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.2016年10月;146(4):489-512.
doi:10.1007/s00418-016-1457-0。 Epub 2016年6月25日。

Syap1基因敲除小鼠的初步特征及其在小鼠脑和培养运动神经元中的分布

附属公司

Syap1基因敲除小鼠的初步特征及其在小鼠脑和培养运动神经元中的分布

多米尼克·施密特等。 组织化学细胞生物学. 2016年10月.

摘要

突触相关蛋白1(Syap1/BSTA)是果蝇Sap47(突触相关蛋白质47kDa)的哺乳动物同源物。Sap47缺失突变幼虫表现出短期突触可塑性降低和关联行为可塑性缺陷。在培养的脂肪细胞中,Syap1作为复合物的一部分发挥作用,该复合物在Ser(473)磷酸化蛋白激酶Bα/Akt1(Akt1)并促进分化。Syap1在脊椎动物神经系统中的作用尚不清楚。在这里,我们生成了一只Syap1基因敲除小鼠,并表明缺乏Syap1与生存能力和生育能力兼容。成年敲除小鼠的大脑形态没有明显缺陷。在野生型大脑中,Syap1广泛分布于突触神经膜中,尤其是富含谷氨酸能突触的区域,但也存在于与特定神经元胞体高尔基体相关的核周结构中。在培养的运动神经元中,Syap1位于轴突和生长锥内,富集于与高尔基体标记物部分重叠的核周区域。我们详细研究了Syap1敲除和敲除对这些细胞结构和发育的影响。重要的是,Syap1基因敲除并不影响运动神经元存活或轴突生长。出乎意料的是,在培养的运动神经元中,Syap1的敲除和敲除均与Akt的Ser(473)或Thr(308)磷酸化降低无关。我们的研究结果表明Syap1在小鼠中枢神经系统中广泛表达,具有区域特异性分布模式,特别是在嗅球、海马和小脑中。

关键词:BSTA;大脑;谷氨酸能突触;PKB/Akt磷酸化;Syap1本地化;可行性。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者没有利益冲突需要声明。

