCHD10的体内外研究揭示了新的线粒体拓扑结构和蛋白质相互作用

S R Burstein公司等。 人类分子遗传学. .

摘要

含有10(CHCHD10)(一种功能尚不清楚的线粒体孪生CX9C蛋白)的线圈-线圈-线圈螺旋-线圈螺旋结构域的突变会导致肌病、运动神经元疾病、额颞叶痴呆和帕金森氏病。在这里,我们研究了CHCHD10拓扑结构及其蛋白相互作用组,以及CHCHD10-缺失或野生型细胞中疾病相关突变表达的影响。我们发现CHCHD10与线粒体膜间空间的膜相关,在那里它与密切相关的蛋白质CHCHD2相互作用。此外,CHCHD10和CHCHD2都与p32/GC1QR相互作用,p32/GC1 QR是一种具有多种细胞内和细胞外功能的蛋白质。CHCHD10和CHCHD2的半衰期较短,表明其具有调节功能而非结构功能。CHCHD10敲除的细胞系没有显示生物能量缺陷,但意外地积累了过量的线粒体内铁。在小鼠中,CHCHD10在许多组织中表达最多,主要在心脏、骨骼肌、肝脏和特定的中枢神经系统区域,尤其是黑质的多巴胺能神经元和脊髓神经元,这与CHCHD10突变相关的病理学一致。纯合子CHCHD10基因敲除小鼠是活的,没有大体表型,在大脑、心脏或骨骼肌中没有生物能量缺陷或超微结构线粒体异常,表明CHCHD10-缺失的功能冗余或代偿机制在体内发生。相反,表达S59L或R15L突变型CHCHD10而非WT的细胞会损害线粒体能量代谢。综上所述,从我们的体外和体内研究中获得的证据表明,CHCHD10突变体通过获得毒性功能机制而不是功能丧失导致疾病。

