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.2016年9月12日;11(9):e0161834。
doi:10.1371/journal.pone.0161834。 2016年eCollection。

血管内皮素-2信号不介导2型糖尿病患者胰岛血管增生

附属公司

血管内皮素-2信号不介导2型糖尿病患者胰岛血管增生

巴亚尔·沙阿等。 公共科学图书馆一号. .

勘误表in

摘要

目标:在进展为2型糖尿病(T2D)期间,胰岛血管系统的变化与β细胞存活和功能的调节有关。β细胞无法补偿肥胖患者增加的胰岛素需求,最终导致糖尿病;由于遗传和环境因素的复杂相互作用(如胰岛持续炎症)和血管功能受损。血管生成素/Tie(Ang/Tie)血管生成系统维持血管系统,并与器官炎症和血管生成密切相关。在这项研究中,我们旨在确定糖尿病患者胰岛内的血管面积是否发生变化,以及这种变化是否会由血管紧张素-2(Ang-2)触发。

方法:对人胰腺尸检和分离的人和小鼠胰岛进行免疫组织化学和qPCR分析,以追踪胰岛血管化和Ang/Tie水平。在高脂饮食(HFD)喂养期间,在β-细胞特异性Ang-2过度表达小鼠中评估Ang-2的作用。

结果:T2D患者尸检胰腺中的胰岛血管面积增加。HFD喂养8至24周后,小鼠胰岛中的血管标记物Tie-1、Tie-2和CD31上调。与细胞因子(IL-1β、IFN-γ和TNF-α)对Ang-2的下调相比,在HFD 8周时和体外糖脂毒性条件下(22.2 mM葡萄糖/0.5 mM棕榈酸酯),人和小鼠胰岛中Ang-2在小鼠胰岛内短暂上调。另一方面,Ang-1则受到相反的调节,在糖脂中毒状态下有显著的损失,T2D患者的胰岛有减少的趋势,细胞因子上调。通过过度表达或抑制其受体Tie-2来调节Ang-2的这种变化,可在基础条件下损害β细胞功能,但保护胰岛免受细胞因子诱导的凋亡。在体内,在正常饮食下,小鼠中β细胞特异性Ang-2过度表达可诱导高血运化,但相反,在HFD反应中,可导致胰岛低血运化以及细胞凋亡增加和β细胞质量降低。

结论:T2D患者出现胰岛过度血管化。Ang1/Ang2系统的平衡表达对胰岛生理学很重要。血管紧张素-2(Ang-2)可阻止β细胞质量和胰岛血管对HFD喂养的适应,而不会对葡萄糖稳态产生重大影响。

