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.2017年3月14日;5(1):22.
doi:10.1186/s40478-017-0426-8。

G2019S LRRK2小鼠年龄依赖性多巴胺转运体功能障碍和丝氨酸129磷酸化-α-突触核蛋白超载

附属机构

G2019S LRRK2小鼠年龄依赖性多巴胺转运体功能障碍和丝氨酸129磷酸化-α-突触核蛋白超载

弗朗西斯科·隆戈等。 神经病理学学报. .

摘要

富含亮氨酸重复激酶2(LRRK2)基因突变是帕金森病最常见的遗传原因。在这里,我们研究了G2019S LRRK2突变是否导致黑质纹状体多巴胺神经元的形态和/或功能改变。在12个月以上的G2019S敲除小鼠和野生型对照组中,纹状体多巴胺能终末密度、黑细胞计数、酪氨酸羟化酶蛋白水平以及纹状体突触体中测定的胞外多巴胺释放,或体内微透析监测的纹状体细胞外多巴胺水平相似。体内纹状体多巴胺释放对LRRK2抑制剂Nov-LRRK2-11不敏感,并被膜多巴胺转运体阻滞剂GBR-12783升高。然而,与野生型对照组相比,G2019S敲除小鼠对GBR-12783表现出迟钝的神经化学和运动激活反应。Western印迹和多巴胺摄取分析显示,12个月大的G2019S KI小鼠纹状体中多巴胺转运蛋白水平和活性增加。这种表型与囊泡单胺转运体2水平降低和囊泡多巴胺摄取增强有关,这与利血平诱导的低运动障碍具有更大的抵抗力一致。在3个月大的小鼠中未观察到这些变化。最后,Western blot分析显示纹状体内源性α-突触核蛋白或与多巴胺(多巴胺的一种有毒代谢产物)结合的α-突触素水平无基因型差异。然而,在12个月大的G2019S敲除小鼠中,丝氨酸129-磷酸化α-突触核蛋白水平较高。免疫组织化学证实了这一发现,在3个月大的小鼠中也没有显示基因型差异。我们的结论是,G2019S突变导致纹状体多巴胺能终末多巴胺转运体进行性功能障碍,以及丝氨酸129-磷酸化α-突触核蛋白超载,这与多巴胺稳态失调或神经元丢失无关,但可能导致固有的多巴胺能末梢脆弱性。我们建议G2019S敲除小鼠作为症状前帕金森病模型,有助于研究遗传、衰老和导致疾病的内部或环境因素之间的致病性相互作用。

