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.2016;1(7):e86460。
doi:10.1172/jci.insight.86460。 Epub 2016年5月19日。

蛋白蛋氨酸氧化增强急性缺血性卒中再灌注损伤

附属公司

蛋白蛋氨酸氧化增强急性缺血性卒中再灌注损伤

Sean X Gu先生等。 JCI洞察力. 2016.

摘要

再灌注损伤可加重缺血性卒中的组织损伤,但关于活性氧与卒中严重程度之间的联系机制尚不清楚。在这里,我们检验了蛋白质蛋氨酸氧化增强NF-κB活化并导致脑缺血/再灌注损伤的假设。我们发现,过表达蛋氨酸亚砜还原酶A(MsrA),一种逆转蛋白蛋氨酸氧化的抗氧化酶,减弱了ROS增强的内皮细胞NF-κB活化,部分地,通过保护钙/钙调素依赖性蛋白激酶II(CaMKII)调节域中的蛋氨酸残基免受氧化。在小鼠模型中,MsrA缺乏导致NF-κB活化增加,中性粒细胞浸润增加,梗死体积增大,短暂脑缺血/再灌注损伤后神经损伤更严重。抑制NF-κB或CaMKII可阻止这种表型。MsrA缺陷小鼠还表现出白细胞滚动增强和E-选择素上调,E-选择素是一种内皮NF-κB依赖性粘附分子,已知有助于缺血性中风中的神经血管炎症。最后,骨髓移植实验证明,神经保护作用是由非造血细胞中表达的MsrA介导的。这些发现表明,非髓细胞中的蛋白蛋氨酸氧化是NF-κB活化介导的缺血后氧化损伤的关键机制,导致急性缺血性卒中中性粒细胞募集和神经血管炎症。

