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.2017年3月1日;37(6):e00401-16。
doi:10.1128/MCB.00401-16。 2017年3月15日印刷。

人无尿/无嘧啶核酸内切酶(APE1)在染色质中的DNA损伤位点被乙酰化,乙酰化调节其DNA修复活性

附属公司

人无嘌呤/无嘧啶核酸内切酶(APE1)在染色质中DNA损伤部位乙酰化,乙酰化调节其DNA修复活性

Shrabasti Roychoudhury公司等。 分子细胞生物学. .

摘要

无嘌呤/无嘧啶(AP)位点是基因组中最常见的DNA损伤,抑制转录并阻止复制。哺乳动物细胞中修复AP位点的主要酶是AP核酸内切酶(APE1),它通过碱基切除修复(BER)途径发挥作用。虽然APE1修复AP站点的机制在体外APE1是如何修复细胞内AP位点的,目前尚不清楚。这里,我们表明APE1在与染色质中的AP位点结合后被乙酰化(AcAPE1),AcAPE1在整个细胞周期中只存在于染色质上。APE1 N-末端结构域中乙酰化赖氨酸残基的正电荷对染色质结合至关重要。乙酰化介导的APE1 N-末端结构域赖氨酸残基的正电荷中和引起构象变化;这反过来又增强了APE1的AP内切酶活性。在没有APE1乙酰化的情况下,细胞在基因组中积累AP位点,并对DNA损伤剂表现出更高的敏感性。因此,哺乳动物细胞与酿酒酵母大肠杆菌细胞需要APE1乙酰化,以便有效修复基因组中的AP位点和碱基损伤。我们的研究表明,APE1乙酰化是维持基因组完整性的BER途径的一个组成部分。

