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.2017年5月23日;8(3):e00597-17。
doi:10.1128/mBio.00597-17。

CNOT4介导的甲型流感病毒核蛋白泛素化促进病毒RNA复制

附属公司

CNOT4介导的甲型流感病毒核蛋白泛素化促进病毒RNA复制

于振林等。 mBio公司. .

摘要

流感A病毒(IAV)RNA片段与病毒核蛋白(NP)和RNA聚合酶单独包装,形成病毒核糖核蛋白(vRNP)复合物。我们之前曾报道过NP是一种单泛素化蛋白,可以被细胞泛素蛋白酶USP11重泛素化。在本研究中,我们鉴定了一种E3泛素连接酶CNOT4(Ccr4-Not转录复合物亚基4),它可以泛素化NP。我们发现,IAV感染后,CNOT4敲除细胞中的病毒RNA、蛋白质、病毒颗粒和RNA聚合酶活性水平低于对照细胞中的水平。相反,CNOT4的过度表达挽救了病毒RNP活性。此外,CNOT4与细胞内的NP相互作用。一个在体外泛素化试验还表明,NP可以通过在体外-翻译的CNOT4,但泛素化并不影响NP的蛋白质稳定性。值得注意的是,CNOT4增加了NP泛素化,而USP11降低了NP的泛素化。泛素化NP的质谱分析显示NP的各种赖氨酸残基上有多个泛素化位点。其中三个是K184、K227和K273,位于NP的RNA-结合沟上。这些位点突变为精氨酸会降低病毒RNA的复制。这些结果表明,CNOT4是NP的泛素连接酶,NP的泛素化在病毒RNA复制中起积极作用。重要性流感病毒,特别是甲型流感病毒,在人类和禽类中引起严重和频繁的疫情。从公共卫生的角度来看,寻找抗病毒药物的潜在靶点至关重要。我们之前发现病毒核蛋白(NP)是泛素化的,泛素化增强了病毒RNA的复制。在本研究中,我们发现了一种细胞泛素连接酶CNOT4,能够泛素化NP。泛素化位点分散在NP分子的表面,这对RNA复制至关重要。CNOT4和泛素蛋白酶USP11共同调节NP泛素化的程度,从而调节RNA复制的效率。因此,这项研究确定了一个潜在的抗病毒靶点,并揭示了一种新的调节病毒复制的翻译后机制。这是流感病毒研究文献中的一项新发现。