数字

图1
图1
靶向突变1a等位基因示意图(Syap1公司 tm1a(EUCOMM)Hmgu)鼠标的Syap1公司基因(,文本中的详细信息)小鼠Syap1蛋白的氨基酸序列(b条)和融合蛋白(红色氨基酸)在敲除小鼠中表达(b条,c(c)). Syap1外显子1-3编码红色中的序列b条拼接到编码小鼠雕刻-2蛋白片段的序列上,如c(c).BSD结构域的保守氨基酸(下划线的在里面b条)标记为蓝色
图2
图2
验证Syap1公司敲除和演示Syap1蛋白在不同组织中的表达。用来自小鼠皮层的信使核糖核酸和连接的引物进行qRT-PCRSyap1公司外显子3和外显子4表明完整的转录水平在Syap1公司 tm1a型突变体(曲线 ,4)与野生型相比增加了约30倍(曲线 1,2).曲线 5表示背景(无逆转录酶)。b条通过Western blots分析的指示组织的裂解物显示,在野生动物的所有测试大脑区域中Syap1蛋白表达水平相当-型小鼠。然而,该蛋白也在非神经组织中检测到,如肝脏(印迹的左半部分). 没有从以下位置获得组织的Syap1信号Syap公司 tm1a型突变小鼠(污点的右半部分).c(c)在来自Syap公司 tm1a型突变体(车道2)即使在增加的蛋白质负荷和延长的暴露之后。两个弱者上部频带是不具体的,弱者下部频带可能代表Syap1降解产物。污点顶部在里面b条c(c):Calnexin信号作为加载控制
图3
图3
野生型截面(,b条,电子,(f))和Syap1公司淘汰赛(c(c),d日,,小时)Syap1抗血清染色的大脑(左边)和DAPI(正确的). 在冠状切片中(,c(c))弥漫性Syap1特异性免疫标记遍布大脑所有部位,优先定位于灰质神经膜。箭头点与Syap1抗血清发生非特异性交叉反应的下丘脑细胞,因为它们在野生型和敲除型切片中都检测到,但在没有初级抗体的对照组中没有检测到(见图S3)。这个星号表示丘脑区域包含大量细胞,具有较强的核周Syap1特异性免疫荧光标记(图5中放大)。矢状位切片显示小脑皮质分子层中Syap1的免疫荧光特别强(电子,).比例尺1毫米(上面的),200微米(降低)面板
图4
图4
在主嗅球中,嗅神经层观察到强烈的Syap1特异性免疫反应(星号)和肾小球(x个)野生型截面(,c(c)). 二尖瓣层发现较低强度的Syap1信号(箭头在里面). Syap1抗血清与敲除片段中的未知抗原弱交叉反应(b条,d日). 抗Syap1抗血清的双重免疫标记(左边)和抗TH(中间的)显示Syap1在肾小球神经膜中积聚。细胞核用DAPI染色[覆盖层中为蓝色(正确的)].比例尺200微米(上半部分),50微米(下半部分)
图5
图5
Syap1在丘脑的分布。抗Syap1增强染色(左边)野生型丘脑的特定区域(图3a中由星号)用高尔基体标记物GM130双重染色(中间的)确定为Syap1特异性免疫荧光在高尔基体附近的核周堆积。黄色在扩大中a′表示Syap1和GM130的重叠,以及箭头指向缺乏Syap1免疫标记的推测为非神经元细胞中的GM130免疫活性高尔基体(如密集的DAPI染色细胞核所示)。c(c)Syap1特异性免疫荧光的核周积聚局限于神经元的一个亚群,如放大图所示(c′)用DAPI标记的核(蓝色)缺乏Syap1特异性免疫荧光(红色). 与中的淘汰部分进行比较b条d日(左侧和中间面板)显示了由于抗Syap1抗血清的非特异性交叉反应而标记的精细荧光纤维状结构。比例尺25微米(,c(c)); 5微米(a′,c′)
图6
图6
Syap1在海马体中的分布。在野生型切片中,Syap1特异性免疫荧光出现在一般神经膜中,在CA2胞体中观察到高水平的Syap1标记(大箭头)Syap1免疫反应在CA1或CA3胞体周围也可检测到较弱的程度(小箭头)与淘汰赛相比(b条,d日). 来自齿状回颗粒细胞的锥体下和锥体上苔藓纤维通路显示出强烈的Syap1特异性免疫反应(箭头). Syap1也存在于灵芝地层中。(c(c),d日)抗Syap1和GM130双重染色CA2区的扩大表明核周Syap1与这些细胞的高尔基体有关。嗨,希卢斯;SG,颗粒层;SL,透明层;SLM,地层腔隙分子;SM,分子层;SO,地层方向;SP,金字塔状地层;SR,辐射层。比例尺200微米(,b条),50微米(c(c),d日),10微米(插入在里面c(c))
图7
图7
Syap1在小脑的分布。Syap1特异性免疫荧光积累与谷氨酸能突触神经膜重叠,后者通过抗vGlut1染色标记谷氨酸能神经元突触的囊泡谷氨酸转运体[与野生型相比(,c(c),电子)带敲除部分(b条,d日,(f))]. 在放大图中(电子,(f))中白色方块表示的区域c(c)日期:,钙结合蛋白双标记鉴定Purkinje细胞中Syap1特异性免疫荧光的核周堆积(中间立柱在里面c(c))是显而易见的(星号在里面电子),但在延伸到分子层的这些细胞的大树突中也检测到Syap1(箭头在里面电子). 同样,Syap1免疫荧光与高尔基体标记物GM130的信号部分重叠(黄色的在里面c′,最右边的图像). 在颗粒层中(灰色正方形在里面c(c))Syap1特异性免疫荧光与谷氨酸能突触重叠,但也存在于颗粒神经元的核周区和局部神经膜中(图S5c中放大)。蓝色核DAPI。比例尺100微米(,b条),25微米(c(c),d日),10微米(c′,电子,(f))
