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.2016年7月25日;11(7):e0158908。
doi:10.1371/journal.pone.0158908。 2016年eCollection。

血管生成素-1过度表达减轻肾纤维化

附属机构

血管生成素-1过度表达减轻肾纤维化

苏迪尔·辛格等。 公共科学图书馆一号. .

摘要

新的证据强调了微血管损伤在肾纤维化发展和进展中的关键作用。血管生成素-1(Ang-1)是一种分泌的血管生长因子,与内皮特异性Tie2受体结合。Ang-1/Tie2信号传导对于调节血管发育和调节损伤后的血管反应至关重要,但在成熟、静止的血管中是不必要的。尽管血管内皮生长因子(VEGF)信号的失调已在肾脏病理学中得到了很好的研究,但对Ang-1/Tie2途径在肾间质纤维化中的作用知之甚少。以前的研究表明,当使用不同的Ang-1工程形式时,系统性过度表达Ang-1对肾小管间质纤维化的影响是相互矛盾的。在这里,我们通过利用条件转基因小鼠系统[Pax8-rtTA/(TetO)7 Ang-1]来研究天然Ang-1的定点表达对肾纤维化过程和肾小管周围毛细血管网络的影响,该系统允许成年小鼠增加肾小管Ang-1生成。使用小鼠单侧输尿管梗阻(UUO)纤维化模型,我们证明靶向Ang-1过表达可减弱肌成纤维细胞的活化和间质胶原I的积聚,抑制转化生长因子β1的上调和随后Smad 2/3的磷酸化,抑制肾脏炎症,并刺激阻塞肾中的肾小管周围毛细血管的生长。我们的结果表明,Ang-1是一种潜在的治疗药物,可以靶向肾纤维化中的微血管损伤,而不会损害人体正常的生理血管系统。

