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.2016年12月;14(6):5084-5092.
doi:10.3892/mmr.2016.5907。 Epub 2016年10月31日。

机械拉伸通过NF-κB激活调节C2C12成肌细胞中microRNA的表达谱

附属公司

机械拉伸通过NF-κB激活调节C2C12成肌细胞中microRNA的表达谱

文西华等。 分子医学代表. 2016年12月.

摘要

微RNA(miRNAs/miRs)和核因子(NF)-κB活化参与机械拉伸诱导的骨骼肌再生。然而,据报道,在机械拉伸诱导的肌肉发生过程中,有少量miRNAs与NF‑κB激活相关。在本研究中,体外对C2C12成肌细胞进行周期性机械拉伸,以探讨拉伸介导的成肌细胞增殖过程中miRNA表达与NF‑κB活化之间的关系。结果表明,10%的变形、0.125Hz的循环机械拉伸可以促进成肌细胞的增殖。miRNA表达谱随后发生改变;miR‑500、‑1934、‑31、‑378、‑331和‑5097受到下调,而miR−1941受到上调。这些miRNAs均参与拉伸介导的成肌细胞增殖。值得注意的是,在用NF‑κB抑制剂处理0.125 Hz机械拉伸的C2C12细胞后,这些miRNAs的表达被逆转,同时伴随着C2C12的细胞生长抑制。因此,据我们所知,本研究首次证明NF‑κB‑依赖性miRNA谱与机械拉伸诱导的成肌细胞增殖相关。

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数字

图1。
图1。
适当的机械拉伸可促进成肌细胞增殖。(A) 机械拉伸频率对C2C12细胞活力的影响,如Cell Counting kit-8检测所示。(B) 流式细胞术分析第4天0.125 Hz拉伸成肌细胞和对照细胞的细胞周期进展*与对照组相比,P<0.05。与0.125 Hz组相比,P<0.05。n=3。OD,光密度;DPI,DNA增殖指数。
图2。
图2。
对0.125 Hz机械拉伸组和对照组之间差异表达miR的log2值进行分层聚类分析。绿色表示机械拉伸组与对照组相比表达下调;红色表示机械牵张组与对照组相比表达上调;黑色表示两组之间的表达没有显著差异。miR、微小RNA。
图3。
图3。
(A) 与对照组相比,0.125 Hz机械拉伸组的miRNAs表达存在差异。(B) 对照组和0.125 Hz机械拉伸组中miR-500、miR-1934、miR-31、miR-378、miR-331、miR-5097和miR-1941的相对表达水平。0.125 Hz机械拉伸组的表达水平归一化为对照组*与对照组相比,P<0.05。n=3。miR,microRNA。
图4。
图4。
(A) 抑制NF-κB对0.125 Hz拉伸C2C12细胞中NF-κ子B p65、P-NF-κ·B p65和I-κBα蛋白表达水平的影响*与对照组相比,P<0.05。与拉伸组相比,P<0.05。Φ与2.5µM BAY组相比,P<0.05。n=3。(B) 对照组和5µM BAY+机械拉伸组中miR-500、miR-1934、miR-31、miR-378、miR-331、miR-5097和miR-1941的相对表达水平。将5µM Bay+0.125 Hz机械拉伸组的表达水平归一化为对照组*与对照组相比,P<0.05。n=3。miR,microRNA;核因子-κB;P-,磷酸化;I-κBα,NF-κB抑制剂;海湾,海湾11-7082。
图5。
图5。
NF-κB抑制剂BAY抑制拉伸诱导的C2C12细胞增殖。(A) NF-κB抑制对0.125 Hz拉伸C2C12细胞活力的影响,如细胞计数kit-8分析所检测到的*与对照组相比,P<0.05。与2.5µM BAY组相比,P<0.05。(B) 流式细胞术分析第4天用5µM BAY处理的拉伸成肌细胞和对照细胞的细胞周期进展*与对照组相比,P<0.05。n=3。核因子-κB;海湾,海湾11-7082;DPI,DNA增殖指数。
图6。
图6。
(A) western blotting检测到10µM PDTC对0.125 Hz拉伸C2C12细胞中NF-κB p65、P-NF-κ)B p65和I-κBα蛋白表达水平的影响。(B) 对照组和10µM PDTC+机械拉伸组中miR-500、miR-1934、miR-31、miR-378、miR-331、miR-5097和miR-1941的相对表达水平。(C) 10µM PDTC对0.125 Hz拉伸诱导的成肌细胞增殖的影响*与对照组相比,P<0.05。n=3。miR,microRNA;核因子-κB;P-,磷酸化;I-κBα,NF-κB抑制剂;PDTC,吡咯烷二硫代氨基甲酸酯;DPI,DNA增殖指数。

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