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.2017年7月17日;6(7):e362。
doi:10.1038/oncsis.2017.64。

天冬氨酸β-羟化酶干扰肝细胞癌线粒体DNA稳定性和功能

附属公司

天冬氨酸β-羟化酶干扰肝细胞癌线粒体DNA稳定性和功能

C唐等。 肿瘤发生. .

摘要

肝细胞癌(HCC)线粒体基因组异常及其功能的机制目前尚不清楚。我们之前的研究表明,肝癌组织中天冬氨酸β-羟化酶(ASPH)的表达增加,这与肿瘤侵袭性和预后较差有关。目前,我们意外地在纯化的线粒体蛋白组分中观察到ASPH的存在。此外,外源性和内源性表达的ASPH的免疫染色显示与线粒体生物标记物共定位。本研究旨在探讨线粒体ASPH是否参与HCC线粒体功能障碍。我们的结果表明,肝癌组织中ASPH过度表达与置换环(D-loop)和NADH脱氢酶亚基1(ND-1)拷贝数减少以及D-loop突变增强有关,表明线粒体DNA(mtDNA)稳定性受到破坏。mtDNA拷贝数减少与HCC侵袭性临床病理特征相关。ASPH的强制表达导致线粒体DNA完整性的丧失伴随着线粒体功能障碍,其特征是线粒体膜电位异常、ATP生成减少和活性氧增加。相反,siRNA敲低肝癌细胞株中的ASPH对线粒体DNA的完整性和功能有相反的影响。质谱和免疫共沉淀进一步证实ASPH与组蛋白H2A成员X(H2AX)相互作用。ASPH过表达减少了H2AX和线粒体转录因子A(mtTFA)之间的相互作用,mtTFA是线粒体DNA复制的重要DNA结合蛋白,从而减少了mtTFA与D-loop区域的结合。总之,我们的结果表明,ASPH过表达通过H2AX-mtTFA信号破坏线粒体DNA的完整性,从而影响HCC中的线粒体功能。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1
图1
ASPH定位于肝癌细胞线粒体。()用抗ASPH抗体和线粒体标记物MitoTracker对MHCC-97内源性ASPH免疫染色进行染色L和EHBC-512细胞。绿色:ASPH蛋白染色;红色:线粒体细胞器染色。采用共聚焦荧光显微镜在×600倍放大下拍摄图像,用于油浸。(b条)用抗GFP抗体和MitoTracker对HepG2和Huh-7细胞中外源性表达的绿色荧光蛋白(GFP)融合ASPH免疫染色进行染色。图像是如上所述拍摄的。(c(c))免疫印迹法检测MHCC-97线粒体和细胞质中内源性ASPH的存在L和EHBC-512细胞。(d日)免疫印迹法检测HepG2和Huh-7细胞线粒体和细胞质部分存在外源表达的GFP融合ASPH。对于b条d日,mito:线粒体蛋白的分数;细胞质:细胞质蛋白质的一部分。热休克蛋白60(HSP60)和电压依赖性阴离子通道(VDAC)是线粒体细胞器的生物标志物。Calnexin是内质网的生物标志物。
图2
图2
ASPH表达水平影响肝癌组织中mtDNA的稳定性。(,b条)从肿瘤和匹配的非肿瘤组织中提取的mtDNA中ND-1和D-loop相对拷贝数的方框图(n个=71),通过实时PCR检测并归一化为β-肌动蛋白DNA的数量。(c(c))基于Sanger测序确定的D-loop区域单核苷酸变异量的肿瘤和非肿瘤组织亚群百分比。在相应的栏中标记每个亚组的患者人数。(d日,电子)实时聚合酶链反应(real-time PCR)检测高肝癌患者亚组中肿瘤ND-1和D-loop拷贝数与匹配非肿瘤组织的比率(n个=34)或低(n个=37)ASPH表达。((f))Sanger测序检测的肝癌患者线粒体DNA D环区有或无体细胞突变的患者数量(n个=34)或低(n个=37)ASPH表达。对于所有方框图,方框内的条带为平均值,胡须末端代表所有数据的2.5-97.5个百分点的最小值和最大值**P(P)<0.01, *P(P)与非肿瘤组织组或ASPH高表达组相比,<0.05。
图3
图3
