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.2017年9月;16(3):3201-3207.
doi:10.3892/mmr.2017.6987。 Epub 2017年7月14日。

神经肽对骨髓间充质干细胞向神经元样细胞分化的影响

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神经肽对骨髓间充质干细胞向神经元样细胞分化的影响

朱敬玲等。 分子医学代表. 2017年9月.

摘要

虽然已知神经营养因子神经肽参与神经发育,但这种化合物对细胞分化的影响尚不清楚。本研究表明,神经肽治疗可诱导大鼠骨髓间充质干细胞(rBM‑MSCs)分化为神经元样(NL)细胞。在这些分析中,rBM‑MSCs与0.5µg/ml神经毒素孵育24小时。诱导后,27%的rBM‐MSCs表现出典型的NL细胞形态。随后,通过检测神经元标志物的表达和分析细胞功能来表征NL细胞。研究结果表明,神经肽治疗产生的NL细胞表达神经元标记物神经元特异性烯醇化酶和微管相关蛋白2,并分泌神经递质5-羟色胺。此外,NL细胞表现出一定的部分神经电生理功能。总之,神经肽治疗可能是诱导骨髓间充质干细胞向NL细胞分化的有效方法。这可能为疾病建模和基于细胞的疗法的开发提供一种替代的、潜在的补充工具。

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图1。
图1。
rBM-MSC的特征。(A) 原代培养的rBM-MSC呈纺锤形或多边形,培养96小时后形成菌落。(B) 继第三代之后,细胞表现出成纤维细胞样形态(×100放大倍数)。间接免疫荧光分析显示细胞表面标记物(C)CD29、(D)CD44和(E)CD90呈阳性表达,但(F)CD34和(G)CD45无阳性表达。(H) 控制单元(放大倍数,×200)。rBM-MSCs,大鼠骨髓源间充质干细胞。
图2。
图2。
分化条件的优化。(A) 通过相差显微镜观察到神经肽治疗组中神经样MSCs的形成。诱导后24小时,所有组的MSC阳性数量最高。这些值与其他时间点的值有显著差异(P<0.05)。(B) 诱导24小时后,每个神经肽治疗组的神经样MSC数量*与0.5µg/ml神经肽组相比,P<0.05。(C) 通过台盼蓝染色分析0.5µg/ml神经肽诱导组的MSC细胞活力*与对照组相比,P<0.05。间充质干细胞。
图3。
图3。
神经毒蛋白处理的rBM-MSC中神经元特异性蛋白的形态和表达模式的表征。虽然(A)对照组的细胞与成纤维细胞相似,但(B)分化的rBM-MSC表现出神经元样细胞形态。细胞体浓缩并变得不可折射,细胞组成具有双极或多极长突起的网络(放大倍数×200)。(C-H)间接免疫荧光法检测神经肽诱导后(放大×400)的(C和D)NSE、(E和F)MAP2和(G和H)GFAP的表达。(一) 通过对神经肽诱导细胞和对照细胞中NSE、MAP2和GFAP表达的western blot分析,也获得了类似的结果。rBM-MSCs,大鼠骨髓间充质干细胞;神经元特异性烯醇化酶;微管相关蛋白-2;胶质纤维酸性蛋白。
图4。
图4。
神经肽处理的rBM-MSC的神经功能特征。(A) 在电压钳条件下,通过全细胞记录,在对照细胞中未观察到明显的离子通道开放。(B) 向外延迟整流器K+在神经肽诱导的细胞中检测到电流。(C) 细胞在−60 mV电压下被钳制,去极化步骤从−100 mV到60 mV,增量为20 mV。(D)采用薄层色谱法检测神经肽诱导的rBM-MSC中神经递质5-HT的表达和分泌。诱导组在5-HT的预期部位出现特定点,而对照组没有出现。1、标准5-HT组;2、神经肽组;3、对照组。rBM-MSCs,大鼠骨髓间充质干细胞;5-HT,5-羟色胺。

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