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.2017年7月7日7:8:16003。
doi:10.1038/ncomms16003。

MiR-497~195簇通过维持内皮Notch和HIF-1α活性,在与成骨相关的过程中调节血管生成

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MiR-497~195簇通过维持内皮Notch和HIF-1α活性,在与成骨相关的过程中调节血管生成

米扬等。 国家公社. .

摘要

一种特殊的骨血管亚型,CD31和内粘蛋白(CD31)强阳性你好Emcn公司你好)被认为是血管生成和骨生成的耦合。CD31型的丰度你好Emcn公司你好血管在老化过程中减少。这里我们显示了miR-497~195簇在CD31中的高表达你好Emcn公司你好内皮细胞在衰老过程中逐渐减少。内皮细胞中miR-497~195缺失的小鼠表现出较少的CD31你好Emcn公司你好相反,小鼠内皮细胞中miR-497~195的转基因过度表达可缓解CD31型的年龄相关性减少你好Emcn公司你好血管和骨丢失。miR-497~195簇通过靶向F-box和WD-40结构域蛋白(Fbxw7)以及具有跨膜结构域的脯氨酸4-羟化酶(P4HTM)维持内皮Notch活性和HIF-1α稳定性。值得注意的是,通过静脉注射适配体agomiR-195,内皮素特异性激活miR-195刺激CD31你好Emcn公司你好老龄小鼠的血管和骨形成。总之,我们的研究表明miR-497~195调节血管生成和骨生成,可能是年龄相关性骨质疏松症的潜在治疗靶点。