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数字

图1。
图1。
CHCHD10需要双胞胎CX公司9C类结构域和MTS定位于线粒体.(A类)HeLa细胞对CHCHD10(绿色)和细胞色素的免疫细胞化学c(c)(红色)。(B类)转染WT CHCHD10-Myc的HeLa细胞的免疫细胞化学,并对Myc(绿色)和Tom20(红色)进行免疫染色。(C类)C122S CHCHD10-Myc转染HeLa细胞进行Myc(绿色)和Tom20(红色)免疫染色()N-del CHCHD10-Myc转染HeLa细胞,对Myc(绿色)和Tom20(红色)进行免疫染色。酒吧 = 5微米。
图2。
图2。
CHCHD10与CHCHD2和p32相互作用。(A-E公司)使用指定的提取条件,从HEK293线粒体中提取CHCHD10、CHCHD2、丝裂原和p32,在线性蔗糖梯度中进行蔗糖梯度沉降分析。用血红蛋白(Hb)和乳酸脱氢酶(LDH)校准梯度。M、 线粒体;例如,线粒体总提取物。(F类)CHCHD10-FLAG转染细胞线粒体中的FLAG-Co-IP。免疫印迹:FLAG和CHCHD2。(G公司)CHCHD2-FLAG转染细胞线粒体中的FLAG-Co-IP。免疫印迹:FLAG和CHCHD10。(H(H))来自mock(pcdna)或CHCHD10-FLAG转染细胞的线粒体中的FLAG-Co-IP。免疫印迹:CHCHD10。()使用CHCHD2-FLAG或CHCHD10-FLAG转染细胞的FLAG Co-IP。免疫印迹:FLAG和p32。(J型)使用CHCHD10-FLAG转染细胞的FLAG Co-IP。免疫印迹:FLAG,丝裂原。(K(K))丝裂霉素Co-IP。免疫印迹:丝裂原,CHCHD10,Tim23。
图3。
图3。
CHCHD2和CHCHD10的软骨下拓扑结构。(A类)通过线粒体低渗膨胀制备的线粒体(M)和有丝分裂体(Mp)中的蛋白酶K保护试验。作为对照,对线粒体样品进行超声处理(Son),以充分接触蛋白酶。在本试验中,使用的对照物为TIMM50(面向膜间间隙的内跨膜蛋白)和HSP60(基质蛋白)。(B类)CHCHD2(D2)和CHCHD10(D10)通过超声波和碱性碳酸盐(pH 11.5)萃取增溶。对分离自HEK293细胞的线粒体(M)进行超声处理,并通过离心分离可溶性(S)和膜结合部分。随后用碱性碳酸钠提取颗粒,并将其分为上清液(CS)和颗粒(CP)。使用识别CHCHD2、CHCHD10、p32的抗体和对照COA3和SCO1(膜蛋白)、SDHA和CMC1(与IM松散结合)以及LON-P(可溶性蛋白)的抗体,通过免疫印迹分析不同组分(C类)通过超声和离心将分离的线粒体分离成内膜和外膜。在30–60%的蔗糖梯度下,通过蔗糖梯度沉淀法对粗膜组分进行分析。在每种情况下,在超速离心后,收集15个梯度组分,用SDS-PAGE分离,并使用VDAC(OM标记)、COX1(IM标记)、CHCHD2和CHCHD10抗体进行免疫印迹分析。()使用增加洗涤剂:蛋白质比率来溶解线粒体中的洋地黄素。溶解后,通过离心分离可溶性(S)和不溶性物质(P),并使用指示的抗体进行免疫印迹分析。
图4。
图4。
CHCHD10和CHCHD2换手率和沉默。(A类)在用环己酰亚胺(CHX)处理指定小时数的细胞的匀浆中使用针对CHCHD10、CHCHD2、p32的抗体的蛋白质印迹。(B类)CHX治疗后带强度的量化。数据表示为每种蛋白质在0小时时带强度的百分比。n个 =3. (C类)对CHX处理的细胞进行Western blot检测,检测时间为指定的小时数,有无MG132处理。(E类)细胞匀浆经打乱(scra)siRNA或CHCHD10 siRNA处理48小时后的Western blot。n个 =5 *P(P) <0.05. (F-G型)代表性蓝色天然凝胶,并在HEK293细胞中用超临界RNA或siD10 siRNA处理72小时后对OXPHOS复合物进行定量。使用以下抗体检测OXPHOS复合物:复合物I-39 kDa、复合物V-亚单位α、复合物III-core2、复合物IV-2、复合物II、70 kDa。数据以紧急停堆百分比表示。n个 =3. (H(H))用超临界RNA或CHCHD10 siRNA处理的HEK293细胞的完整细胞呼吸。n个 =6. ()用scrk或CHCHD10 siRNA处理的HEK293细胞中的COX活性。n个 =3. (J型)用超临界RNA或CHCHD10 siRNA处理的HEK293细胞中测得的ATP合成。n个 =3. (K(K))石墨炉原子吸收光谱法测定介质中铁的含量(n个 =5) 线粒体或细胞溶质部分。线粒体和细胞溶质部分(n个 =4) 铁水平表示为相对于紧急停堆的折叠变化。(L(左))稳定CHCHD10敲除或紧急停搏shRNA控制HEK293细胞系线粒体的代表性电子显微照片。酒吧 = 500纳米。(M(M))在HEK293 CHCHD10敲除或紧急停堆shRNA控制中使用Fura-FF测量线粒体钙摄取的痕迹。
图5。
图5。