ASPH表达水平影响肝癌细胞株mtDNA的稳定性。()与对照细胞相比,ASPH过表达的HepG2和Huh-7细胞的mtDNA中相对ND-1(左)和D-环(右)拷贝数的改变。(b条)MHCC-97线粒体DNA中相对ND-1(左)和D-loop(右)拷贝数的改变与对照细胞相比,具有沉默ASPH的L和EHBC-512细胞。对于b条,mtDNA拷贝数通过实时PCR检测并归一化为β-肌动蛋白DNA的数量。(c(c))根据D-loop区域单核苷酸变异量,用ASPH或对照载体过度表达的HepG2和Huh-7细胞亚克隆的百分比。(d日)MHCC-97亚克隆的百分比根据D-loop区域的单核苷酸变异量,用ASPH siRNA或对照载体过度表达的L和EHBC-512细胞。对于c(c)d日,通过Sanger测序鉴定D-loop突变,并在相应的列中标记各组中的亚克隆数。所有数据均显示为至少三个独立实验的平均值±标准差*P(P)<0.05, **P(P)与矢量组相比<0.01。vec、ASPH和siASPH表明细胞株分别过度表达载体、ASPH及ASPH-siRNA。
图4
图4
ASPH调节HCC细胞系的线粒体功能。(,b条)用MitoTracker Red染色检测线粒体活性,并用流式细胞仪检测用ASPH和对照载体或MHCC-97过度表达的HepG2和Huh-7细胞中的线粒体活性用ASPH siRNA和对照载体过度表达的L和EHBC-512细胞。荧光计数曲线下面积(AUC)用于定量。(c(c),d日)用四甲基罗丹明乙酯(TMRE)染色检测线粒体膜电位,并用流式细胞仪检测用ASPH和对照载体或MHCC-97过度表达的HepG2和Huh-7细胞用ASPH siRNA和对照载体过度表达的L和EHBC-512细胞。AUC用于量化。(电子,(f))通过商业生物发光试验检测ASPH和对照载体(MHCC-97)过度表达的HepG2和Huh-7细胞中的细胞内ATP浓度L和EHBC-512细胞用ASPH siRNA和对照载体过表达。相对发光单位(RLU)用于定量。所有数据均显示为至少三个独立实验的平均值±标准差**P(P)<0.01, *P(P)与载体组相比,<0.05。vec、ASPH和siASPH表明细胞株分别过度表达载体、ASPH及ASPH-siRNA。
图5
图5
ASPH调节HCC细胞株中ROS的生成。(,b条)通过细胞内H2O2浓度表征和分析细胞内ROS生成,并通过流式细胞仪检测用ASPH和对照载体或MHCC-97过度表达的HepG2和Huh-7细胞中的ROS生成用ASPH siRNA和对照载体过度表达L和EHBC-512细胞。(c(c),d日)实时PCR检测ASPH或MHCC-97过表达HepG2和Huh-7细胞中与ROS生成和螯合相关的多个基因的mRNA表达水平比率将沉默ASPH的L细胞和EHBC-512细胞分配给对照组。所有数据均显示为至少三个独立实验的平均值±标准差**P(P)<0.01, *P(P)与载体组相比,<0.05。vec、ASPH和siASPH表明细胞株分别过度表达载体、ASPH及ASPH-siRNA。
图6
图6
在肝癌细胞系中,ASPH与mtTFA竞争与H2AX的相互作用。()用HA抗体或myc抗体免疫沉淀法检测293细胞中外源表达的HA标记的ASPH和myc标记的H2AX之间的相互作用。(b条)MHCC-97中内源性ASPH与H2AX的相互作用用ASPH抗体或H2AX抗体免疫沉淀法检测L细胞。(c(c))ASPH过度表达对mTFA–H2AX相互作用的影响。用ASPH、POLG和mTFA抗体通过免疫印迹法进一步分析用ASPH过度表达的HepG2细胞和对照载体中H2AX抗体免疫沉淀的蛋白复合物。(d日)通过染色体免疫沉淀(ChIP)-PCR分析鉴定D环区中mTFA结合mtDNA基序。mTFA抗体免疫沉淀MHCC-97中的蛋白-DNA复合物L细胞。使用覆盖D-loop区域的八对引物进一步扩增假定的结合mtDNA基序,这些引物指定为P1到P8。引物集4(P4)的扩增子在蛋白质-DNA基序中富集**P(P)与IgG组相比<0.01。(电子)通过ChIP-PCR分析,ASPH过度表达对mTFA与D-loop区域结合概率的影响。在ASPH或MHCC-97过度表达的HepG2细胞中,分析mTFA-DNA复合体中以P4扩增子为特征的D-loop区域的数量与载体过度表达的对照组相比,ASPH沉默的L细胞。所有数据均显示为至少三个独立实验的平均值±标准差**P(P)与载体组相比<0.01。

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引用人

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