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.2016年8月8日;11(8):e0160900。
doi:10.1371/journal.pone.0160900。 2016年eCollection。

GABAA受体细胞内阻断方法的评价

附属机构

GABAA受体细胞内阻断方法的评价

劳拉·阿瑟顿等。 公共科学图书馆一号. .

摘要

选择性阻断抑制性突触传递到特定神经元是一种有用的工具,可用于解剖正在进行的网络活动中的兴奋性和抑制性突触体成分。为了实现这一点,与其他操作相比,使用能够阻断GABAA受体的贴片溶液进行细胞内记录具有优势,例如GABA能拮抗剂的药理应用或中间神经元群体的光遗传抑制,因为大多数抑制性传播不受影响,因此保留了剩余的网络活性。在此,我们评估了三种先前描述的阻断抑制作用的方法:苦曲霉毒素、4,4'-二硝基-苯乙烯-2,2'-二磺酸(DNDS)和4,4'-二异硫氰基苯乙烯-2,1'-二磷酸(DIDS)分子在细胞内的应用。DNDS和苦毒毒素在阻断小鼠CA1锥体细胞诱发的单突触抑制性突触后电流(IPSC)方面均无效。含有DIDS和氟化铯但缺乏核苷酸ATP和GTP的细胞内溶液可有效降低IPSC的振幅。然而,发现这种效应与DIDS和细胞内核苷酸的缺失无关,而是由于该细胞内溶液中存在氟离子,这也阻止了海马锐波期间自发发生的IPSC。至关重要的是,细胞内氟离子还导致自发和诱发兴奋性突触电流的减少,并阻止了细胞内溶液中核苷酸的包含。因此,在所测试的方法中,只有氟离子对IPSC的细胞内阻滞有效,但这种方法具有额外的细胞效应,降低了其选择性和实用性。

PubMed免责声明

利益冲突声明

竞争利益:作者有以下兴趣。本研究部分由礼来公司资助。没有专利、正在开发的产品或已上市的产品需要申报。这并不会改变作者对所有PLOS ONE数据和材料共享政策的遵守,如作者指南中在线详述的那样。

数字

图1
图1。DNDS、苦毒毒素和CsF-DIDS对诱发IPSC的影响。
A-E上部面板:K-葡萄糖酸盐(A)、K-葡萄糖酸酯+DNDS(B)、K--葡萄糖酸酯+DN DS和CaCl扩散过程中的痕迹示例2(C) 、K-葡萄糖酸盐+苦曲霉毒素(D)和Cs-氟化物+DIDS(E)细胞内移液管溶液。每条记录道显示了记录开始时的IPSC(黑色,中间面板中的时间点i)、浸提苦毒毒素前的最后一分钟(洋红色,中间面板的时间点ii)和浸提苦毒素结束时的IPCC(蓝色,中间面板上的时间点iii)。A-E中间面板:标准化IPSC振幅。蓝色条表示存在浴液苦毒毒素(PTX)。A-D的下面板:实验期间对应的串联电阻。NBQX和AP5出现在整个实验中。E) 在时间点ii采集的四种细胞内移液管溶液的归一化诱发IPSC振幅的组数据,单个数据点标记为品红点。摘要统计数据表示对每个数据集在时间点ii的归一化诱发IPSC振幅与归一化基线振幅进行比较的测试。数据绘制为平均值±SEM。
图2
图2。DIDS、核苷酸缺失和KF对诱发IPSC的影响。
A-D的上面板:三种细胞内移液管溶液(K-葡萄糖酸盐+DIDS(A)、不含ATP或GTP(B)的K-葡萄糖酸酯和-80mV(C)和-50mV(D)的K-氟化物)扩散过程中的样本痕迹。每条记录道显示了记录开始时的IPSC(黑色,中间面板中的时间点i)、浸提苦毒毒素前的最后一分钟(洋红色,中间面板的时间点ii)和浸提苦毒素结束时的IPCC(蓝色,中间面板上的时间点iii)。A-D中间面板:标准化IPSC振幅。蓝色条表示存在浴液苦毒毒素。A-D的下面板:实验期间对应的串联电阻。NBQX和AP5出现在整个实验中。E) 在时间点ii采集的归一化IPSC振幅的组数据,用洋红色点标记的单个数据点。摘要统计数据表示对每个数据集在时间点ii的归一化诱发IPSC振幅与归一化基线振幅进行比较的测试。数据绘制为平均值±SEM。
图3
图3。海马尖波特征。
A) 海马尖波的示例轨迹(i)显示了原始的局部场电位(上部)、滤波的<30Hz尖波带(中部)和滤波的120-300Hz波纹带(下部)。由i)中的虚线框标记的单个锐波的缩放版本如ii)所示。B) 显示不同频带功率(彩色)随时间变化的平均锐波频谱图。C) 在一个小时长的记录周期内,以分钟为单位的锐波发生率(黑色)、振幅(蓝色)和长度(红色)的分组数据。D&F)原始LFP的NBQX(D)和苦曲霉毒素(F)前后的样本痕迹(上部),检测到的尖波由绿点标记。洋红色条表示缩放轨迹中显示的区域(如下)。F3ii)在F3i中对品红色框进行进一步缩放。D-G中的灰色条表示存在NBQX(D-E)和苦毒毒素(F-G)。E&G)NBQX(E)和苦毒毒素(G)前后锐波特性的分组数据,以分钟为单位。数据绘制为平均值±SEM。
图4
图4。基于氟的细胞内移液管溶液可以在海马尖波期间阻断自发IPSC。
A-B)左图显示了使用K-葡萄糖酸盐(A)和Cs-氟化物+DIDS细胞内移液管溶液(B)的实验痕迹示例。在每种情况下,记录LFP(黑色),同时将电池保持在4种不同的保持电位(-80mV、-70mV、-60mV和-50mV)中的1种(灰色)。在锐波(绿点)期间检测到的向内和向外PSC分别由洋红色和蓝色点标记。右侧面板中显示了不同保持电位下的单个示例锐波和PSC。C-D)组数据显示在K-葡萄糖酸盐(C)和Cs-氟化物+DIDS(D)细胞内移液管溶液中,在不同的保持电位下检测到同时向内(品红色)或向外(蓝色)PSC的锐波百分比。数据绘制为平均值±SEM。
图5
图5。氟化物对自发和诱发EPSCs的影响。
A-B)来自1的锐波(黑色)和相应自发EPSC的示例轨迹(上面板)标准在葡萄糖酸钾(A)和氟化钾(B)细胞内移液管溶液中记录5分钟。下面板:洗井期间,分组归一化EPSC振幅时间过程。灰色条(时间点i)和洋红色条(时间点ii)表示从上面板中采集示例记录道的时间。D-E的上面板):K-葡萄糖酸盐(D)和K-氟罗利特(E)洗脱过程中经药物分离、诱发的EPSC的痕迹示例。每条记录道显示洗入开始时(黑色,中间面板中的时间点i)和洗入结束时(洋红色,中间面板的时间点ii)的EPSC。D-E中间板:冲洗过程中的标准化EPSC振幅。D-E下部板:冲洗期间的相应串联电阻。在整个实验过程中,浴液中都存在苦毒毒素。C&F)在记录自发(C)和诱发(F)EPSC的最后5分钟内采集的正常化EPSC振幅的平均组数据,以洋红色点标记的单个数据点。摘要统计数据表示对每个数据集在最后5分钟记录的归一化EPSC振幅与归一化基线振幅进行比较的测试。数据绘制为平均值±SEM。

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