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数字

图1
图1。MiR-497~195簇在CD31中强烈表达你好Emcn公司你好内皮细胞。
()CD31中解除调控的miRNAs的微阵列分析结果你好Emcn公司你好和CD31Emcn公司内皮细胞(H型内皮细胞和L型内皮细胞)。(n个=每组3人)。(b条)H型内皮细胞和L型内皮细胞miR-195/miR-497水平的qRT-PCR分析。(n个=来自三个独立实验的每组5人)。(c(c),d日)miR-195水平的qRT-PCR分析(c(c))和miR-497(d日)不同年龄段小鼠内皮细胞的表达。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(e(电子),(f))miR-195的年龄相关变化(e(电子))和miR-497((f))来自33名人类女性的内皮细胞中的水平。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05, (b条,学生的t吨-测试;(c(c),d日),方差分析(ANOVA))。
图2
图2。CD31型你好Emcn公司你好随着年龄的增长,血管和骨形成减少。
()CD31(绿色)、Emcn(红色)和Osterix(白色)免疫染色的代表性图像。Nuclei,DAPI(蓝色)。比例尺,100微米。(b条)Osterix的定量分析+股骨远端的骨祖细胞。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(c(c),d日)FACS分析点图(c(c))H型EC的定量(d日)来自指定年龄组的长骨。(n个=来自三个独立实验的每组6只小鼠)。(e(电子)——)典型的微机断层扫描(μCT)图像(e(电子))和定量μCT分析((f)——)1月龄、3月龄和12月龄WT小鼠股骨骨小梁微结构的研究。(Tb.BV/TV,每组织体积的小梁骨体积;Tb.N,小梁数;Tb.Th,小梁厚度;Tb.Sp,小梁分离。n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05,(方差分析(ANOVA))。
图3
图3。内皮细胞特异性MiR-497~195簇敲除小鼠显示较少的CD31你好Emcn公司你好血管形成。
()1个月龄、3个月龄和12个月龄小鼠股骨CD31(绿色)、Emcn(红色)和Osterix(白色)免疫染色的代表性图像MiR-497~195液氧/液氧和miR-497~195敲除(miR-497~195−/−)老鼠。比例尺,100微米。(b条)Osterix数量的量化+股骨远端的骨祖细胞。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(c(c)——e(电子))FACS分析点图(c(c))CD31的定量你好Emcn公司你好内皮细胞(H型内皮细胞)(d日)和内皮细胞总数(e(电子))来自指定年龄组的长骨。(n个=来自三个独立实验的每组6只小鼠)。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05,(学生的t吨-测试)。
图4
图4。内皮细胞特异性MiR-497~195簇敲除小鼠的骨形成较少。
(——e(电子))典型的微机断层扫描(μCT)图像()和定量μCT分析(b条——e(电子))1月龄、3月龄和12月龄股骨骨小梁微结构的研究MiR-497~195液氧/液氧miR-497~195−/−老鼠。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。((f)——小时)小梁骨钙黄绿素双重标记的代表性图像((f))每个骨表面的BFR定量(BFR/BS)()和矿物并置率(小时)1个月、3个月和12个月大的股骨MiR-497~195液氧/液氧miR-497~195−/−老鼠。(比例尺,25微米。n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05,(学生的t吨-测试)。
图5
图5。MiR-497~195簇转基因小鼠显示CD31增加你好Emcn公司你好血管和骨形成。
()来自1、3和12个月龄WT和miR-497~195转基因(Tg)小鼠股骨中CD31(绿色)、Emcn(红色)和Osterix(白色)免疫染色的代表性图像。比例尺,100微米。(b条)Osterix数量的量化+股骨远端的骨祖细胞。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(c(c)——e(电子))FACS分析点图(c(c))H型EC的定量(d日)和内皮细胞总数(e(电子))来自指定年龄组的长骨(n个=来自三个独立实验的每组6只小鼠)。((f)——j个)典型的微机断层扫描(μCT)图像((f))和定量μCT分析(——j个)1、3和12月龄WT和miR-497~195 Tg小鼠股骨骨小梁微结构的研究。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(k个,)每个骨表面BFR的定量(BFR/BS)(k个)和矿物并置率()在1、3和12个月大的WT和miR-497~195 Tg小鼠的股骨中。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05,(学生的t吨-测试)。
图6
图6。MiR-497~195簇以Fbxw7和P4HTM为靶点,维持内皮Notch和HIF-α活性。
(,b条)miR-195相对水平的qRT-PCR分析()和miR-497(b条)转染agomiR-497~195、antagomiR-497~195或其阴性对照的BMEC中的表达。NC,阴性对照。(c(c),d日)CD31相对水平的qRT-PCR分析(c(c))和Emcn(d日)内皮细胞中mRNA的表达。(e(电子)——)蛋白质印迹分析(e(电子))以及NICD相对水平的定量((f)),HIFα(),Fbxw7(小时)和P4HTM()转染agomiR-497~195、antagomiR-497~195或对照的BMEC中的蛋白表达。(n个=三个独立实验中每组3个)。(j个,k个)用携带Fbxw7或P4HTM基因WT或MUT 3′-UTR、WT-pGL3-Fbxw 7或MUT-pGL3-Fb xw 7的荧光素酶报告子转染内皮细胞(j个)WT-pGL3-P4HTM和MUT-pGL3-P4HTM(k个)分别与agomiR-497~195或agomiR-NC共转染。在48转染后h。给出了萤火虫荧光素酶的标准值,即肾小球荧光素酶。(n个=三个独立实验中每组3个)。(,)蛋白质印迹分析()和定量()Fbxw7 siRNA转染或对照的BMEC中NICD蛋白表达的相对水平。(n个,o个)蛋白质印迹分析(n个)和定量(o个)转染P4HTM siRNA或对照的BMEC中P4HTM、HIFα蛋白表达的相对水平。(n个=三个独立实验中每组3个)。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05, **P(P)<0.01。(j个,k个,o个学生的t吨-测试;——d日,(f)——,方差分析(ANOVA))。
图7
图7。注射适配体agomiR-195增加CD31你好Emcn公司你好血管和骨形成。
通过12月龄小鼠的尾静脉注射Aptamer-angomiR-195,每周一次,持续3个月。NC,阴性对照。()适配体agomiR-195治疗小鼠及其对照组股骨CD31(绿色)、Emcn(红色)和Osterix(白色)免疫染色的代表性图像。比例尺,100微米。(b条)Osterix数量的量化+股骨远端的骨祖细胞。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(c(c)——e(电子))FACS分析点图(c(c))CD31的定量你好Emcn公司你好内皮细胞(H型内皮细胞)(d日)和内皮细胞总数(e(电子))取自适配体agomiR-195治疗小鼠的长骨。(n个=来自三个独立实验的每组6只小鼠)。((f)——j个)典型的微机断层扫描(μCT)图像((f))和定量μCT分析(——j个)来自适体-GomiR-195处理的小鼠及其对照组的股骨中的骨小梁微结构。(k个——)小梁骨钙黄绿素双重标记的代表性图像(k个)每个骨表面的BFR定量(BFR/BS)()和矿物并置率(). (比例尺,25微米。n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。(n个,o个)胫骨最大载荷的三点弯曲测量。(n个=来自三个独立实验的每组5只小鼠)。数据显示为平均值±标准差*P(P)<0.05,(方差分析(ANOVA))。

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