CHCHD10在人皮肤成纤维细胞中的沉默。(A类)用Scra或CHCHD10 siRNA处理人皮肤成纤维细胞,并在含有GLU或GAL的培养基中培养5天。(B类)GLU或GAL培养基中培养5天后的细胞数。n个 =3. (C类)完整细胞耗氧量(OCR)。n个 =6. ()添加FCCP(1μM)后解偶联OCR。n个 =6; *P(P) <0.05. (E类)对SCR和siD10人皮肤成纤维细胞进行CHCHD10(绿色)和细胞色素c(红色)免疫染色的代表性图像。酒吧 = 50微米(F类H(H)). 长宽比(AR)、形状因子(FF)、每个细胞的线粒体数量(Nc),以超临界状态百分比表示。n个 =30个单元格用于加扰n个 =CHCHD10 siRNA的28个细胞*P(P) <0.05.
图6。
图6。
CHCHD10在小鼠组织中的表达。(A类)使用从WT小鼠组织制备的粗线粒体提取物中的CHCHD10、CHCHD2和Tim23抗体(作为线粒体负荷控制)进行代表性Western blot。每个样品装载50μg蛋白质。联合国安全理事会 = 脊髓。(B类)CHCHD10、CHCHD2和IgG的输入、流经和洗脱组分控制心脏线粒体中的Co-IP。免疫印迹:CHCHD10,CHCHD2,p32,丝裂原。(C类)WT小鼠黑质(SN)区脑切片CHCHD10免疫反应性。PAG公司 = 中脑导水管周围灰质N个 =趾间核。左侧面板:条 = 50微米。右侧面板:条 = 10微米。(E类)脑切片CHCHD10和TH抗体染色的免疫组织化学。酒吧 = 直径100µm,bar = E中为10µm(F类G公司). CHCHD10和ChAT抗体染色脊髓切片的免疫组织化学。巴尔 = 100µm英寸F,巴 = G中为30µm。
图7。
图7。
CHCHD10KO小鼠的脑、骨骼肌和心脏线粒体生物能量学和超微结构。(A类)用于在CHCHD10KO小鼠中敲低CHCHD10表达的策略的示意图。(B类)100天龄WT和CHCHD10KO(KO)小鼠大脑、骨骼肌(腓肠肌)和心脏匀浆的代表性Western blot。每条通道装载100μg蛋白质,并用CHCHD10、CHCHD2和Tim23抗体(线粒体装载控制)探测膜。(C类)ADP刺激前后WT和CHCHD10KO脑线粒体的耗氧率(状态2)。n个 =3. ()WT和CHCDH10KO脑线粒体ATP合成速率。n个 =3. (E类)WT和CHCHD10KO黑质的典型电子显微照片。过氧化物酶标记显示TH-免疫活性树突。酒吧 = 500纳米。(F类)骨骼肌线粒体中WT和CHCHD10KO的耗氧率。n个 =7; *P(P) <0.05, (G公司)WT和CHCDH10KO骨骼肌线粒体的ATP合成速率。n个 =7. (H(H))WT和CHCHD10KO骨骼肌(比目鱼肌)的代表性电子显微照片。()WT和CHCHD10KO心脏线粒体的耗氧率。n个 =4. (J型)WT和CHCDH10KO心脏线粒体的ATP合成速率。n个 =4. (K(K))WT和CHCHD10KO右心室壁的典型电子显微照片。箭头表示CHCHD10KO中存在电子致密结构,但WT.m中不存在 = 线粒体Bar = 500纳米。
图8。
图8。
HEK293细胞中突变CHCHD10过度表达。(A类)对照HEK293细胞和转染WT CHCHD10-FLAG、R15L CHCHD10-2FLAG或S59L CHCHD10-FLAG的细胞的粗线粒体部分的Western blot。(B类)WT、R15L或S59L CHCHD10-FLAG的Co-IP与FLAG抗体或IgG对照。免疫印迹:FLAG,CHCHD2。(C类)CHX治疗后Western blot条带强度的量化。数据表示为0小时时FLAG强度的百分比。n个 =4. ()转染WT CHCHD10-Myc、R15L CHCHD10-2Myc或S59L CHCHD10-Myc的HeLa细胞的代表性图像,并对Myc(绿色)或Tom20(红色)进行免疫染色。酒吧 = 5微米。(E类)CHCHD10和Tom20共定位百分比n个 =15个细胞用于WT CHCHD10-Myc,n个 =用于R15L CHCHD10-Myc的22个细胞,n个 =S59L CHCHD10-Myc的25个细胞。(F–G公司)FCCP治疗前后用空载体(pcdna)或CHCHD10-FLAG转染细胞的耗氧率(OCR)(1μM)。n个 =3. (H(H))用空载体(pcdna)或CHCHD10-FLAG转染细胞的ATP合成。n个 =3到5。
图9。
图9。
提出线粒体IM中蛋白质相互作用的模型。(A类)使用ProtScale服务器(58)获得的D2和D10的Kyte和Doolitle疏水性图。(B类)用RaptorX结构预测服务器(59)模拟D2和D10的结构。使用TMPred服务器预测假定的跨膜螺旋(60)。形成孪生CX的半胱氨酸残基9显示了CHCHD2和CHCHD10中的C基序。(C类)CHCHD2和CHCHD10与IM相互作用的假设模型。该示意图包含了用GRAMMX(Vakser.compbio.ku.edu)获得的D2(绿色)和D10(蓝色)之间相互作用的模拟,以及来自Jiang的p32(PDB#1P32)的结构等。(40).

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