关键词:AP站点;APE1;DNA损伤;乙酰化;基底切除修复;内源性DNA损伤。

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数字

图1
图1
AcAPE1仅与染色质相关,并与浓缩染色体结合。(A和B)用抗APE1和抗AcAPE1抗体对异步正常肺成纤维细胞IMR90细胞和肺腺癌A549细胞进行免疫染色,用DAPI进行复染,并用共焦显微镜和3D SIM进行可视化。(C) AcAPE1与组蛋白H3或活性增强子特异性组蛋白标记乙酰化的H3K27(H3K27Ac)的克隆化。(D) BJ-hTERT细胞经血清饥饿72h后固定于不同时间点。用抗APE1和抗AcAPE1抗体对细胞进行免疫染色,并用抗TO-PRO-3碘化物抗体进行复染。(F) BJ-hTERT细胞要么被血清饥饿72小时(G0/G公司1阶段),用诺可唑(有丝分裂细胞)或蚜虫灵(G1/使用150 mM或300 mM含盐溶解缓冲液分离全细胞提取物。Western blot分析抗APE1和抗AcAPE1水平。使用抗-HSC70作为负载对照。(G) 用小鼠抗APE1和兔抗APE1(mAPE1&rabbit-APE1)、小鼠抗小鼠APE1、兔抗AcAPE1(mAPE1&rAcAPE1)、兔抗AcAPE1及鼠抗组蛋白H3(mHistone H3&rAcAP E1)进行近端结扎分析,以确认AcAPE的染色质关联。以小鼠IgG(mIgG)和兔抗AcAPE1抗体作为对照。PLA病灶中至少有50个细胞被计数。(H) 染色质上p300和AcAPE1的染色(DAPI)。(一) 用E1A和突变E1A转染HCT116细胞,转染后48小时进行IF。细胞用抗p300和抗APE1或抗AcAPE1免疫染色,用DAPI复染。
图2
图2
乙酰化Lys残基的正电荷而非乙酰化对APE1的染色质结合至关重要。(A) 表达具有Lys位点特异性APE1突变的不同突变体的细胞用抗FLAG抗体(标记为FLAG的行)进行免疫染色,并用DAPI(标记为Merge的行)反染。(B) 通过免疫染色分析乙酰化位点突变体的亚细胞定位;表达不同Lys位点特异性APE1突变突变体的细胞用抗FLAG抗体或抗层粘连B抗体染色,并用DAPI进行复染。(C) 用抗FLAG体外表达这些蛋白的细胞中FLAG标记WT和突变APE1水平的可溶性核和染色质提取物的Western blot分析。使用抗-APE1、抗组蛋白H3和抗小鼠Sin3a(mSin3a)作为对照。(D和E)实验示意图概述。使用APE1特异性siRNA(APE1Si RNA)下调HEK293T细胞中的APE1,48小时后,用含有WT APE1或K27Q或H309N突变APE1的表达质粒转染细胞。使用抗FLAG和抗AcAPE1抗体进行IF检查共定位。共定位时,至少有50个FLAG阳性细胞被计数。用箭头指示的单元格在“合并”列中进一步放大。(E) (左)PLA使用抗FLAG和抗AcAPE1检测细胞中WT APE1和K27Q及H309N突变APE1的乙酰化。(右)对至少50个细胞进行计数,并绘制每个APE1突变的PLA信号百分比。
图3
图3
APE1与染色质中的AP位点结合后被乙酰化。(A) BJ-hTERT细胞用MX(50 mM)处理指定时间。使用抗APE1和抗AcAPE1进行IF,并使用DAPI复染。(B) 用不同剂量的MX处理HCT116细胞30 min,用抗APE1和抗AcAPE1进行IF,用DAPI进行复染。(C) 用50 mM MX处理HCT116细胞30 min,用抗OGG1抗体进行IF,用DAPI进行复染。(D) 用50 mM MX预处理或未预处理的BJ-hTERT细胞暴露于MMS(2 mM)1 h,用抗APE1和抗AcAPE1进行IF,用DAPI进行复染。共焦显微镜用于观察对照细胞和用MMS或MX或两者处理的细胞中AcAPE1的水平。(E) 在GO诱导DNA损伤后,用抗OGG1抗体进行ChIP和Western blotting(ChIP-on-Western)检测染色质上AcAPE1和连接酶III的相关性。(F) 在对照或MMS或MX处理的细胞中,AcAPE1与内源性p21启动子的关联通过启动子导向的ChIP使用抗AcAPE1。
图4
图4
APE1乙酰化增强其AP内切酶活性。(A) 在乙酰辅酶A存在或不存在的情况下,将重组(Rec.)APE1与p300 HAT结构域一起孵育,并用抗APE1和抗AcAPE1 Abs进行蛋白质印迹分析,以证实APE1的乙酰化。(B) APE1和在体外-乙酰化APE1。nt,核苷酸;P、 劈开的产品。(C和D)动力学参数的值K(K)k个通过将33 pM酶在37°C下与不同浓度(0至160 nM)的底物孵育3分钟来计算。将酶动力学数据拟合到非线性最小二乘回归中,以获得V(V)最大值K(K)使用Michaelis-Menten方程和SigmaPlot软件得出的值。(E) APE1和AcAPE1的动力学参数比较。
图5
图5
APE1乙酰化增强了其对染色质的稳定性及其与下游BER蛋白的相互作用。(A) 连接酶III和AcAPE1在A549细胞中的克隆化。用抗连接酶III和抗AcAPE1抗体对细胞进行免疫染色。(B) 用TSA-烟酰胺(NAM)处理或不处理WT或K5R突变型APE1过度表达的HEK293T细胞6h,用抗FLAG抗体免疫沉淀核提取物,并用抗XRCC1和抗FLAG Abs免疫印迹。(C) A549细胞在用Triton X-100(0.5%)(中间)或Triton X-100+盐(100 mM KCl)(底部)处理前后用多聚甲醛固定,并用抗APE1或抗AcAPE1抗体进行免疫染色,用DAPI进行复染。(D) APE1的乙酰化诱导APE1构象变化。显示了APE1和AcAPE1在280nm处的不同本征荧光发射光谱。A.U.,吸光度单位。
图6
图6
APE1乙酰化对细胞生存和/或细胞增殖至关重要,APE1缺乏乙酰化会使细胞对DNA损伤剂敏感。(A和B)内源性APE1在HEK293T中下调APE1siRNA使用Dox治疗的细胞。(A) FLAG标记的WT APE1、乙酰化缺陷突变体(Lys6、Lys7、Lys27、Lys31和Lys32突变为非乙酰化精氨酸[K5R]或谷氨酰胺[K5Q]的突变体)或NΔ33突变体在这些细胞中进一步过度表达。用葡萄糖氧化酶(100ng/ml,持续30分钟)处理或不处理细胞,并使用ARP试剂盒测量AP位点的数量。(B) 代表AP站点数量的条形图/105bp在不同APE1突变体存在下与载体控制相比。误差条表示平均值±标准偏差(n个= 3). (C) HEK293吨APE1siRNA用DOX处理或不处理细胞,WT APE1、K5R和K5Q突变型APE1在体外表达。用葡萄糖氧化酶(100 ng/ml,持续30分钟)处理细胞或不处理细胞,并进行集落形成分析。条形图显示了存在不同APE1突变体时形成的菌落数量,与矢量控制相比。误差条表示平均值±标准偏差(n个= 3). (D和E)HCT116细胞组成性表达APE1 shRNA(HCT116APE1shRNA用FLAG标记的WT APE1或乙酰化缺陷的APE1突变体(Lys6、Lys7、Lys27、Lys31和Lys32突变为非乙酰化精氨酸[K5R]或谷氨酰胺[K5Q]的突变体)转染细胞)。(D) 使用抗APE1抗体进行蛋白质印迹分析以检测APE1水平。使用抗-HSC70作为负荷对照。(E) HCT116中测量了损伤敏感性APE1shRNA体外表达不同APE1突变体的细胞。用增加剂量的MMS处理细胞1小时,并进行集落形成分析。
图7
图7
通过BER途径乙酰化APE1调节细胞AP位点修复的示意模型。

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