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数字

图1
图1。T2DM患者的胰岛血管面积增加。
(A)非糖尿病对照组和T2D患者胰腺切片的代表性图像,免疫标记为CD31(红色)和胰岛素(绿色)。(B)图表显示了血管面积与胰岛面积的比值(对照组:n=6;T2D:n=10)。(C)曲线图显示血管密度与BMI无相关性。(D-H)正常饮食(ND)或高脂高蔗糖饮食(HFD)的C57BL/6 WT小鼠胰岛Ang-2、Tie-1、Tie-2、CD-31的qPCR分析(D)8周(n=4/组),(E)16周(n=9/组)和(F)24周(n=7/组),(G) 第页,共页eNOS和(H) 第页,共页ICAM-1。(一)非糖尿病患者(对照组,n=8)和T2D患者(n=7)分离胰岛Ang-1、Ang-2、Tie-1和Tie-2的qPCR分析*p<0.05,HFD vs ND或T2D vs对照
图2
图2。孤立胰岛中Ang/Tie的表达与血管面积的变化相关。
将分离的WT小鼠和人类胰岛在对照条件下培养3天(小鼠为11.1 mM葡萄糖,人类为5.5 mM),或用22.2 mM葡萄糖+0.5 mM棕榈酸或细胞因子混合物(2 ng/mL IL-1β、1000 U/mL IFN-1和TNF-α(细胞))治疗糖尿病。(A、D)通过16.7/2.8 mM葡萄糖刺激评估的刺激指数显示GSIS。(B、C、E、F)图表显示了小鼠的血管面积与胰岛面积之比(B,C)和人类(E、F)固定和免疫标记的胰岛,用于血管(CD-31,红色)和胰岛(胰岛素,绿色)。(G-L)小鼠CD-31治疗后小鼠和人胰岛的qPCR分析(G、J),血管-1,-2(高、钾)、第1级、第2级(I,L)所有基因均已归一化为PPIA或18s,作为内务管理控制*p<0.05,治疗组与对照组11.1 mM(小鼠)或5.5 mM(人类)。(百万)经处理的人类胰岛裂解物的代表性western blot(左图)和Ang-2的密度分析(右图)。数据是3-5个不同器官供体(人类胰岛)或3-5个独立小鼠胰岛分离物的3-5个单独实验的平均值+/-SE。
图3
图3。Ang-2过度表达会损害胰岛功能,但可保护胰岛免受细胞因子治疗。
RIP-rtTA分离胰岛;tet-O-Ang-2(Ang2-rtTA)和RIP-rtTA对照(rtTA)小鼠在10μg/ml强力霉素存在下培养3天,以实现Ang-2过度表达。小鼠或人类胰岛在11.1(小鼠)或5.5 mM葡萄糖(人类)中培养,或在糖尿病条件下用22.2 mM葡萄糖+0.5M棕榈酸或细胞因子混合物:2 ng/mL IL-1β、1000 U/mL IFN-l和TNF-α(细胞)治疗。(A)经处理的小鼠胰岛的Western blot显示myc-Ang-2在胰岛中过度表达Ang-2。(B)通过16.7/2.8 mM葡萄糖刺激评估的刺激指数显示GSIS,并将其归一化为对照。(C、D)经处理的小鼠胰岛固定于GSIS后,TUNEL和胰岛素双重染色检测凋亡细胞。不同治疗的代表性图像。(E、F)CD31的qPCR分析(E)和ICAM(F)来自过度表达Ang-2的小鼠胰岛。(G、H)在Ad-Ang-2或Ad-GFP过度表达Ang-2的人类胰岛中,对蛋白质进行代表性的western blots(上部)和密度分析(下部),显示myc-Ang-2、ICAM-1、裂解caspase 3和肌动蛋白/微管蛋白作为内务控制(G;MOI=50)或用100 nM Tie-2抑制剂处理72小时(H)数据是3-5个不同器官供体(人类胰岛)或3-5个独立小鼠胰岛分离物的3-5个单独实验的平均值+/-SE*p<0.05,治疗组与11.1 mM血糖控制组,#p<0.05Ang2-rtTA与rtTA。
图4
图4。在HFD反应中,Ang-2过度表达导致胰岛血管减少和β细胞衰竭。
β细胞特异性过表达雄性Rip-rtTA;tet-O-Ang-2(Ang2-rtTA)和Rip-rtTA(rtTA)保持正常饮食(ND)或高脂肪高蔗糖饮食(HFD),在饮用水中加入1mg/ml强力霉素,持续16周。(A、B)腹腔内葡萄糖的血糖水平(A)和胰岛素耐受性(B)在HFD 16周时进行测试。(C、D)葡萄糖刺激胰岛素分泌,显示注射葡萄糖后15分钟和30分钟的血清胰岛素水平和刺激指数。数据是来自n=8(ND)或n=19只小鼠/组的4个独立实验的平均值+/-SE。(E-H)对胰腺切片进行分析(E)β-细胞质量(F)TUNEL和胰岛素双重染色法检测细胞凋亡(10000个β-细胞/小鼠,n=6只小鼠/组)和(G)CD31/胰岛素联合染色定量胰岛血管面积(100个胰岛/小鼠,n=6只小鼠/组)。(H)每组3只动物的胰岛血管密度表示为每个胰岛的血管数-mm2 (一)CD31(红色)/胰岛素(绿色)联合染色的代表性图像*与rtTA ND相比p<0.05,#与rtTA HFD相比p<0.05,§与Ang2-rtTA ND相比p<0.05
图5
图5。T2D患者的胰岛过度血管化和Ang-2过度表达的影响。
健康的胰岛周围是完整的毛细血管,由血管紧张素/紧张素系统和支持胰岛功能和生存的细胞外基质维持。胰岛素需求增加导致更多的胰岛血流量、β细胞质量和血管扩张,并随之进行补偿。短暂的Ang-2上调促进血管生成,导致胰岛内皮细胞进入非静止状态,抑制Tie-2信号传导。在人类T2D进展过程中,β细胞衰竭和凋亡伴随着胰岛和内皮炎症的增加以及胰岛过度血管化。另一方面,Ang-2过度表达可防止β细胞质量和血管扩张,以应对伴有持续胰岛和内皮炎症的HFD。

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引用人

工具书类

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赠款和资金

这项工作得到了欧洲研究委员会(ERC)、德国研究基金会(DFG)、BMBF德国糖尿病中心(DZD)的资助(到KM)以及EFSD阿尔伯特·雷诺德(到PS)的旅行资助。人类胰岛是通过JDRF 31-2008-413奖(ECIT基础研究岛计划)和综合胰岛分布计划(IIDP)提供的。尸检胰腺由国家疾病研究交换所NDRI提供,由NIDDK提供支持。