图8
图8
Syap1公司(,c(c),d日,左列)抗ChAT抗血清标记的脊髓神经膜和胆碱能细胞(运动神经元)(c(c),中间立柱). 比较野生型截面()带敲除部分(b条).白盒中的单元格在里面图中放大了c(c)d日.胆碱能突触发作(箭头在里面c(c))显示很少或没有Syap1特异性免疫荧光。同样,Syap1信号和GM130染色有相当大的重叠(箭头在里面d日).蓝色核DAPI。比例尺100微米(,b条); 50微米(c(c),d日)
图9
图9
神经肌肉接头处的Syap1。通过比较突触素(SYP)和α-银环蛇毒素(α-BTX),在神经肌肉接头处鉴定出低水平的Syap1特异性免疫荧光,但在肌肉中也观察到突触外的Syap1信号。比较野生类型()带击倒准备(b条).比例尺10微米
图10
图10
Syap1蛋白在原代培养运动神经元中的定位。如图所示,培养5天的初级运动神经元的代表性图像,被Syap1和乙酰化微管蛋白染色,或与阴茎倍体蛋白共同染色。Syap1公司敲除细胞(b条,d日,(f))和shRNA–Syap1公司-处理过的细胞(小时,j个,)与野生型相比,Syap1免疫反应性显著降低(,c(c),电子)或未感染(,,k个)和sh-mismatch RNA(“模拟”)感染(未显示)对照。Syap1信号见于树突、胞体、轴突和轴突远端。放大的图像躯体的(c(c),)细胞质和树突中可见点状Syap1染色,核周堆积明显。Syap1信号也存在于生长锥中(电子,k个).蓝色核DAPI染色。比例尺 ,b条,,小时:25微米;c(c)(f),:10微米
图11
图11
Syap1在高尔基体细胞器附近聚集。(d日)核周Syap1免疫反应部分与顺式/内侧-高尔基标记GM130(,c(c))和γ-adaptin,适配器蛋白复合物1的一种成分(b条,d日)(最大强度投影)。蓝色细胞核DAPI染色。(电子小时)Syap1和GM130的SIM超分辨率成像或γ-自适应。图中显示了典型的单个光学截面。(电子,)Syap1和GM130分配((f),小时)Syap1和γ-自适应分布。橙色箭头指向两个标签的同时出现,以及白色箭头表示Syap1-阳性,GM130-或γ-自适应-负信号。比例尺 ,b条,电子,(f)10微米;c(c),d日5微米;,小时2.5微米
图12
图12
淘汰Syap1公司不会改变初级运动神经元的存活或轴突生长。在不存在或存在BDNF的情况下培养7DIV的原代运动神经元的存活率的量化。在第1天和第7天分别对细胞进行计数。运动神经元的存活率与Syap1公司基因敲除(ko)与野生型(WT)胚胎的比较[n个=17(WT)和7(ko)独立文化]。未经BDNF培养的野生型细胞显示细胞存活率显著降低。b条培养7 DIV的初级运动神经元轴突长度不受Syap1公司淘汰赛(n个=288(WT)和237(ko)
图13
图13
Syap1公司敲除或敲除不会显著影响Thr的Akt总磷酸化308和Ser473初级运动神经元。BDNF(20 ng/ml)刺激的血清饥饿细胞的Western blot,时间序列为2 s至30 min。最大Akt-Thr308(左侧污点)和Ser473(右侧螺栓)神经营养素刺激2-5分钟后可实现磷酸化。b条野生型和野生型运动神经元的蛋白质印迹Syap1公司用BDNF刺激敲除胚胎5分钟后,Thr处Akt磷酸化水平没有降低308(左侧污点)或Ser473(右侧螺栓)由于Syap1公司淘汰赛。Calnexin和pan-Akt作为负荷控制,而GFP水平表明细胞感染呈阳性。c(c),d日 斑点属于Syap1公司shRNA感染的运动神经元和未感染和模拟感染的对照刺激2个(c(c))或五个(d日)分钟。Thr的Akt磷酸化无差异308(左侧斑点)和Ser473(右斑点)之后观察到Syap1公司与控制相比,击倒。Syap1的检测(右斑点)表明敲除后Syap1蛋白水平显著降低。这些和类似信号的量化斑点如图S8所示
图14
图14
pAkt公司Ser473系列/受刺激运动神经元的不同隔室中的Akt比率没有改变。在CNTF(5 ng/ml)存在的情况下进行5次DIV后,细胞被血清和神经营养因子剥夺6-7小时,用BDNF(20 ng/mlSer473系列、Akt和GFP。pAkt的分区特定量化Ser473系列/Akt比值如图S9所示。pAkt公司Ser473系列/经BDNF刺激后,Akt比率显著增加,但pAkt具有可比性Ser473系列/Akt值是在Syap1公司在所有测试的运动神经元隔室中进行击倒或模拟治疗。比例尺体细胞和轴突:10µm;生长锥:5µm

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