关键词:日期;G2019S敲入;LRRK2;帕金森病;VMAT2;α-突触核蛋白。

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数字

图1
图1
G2019S敲除(KI)小鼠中Ser1292(pSer1292)的LRRK2磷酸化水平升高。通过Western blotting测定12个月龄G2019S KI小鼠和年龄匹配的WT对照组的纹状体pSer1292和总LRRK2水平。图中显示了代表性斑点(左侧)和定量(右侧)。数据表示为pSer1292 LRRK2/总LRRK2,是指±每组7只动物的扫描电镜。对学生进行了统计分析t吨-测试,未配对数据的双尾**第页 < 0.01,与WT不同
图2
图2
在G2019S敲除(KI)小鼠中,黑质纹状体多巴胺能神经元的完整性得以保留。黑质DA神经元的体视学计数()酪氨酸羟化酶(TH)阳性纹状体神经末梢的密度(b),具有代表性的图像,在12个月大的G2019S KI小鼠和年龄匹配的WT室友中。12个月龄G2019S KI小鼠和年龄匹配的WT对照组纹状体TH水平的Western blotting分析(c(c)). 数据表示为绝对值和平均值±SEM(共8张)(-b)和4(c(c))每组动物数
图3
图3
G2019S敲除(KI)小鼠的多巴胺(DA)释放被保留。[H] -从12个月大的G2019S KI小鼠和与年龄匹配的WT同窝小鼠的纹状体中获得的DA预加载突触体连续被Krebs过量使用,并被10 mM或20 mM K的3个脉冲(90 s)刺激+(间隔18分钟)。DA释放表示为分数释放(FR;即氚流出表示为相应收集期开始时过滤器中氚含量的百分比;),或净FR(即K+-在相应的收集期开始时,以过滤器中氚含量的百分比表示的诱发氚溢出;b). 数据是手段±每组9次测定的SEM
图4
图4
急性阻断LRRK2激酶活性并不影响纹状体多巴胺(DA)水平,而急性阻断DAT可在G2019S敲除(KI)小鼠体内诱发迟钝的神经化学和行为反应。在19个月大的G2019S KI小鼠的背外侧纹状体和年龄匹配的野生型(WT)同窝出生的小鼠(WT)中进行微透析(,b). 然后用LRRK2激酶抑制剂Nov-LRRK2-11(10 mg/kg,i.p.)或DAT阻滞剂GBR-12783(20 mg/kg,i.p.)攻击小鼠。DA的透析液水平表示为绝对值(nM),为平均值±5只WT和6只G2019S KI小鼠的扫描电镜(),或6只WT和9只G2019S KI小鼠(b). 12月龄小鼠对GBR-12783(6 mg/kg,i.p.)或生理盐水的运动反应(c(c)-e(电子)). 使用横杆评估运动活性(c(c)),拖动(d日)和旋转木马(e(电子))给药前(基线)和给药后(20和90分钟)的测试,并以基线时的表现百分比表示。数据是手段±每组12-17(WT)或13-17(G2019S KI)小鼠的SEM。使用单向RM方差分析进行统计分析(-b)或常规方差分析(c(c)-e(电子))然后进行Newman–Keuls多重比较测试*第页 < 0.05, **第页 < 0.01与基线值显著不同;# 第页 < 0.05,## 第页 < 0.01与生理盐水显著不同
图5
图5
G2019S敲除(KI)小鼠DAT表达和功能的年龄依赖性功能障碍。动力学分析[H] -突触体中DA的摄取(,c(c))和DAT蛋白水平的Western blotting分析(和代表性blots)(b,d日)在12个月大的婴儿的纹状体中进行(,b)和3个月大(c(c),d日)G2019S KI小鼠与年龄匹配的WT对照组的比较。值表示为平均值±的SEMn个 = 4(摄取)或n个 = 3(Western blotting)独立实验一式两份。使用Student进行统计分析t吨-测试,未配对数据的双尾*第页 < 0.05,与WT不同
图6
图6
G2019S敲除(KI)小鼠VMAT2表达和功能的年龄依赖性功能障碍。用利血平(1 mg/kg,i.p.)或生理盐水处理的12个月龄G2019S KI小鼠和野生型(WT)同窝小鼠的运动活性,并在酒吧中激发(),拖动(b)和旋转杆(c(c))给药前(基线)和给药后(24和48小时)的试验。运动性能表示为基线时的性能百分比。数据是手段±的SEMn个 = 每组14–15只小鼠,采用常规方差分析,然后采用纽曼-凯尔斯试验进行多重比较。# 第页 < 0.05,## 第页 < 0.01与生理盐水显著不同。动力学分析[H] -12个月大(d-f)或3个月大时全脑小泡中DA的摄取和纹状体中VMAT2水平的Western blotting(-)G2019S KI小鼠和WT同窝小鼠。在蛋白质印迹中,使用了两种不同的抗VMAT2抗体,一种是市售的(e(电子),小时; Sigma)和Miller实验室开发的另一个((f),)(见方法)。数据表示为平均值±4只小鼠的扫描电镜(d日-(f)),3只小鼠()或5只小鼠(小时,)每组,重复执行。学生进行了统计分析t吨-测试,未配对数据的双尾**第页 < 0.01,与WT不同
图7
图7
在G2019K敲除(KI)小鼠中,DOPAL修饰的α-突触核蛋白(α-syn)水平不变,而Ser129-磷酸化的α-synuclein(pSer129α-syns)水平升高。12月龄G2019S KI小鼠和年龄匹配的WT对照组纹状体多巴胺结合α-syn与氨基苯硼酸(APBA)树脂下拉的相对定量和代表性印迹(). 在同一制剂中,pSer129α-syn水平(c(c))相对于α-syn水平进行量化(b). 数据表示为平均值±的SEMn个 = 每组11只小鼠。学生进行了统计分析t吨-测试,未配对数据的双尾**第页 < 0.01与WT不同
图8
图8
G2019S敲除(KI)小鼠中丝氨酸129-磷酸化α-synuclein(pSer129α-syn)的年龄依赖性过载。12个月大鼠纹状体α-syn和pSer129α-syn-免疫染色的代表性显微照片和相对定量(,b)和3个月大(c(c),d日)G2019S KI小鼠和WT对照组。数据表示为平均值±SEM(共8张)(,b)或6(c(c),d日)每组只小鼠。学生进行了统计分析t吨-测试,针对未配对的数据进行双尾测试*第页 < 0.05与WT不同

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