PubMed免责声明

利益冲突声明

竞争利益:提交人声明,不存在相互竞争的利益。

数字

图1
图1。转基因构建和实验计划。
(A) 转基因小鼠系中用于产生逆四环素控制转录激活物(rtTA)系统(Tet-On系统)的两种结构的示意图。a。Pax8启动子指导肾小管细胞中rtTA的表达。b。(TetO)7/CMV-Ang-1-ZsGreen转基因由多西环素(DOX)结合的rtTA诱导。(B) 11周龄P8TA冷冻肾切片;TETANG-1小鼠在三周龄时分别接受常规或DOX食物,持续8周。在给予DOX的双阳性转基因小鼠中,绿色荧光蛋白(ZsGreen)在肾小管的所有节段中表达。比例尺,40μm。(C) DOX给药8周后,显示基因型小鼠全肾裂解物中Ang-1表达的代表性免疫印迹。(D) UUO研究使用的实验计划。CON,控制。
图2
图2。肾小管中Ang-1的靶向过度表达可减轻UUO后肾间质纤维化。
双转基因P8TA/Ang-1或单转基因对照小鼠(Ang-1/+或P8TA/+)在DOX给药8周后接受假手术或梗阻7天(n=6只小鼠/组)。偏振光下天狼星红染色分析肾皮质(A)和髓质(C)纤维化。比例尺,40μm。根据所示组(n=6只小鼠/组)的肾矢状切面分别对皮质(B)或髓质(D)中天狼星红阳性区域进行形态计量学定量。在x400倍放大镜下,分别在皮质或髓质均匀地拍摄了10张照片/肾脏。使用Image J软件分析复合显微镜图像。*P<0.05;**方差分析显示P<0.001。CON,控制。
图3
图3。肾小管中Ang-1的靶向过表达下调TGF-β1信号传导。
在DOX治疗8周后,P8TA/Ang-1和对照(Ang-1/+或P8TA/+)小鼠接受假手术或7天UUO(n=6只小鼠/组)。在12周龄时采集肾脏进行RNA和蛋白质分析。(A) 通过定量RT-PCR评估指定组的肾脏TGF-β1转录水平。将TGF-β1的表达标准化为与小鼠GAPDH的比率,并将假手术对照小鼠的平均TGF-α1/GAPDH比率设置为1。平均值±标准差;**方差分析显示P<0.001。(B) 对所示组的肾裂解物中的磷酸-Smad 2/3和GAPDH蛋白进行代表性免疫印迹分析。(C) 定量RT-PCR显示了指定组肾脏中Snail1和Twist的相对转录水平。首先将绝对水平标准化为GAPDH的水平,然后再将其标准化为假手术对照肾脏的水平。平均值±SD;**方差分析显示P<0.001。CON,控制。
图4
图4。肾小管靶向过度表达Ang-1可改善肾纤维化反应。
DOX处理的P8TA/Ang-1和对照(Ang-1/+或P8TA/+)小鼠接受假手术或7天UUO(n=6只小鼠/组)。在12周龄时采集肾脏进行RNA、蛋白质和IF分析。(A和D)定量RT-PCR显示了所示基因型的非手术或UUO肾脏中α-SMA(A)和I型胶原(D)的相对转录水平。首先将绝对水平标准化为GAPDH的水平,然后将其标准化为假手术单转基因对照肾脏的水平。*P<0.05;**方差分析显示P<0.001。(B) 通过WB分析指定组的全肾裂解物的α-SMA和GAPDH水平。肾裂解物中α-SMA的定量标准化为GAPDH。假手术对照小鼠的平均α-SMA/GAPDH比值设为1。平均值±SD;*方差分析显示P<0.05和**P<0.001。(C和E)IF染色,定量检测指定组石蜡肾切片上的α-SMA(红色)(C)或I型胶原(绿色)(E)。原始放大倍数:x200。所示组(n=6只小鼠/组)肾矢状切面皮质中α-SMA-(C)或胶原I-(E)阳性区域的形态计量学定量。在放大x200倍的情况下,在皮质中均匀地拍摄了五张照片/肾脏。使用Image J软件分析复合显微图像。假手术对照小鼠的α-SMA或I型胶原阳性区域设为1。平均值±SD;*P<0.05;**方差分析显示P<0.001。CON,控制。
图5
图5。靶向性肾小管Ang-1上调抑制UUO诱导的炎症。
暴露于8周DOX的P8TA/Ang-1和对照(Ang-1/+或P8TA/+)小鼠接受假手术或7天UUO(n=6只小鼠/组)。在12周龄时采集肾脏进行IF染色和mRNA定量。(A) 所示组石蜡肾切片上的F4/80(红色)IF染色。细胞核用Hoechst 33342(蓝色)复染。比例尺,50μm。(B) 通过q-RT-PCR评估指定组的肾脏TNFα转录水平。TNFα的表达被标准化为与小鼠GAPDH的比率,而假手术对照小鼠的平均TNFα/GAPDH比率设置为1。平均值±SD;*方差分析显示P<0.05和**P<0.001。(C) 定量RT-PCR显示所示组肾脏中ICAM-1和MCP-1的相对转录水平。首先将绝对水平标准化为GAPDH的水平,然后再将其标准化为假手术对照肾脏的水平。平均值±SD;*方差分析显示P<0.05和**P<0.001。CON,控制。
图6
图6。UUO后,肾小管导向的Ang-1过度表达促进肾小管周围毛细血管网络的生长。
(A) 在DOX治疗8周后,P8TA/Ang-1和对照(Ang-1/+或P8TA/+)小鼠接受假手术或7天UUO(n=6只小鼠/组)。采集肾脏,WB分析裂解物中Ang-1、CD31和GAPDH的水平。在指定组的肾裂解液中,(B)Ang-1或(C)CD31标准化为GAPDH的定量。假手术对照小鼠的平均Ang-1/GAPDH或CD31/GAPDH比值设为1。平均值±SD;*方差分析显示P<0.05和**P<0.001。(D) DOX处理的P8TA/Ang-1小鼠和假手术或UUO 7天的对照(Ang-1/+或P8TA/+)小鼠(n=6只小鼠/组)石蜡肾切片上CD31(红色)的IF染色。细胞核用Hoechst 33342(蓝色)复染。比例尺,50μm。CON,控制。

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