关键词:CNOT4;IAV;NP;RNA复制;甲型流感病毒;核蛋白;无处不在。

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数字

图1
图1
CNOT4基因敲除抑制IAV复制。(A) 二次RNAi筛查的免疫荧光分析。A549细胞被各种shRNA-harbocing慢病毒转导,这些慢病毒针对初级混合shRNA文库筛选中确定的不同基因(19)。然后将转导的细胞以1的MOI感染WSN/33病毒。在p.i.第6小时,使用NP抗体和DAPI对细胞进行免疫荧光染色。NP-DAPI的强度被用作指标,并进行归一化以控制shLacZ染色强度,以估计感染IAV的细胞百分比。(B和C)CNOT4敲除效率(B)和相对病毒NP RNA水平(C)通过qRT-PCR,使用来自不同CNOT4击倒A549细胞(shRNA克隆CN1至CN5)的RNA,在6 h p.i.(平均值±SD,n个= 4). *,P(P)< 0.05; **,P(P)< 0.01; ***,P(P)<0.001,基于Dunnett多重比较测试的单向方差分析。(D) 用抗NP抗体在p.i.6 h通过免疫印迹法检测病毒蛋白。肌动蛋白被用作内部控制。(E) 通过MDCK细胞上的斑块试验,在24小时p.i.测定释放到培养基中的子代病毒的病毒滴度(平均值±SD,n个= 3). ***,P(P)<0.001,基于Dunnett多重比较测试的单向方差分析。
图2
图2
病毒RNP活性与CNOT4的表达水平相关。(A) CNOT4敲除细胞RNP活性的微复制子分析结果。用用于表达病毒PB1、PB2、PA和NP的质粒和表达反义萤光素酶基因的报告质粒转染两个shCNOT4克隆,CN1和CN3,以及对照shLacZ 293T细胞,如其他地方所述,用于微小复制子测定(29)。转染后24小时,测定荧光素酶活性,并将其归一化为对照shLacZ的反应(平均值±SD,n个= 3). **,P(P)< 0.01; ***,P(P)<0.001,通过单因素方差分析和Dunnett的多重比较检验。(B) 293T细胞中CNOT4的敲除效率。(C) 过度表达CNOT4可增强病毒RNP活性。将CNOT4敲除(shRNA克隆CN1和CN3)或对照细胞(shLacZ)与野生型CNOT4亚型e(CNe)或其摆动突变体(wCNe)一起转染,并用于微复制子分析。按照面板A所述测量相对荧光素酶活性(平均值±SD,n个= 3). ***,P(P)<0.001(与shLacZ相比);##,P(P)< 0.01; ###,P(P)<0.001(相对于shRNA克隆CN1或CN3),基于Tukey多重比较检验的单因素方差分析。(D) 免疫沉淀(IP)分析中CNOT4与病毒RNP成分的相互作用。用标记的CNOT4亚型e(CNe-Flag)和一种HA标记的病毒蛋白(PB1、PB2、PA和NP)共同转染293T细胞。在转染后48小时,使用Flag-agarose沉淀细胞裂解物。蛋白用抗HA和抗Flag抗体进行免疫印迹(IB)观察。
图3
图3
CNOT4增强了病毒NP泛素化,而氘激酶USP11降低了它。(A)CNOT4的敲除/过度表达与病毒NP的泛素化相关。用Ub-myc和NP-HA转染CNOT4敲除(shCNOT4克隆)或对照shLacZ 293T细胞,转染或不转染野生型(CN)或摇摆突变型(wCN)CNOT4e-Flag。使用HA-淀粉对细胞进行免疫印迹(IB)。用抗HA和抗myc抗体观察免疫沉淀蛋白。实心箭头表示单泛素化NP。箭头表示为质谱分析切割的蛋白质带(见图5)。(B) CNOT4和USP11对病毒NP泛素化有相反的作用。如图所示,用NP-HA、Ub-myc、CNOT4e-Flag和USP11共同转染CNOT4敲除或对照shLacZ 293T细胞,并用HA-agarose进行免疫印迹。用抗NP和抗myc抗体观察免疫沉淀的蛋白质。凝胶下方显示了每个样品中单泛素NP(箭头)的相对含量。
图4
图4
病毒NP被CNOT4泛素化在体外,其泛素化不会导致NP降解。(A)体外NP、CNOT4和p53的转录/翻译。携带NP-HA、CNOT4e-Flag或p53-HA开放阅读框的质粒与TNT裂解物在30°C下孵育1 h以合成目标蛋白。使用抗HA抗体(针对p53和NP)或抗Flag抗体(针对CNe)通过Western免疫印迹(IB)检测样品。各蛋白质产品用箭头表示。(B)体外NP与CNOT4 E3连接酶泛素化分析结果。体外-如面板A所述,获得翻译的NP-HA和p53-HA TNT裂解物,并使用泛素化试剂盒进行培养在体外-在37°C下翻译CNOT4-标记1小时。然后使用抗HA抗体通过免疫印迹检测泛素化蛋白。箭头表示无泛素化的主要蛋白质产品。垂直线表示泛素化蛋白质。(C) NP蛋白稳定性分析。用表达NP-HA的质粒转染293T细胞,转染时可携带或不携带CNOT4e-Flag。转染后24小时,细胞在裂解前用环己酰亚胺(50μM)和MG132(10μM)处理指定的时间长度。每个样品中NP的相对量显示在凝胶下方。
图5
图5
泛素化NP的MS/MS分析显示了多个泛素化位点。由泛素化NP衍生的多肽的串联质谱显示,泛素在不同的泛素残基上与双Gly修饰的泛素结合。如图3所示分离泛素化NP,并使用抗HA–琼脂糖从转染NP-HA或Ub-myc(有或没有CNOT4e-Flag)的293T细胞中分离。从指示的蛋白质带中切下蛋白质样品(如图3所示)并进一步纯化(见材料和方法)。样品通过MS分析进行分析。使用吉祥物搜索引擎,搜索标记为LeuArgGlyGly(KLRGG公司)或GlyGly(KGG公司). 在K31(A)、K77(B)、K87(C)、K91(D)、K113(E)、K184(F)、K227(G)、K299(H)、K273(I)和K351(J)残留物中观察到GG或LRGG修饰。
图6
图6
赖氨酸-精氨酸突变NP的病毒RNP活性及其与结构的关系;该图显示了赖氨酸残基在NP的RNA-结合沟中的重要性。(A)在缺乏或存在外源CNOT4的情况下,各种赖氨酸-精氨酸突变体的RdRp活性。如图2所示,对NP的不同赖氨酸突变体进行微复制子分析。转染后24小时测定荧光素酶活性,并将其归一化为对照组的WT NP。NP水平(黑柱)表示在没有外源性CNOT4的情况下,RdRp的基本活性;NP和CN水平(灰色柱)表明CNOT4过度表达细胞中的RdRp活性。红色星号表示KR突变体的RdRP活性显著低于野生型NP突变体;它们用绿色方框进一步突出显示。黑色星号表示在CNOT4过度表达的情况下,KR突变体的RdRP活性显著高于野生型NP。黑色#符号表示其RdRP活性被CNOT4增强到统计学显著水平的突变体(平均值±SD,n个= 3). *,P(P)< 0.05; **,P(P)< 0.01; ***,P(P)<0.001(与WT NP相比)。#,P(P)< 0.05; ###,P(P)<0.001(与KR-NP相比),基于Tukey多重比较测试的单向方差分析。(B) NP分子上关键赖氨酸残基的位置。A型流感病毒NP的三维结构是根据Chenavas等人(44)的描述进行修改的。K184、K227和K273位于NP的RNA-结合槽中(蓝色表示正电荷);K91和K351位于NP表面。

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引用人

工具书类

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