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图1
图1。NF-κB的激活被H增强2O(运行)2在内皮细胞中。
HUVEC感染了腺病毒NF-κB报告子Ad-NF-κB-Luc(MOI=1000粒/细胞)。感染后40小时,用2 ng/ml的(A类)TNF-α或(B类)IL-1β(存在指定浓度的H)2O(运行)2或者,用30μM H刺激细胞2O(运行)2在指示浓度的情况下(C类)TNF-α或(D类)IL-1β。4小时后,通过萤光素酶测定法评估NF-κB活性。对PBS处理的对照细胞中的总蛋白和荧光素酶活性的结果进行了标准化。数据表示为平均RLU±SEM(n个= 5–6). *P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, ***P(P)<0.001与对照组(A类B类)采用Dunnett多重比较测试和(C类D类)采用Sidak多重比较测试的双向方差分析。
图2
图2。MsrA预防H2O(运行)2-内皮细胞NF-κB活化增强。
HUVEC与Ad-NF-κB-Luc以及过度表达人类MsrA(Ad-MsrA-Myc)、MsrB1(Ad-MslB1-FLAG)或Cre(Ad-Control)的腺病毒共同感染。(A类)分别使用抗Myc和抗FLAG抗体,以β-actin作为负荷对照,通过免疫印迹法确认MsrA和MsrB1的表达。感染后40小时,用2 ng/ml的(B类)TNF-α或(C类)存在(+)或不存在(-)H时的IL-1β2O(运行)2(30μM),如图所示。4小时后,分离细胞裂解物,并通过荧光素酶酶分析测定NF-κB活性。虚线表示在不存在H的情况下,TNF-α或IL-1β对NF-κB的激活水平2O(运行)2。PBS处理对照组总蛋白和荧光素酶活性归一化后的结果表示为平均RLU±SEM(n个= 6). (D类)TNF-α和/或H裂解物中NF-κB调节蛋白的代表性免疫印迹2O(运行)2-处理过的细胞。的级别(E类)IκBα和(F类)磷酸化p65通过密度测定法定量,β-actin和p65分别归一化(n个=4)。结果报告为与PBS处理对照组相比的相对变化,并表示为平均值±SEM*P(P)< 0.05; **P(P)< 0.01; ***P(P)< 0.001, (B类C类)使用Tukey多重比较测试和(E类F类)采用Tukey多重比较测试的单因素方差分析。
图3
图3。CaMKII Met-281/282氧化促进内皮细胞NF-κB活化。
(A类)在TNF-α或H存在(+)或不存在(-)的情况下,用1μM KN-93、KN-92或PBS对照物治疗HUVEC2O(运行)2通过萤光素酶法测定NF-κB活性。对PBS处理的对照细胞中的总蛋白和荧光素酶活性的结果进行了标准化。数据表示为平均RLU±SEM(n个= 5). 虚线表示在缺乏H的情况下NF-κB与TNF-α的激活水平2O(运行)2. (B类)TNF-α和/或H裂解物中CaMKII Met281/282氧化(ox-CaMKII)和CaMKII-Thr287磷酸化(p-CaMKIL)的代表性免疫印迹2O(运行)2感染过表达MsrA、MsrB1或Cre的腺病毒的处理细胞。的级别(C类)ox-CaMKII和(D类)通过密度测定法对p-CaMKII进行量化,并对总CaMKIL进行归一化(n个= 3). β-肌动蛋白作为负荷对照。结果报告为相对于PBS处理的对照的相对变化,并表示为平均值±SEM(E类)通过荧光素酶活性评估感染过表达WT-CaMKII、CaMKII M281/282V腺病毒的HUVEC或存在或不存在TNF-α或H的空白对照中NF-κB活性2O(运行)2对PBS处理的对照细胞中的总蛋白和荧光素酶活性的结果进行了标准化。数据表示为平均RLU±SEM(n个= 5). TNF-α的所有浓度为2 ng/ml,H的浓度为2O(运行)2为30μM,除非另有说明**P(P)< 0.01; ***P(P)< 0.001, (A类E类)使用Tukey多重比较测试和(C类D类)采用Tukey多重比较测试的单因素方差分析。
图4
图4。MsrA缺乏增强体内血管NF-κB的激活。
NF-κB活性通过荧光素酶酶法评估(A类)肺部(B类)主动脉,和(C类)颈动脉A女士–/–HLL公司A女士+/+HLL公司用TNF-α(1 mg/kg i.p.)或载体(PBS)治疗小鼠4小时后。对车辆处理后的总蛋白和荧光素酶活性的结果进行了标准化A女士–/–HLL公司老鼠。数据表示为平均RLU±SEM(n个=每组6个)*P(P)< 0.05; **P(P)< 0.01; ***P(P)<0.001,采用Tukey多重比较测试的双向方差分析。代表性免疫荧光图像的横截面(D类)主动脉和(E类)颈动脉来自A女士+/+HLL公司MsrA公司–/–HLL公司用TNF-α(1 mg/kg)或所示载体治疗小鼠4小时后。切片用荧光素酶抗体(绿色)、内皮标记物CD31(红色)和核标记物DAPI(蓝色)染色,然后合并。原始放大倍数,×40。
图5
图5。A女士–/–小鼠对脑缺血/再灌注损伤的敏感性增加。
(A类)具有代表性的2,3,5-三苯基氯化四氮唑(TTC)染色A女士+/+A女士–/–小鼠tMCAO后24小时。活组织被染成红色,而梗死区则未被染成白色。(B类)各组校正的平均梗死体积表示为平均值±SEM(n个=7–8只小鼠/组)*P(P)<0.05,双面,未配对学生t吨测试。(C类)各组的神经系统评分以散点图表示,水平线表示中位数**P(P)<0.01,曼希特尼U型测试。(D类)NF-κB活性通过荧光素酶分析评估同侧梗死半球和对侧未梗死半球MsrA公司+/+HLL公司(n个=5)或A女士–/–HLL公司(n个=6)小鼠tMCAO后24小时。PBS处理的总蛋白和荧光素酶活性的结果被归一化A女士+/+HLL公司老鼠。数据表示为平均RLU±SEM**P(P)<0.01,采用Tukey多重比较检验的双向方差分析。(E类)脑匀浆中纤维蛋白/纤维蛋白原[纤维蛋白(原)]的典型Western blotA女士+/+A女士–/–tMCAO后的小鼠。(F类)通过密度测定法定量梗死区和未梗死区的纤维蛋白(原)水平,并对β-肌动蛋白进行归一化。结果报告为平均值±SEM(n个= 4). 使用Tukey的多重比较测试进行双向方差分析。
图6
图6。敏感性增加A女士–/–小鼠脑缺血/再灌注损伤具有NF-κB依赖性。
(A类)tMCAO后24小时连续冠状切片的代表性2,3,5-三苯基四氮唑(TTC)染色。A女士+/+MsrA公司–/–如图所示,在tMCAO前4小时用对照肽或NBD肽(2 mg/kg i.p.)治疗小鼠。(B类)各组校正的平均梗死体积表示为平均值±SEM(n个=9–11只小鼠/组)*P(P)< 0.05; ***P(P)<0.001,采用Tukey多重比较测试的双向方差分析。(C类)各组的神经系统评分以散点图表示,水平线表示中位数*P(P)< 0.05; ***P(P)< 0.001; ****P(P)<0.0001,等级方差分析。(D类)代表性章节和(E类)tMCAO后脑梗死区域NF-κB活化(磷酸化p65阳性细胞)的定量。(F类)代表性章节和(G公司)tMCAO后脑梗死区域中性粒细胞(Ly6 B.2阳性细胞)的定量。切片用H&E复染。原始放大倍数,×40。数据表示为平均值±SEM(n个= 6–8). 根据每只小鼠的4个冠状切片(间隔100μm)计算每个小鼠的平均数据*P(P)< 0.05; **P(P)<0.01,采用Tukey多重比较检验的双向方差分析。
图7
图7。抑制CaMKII保护A女士–/–小鼠脑缺血再灌注损伤。
(A类)tMCAO后24小时连续冠状切片的代表性2,3,5-三苯基四氮唑(TTC)染色。A女士+/+A女士–/–如图所示,在tMCAO前4小时,用CaMKII抑制剂KN-93(5mg/kg i.p.)或非活性类似物KN-92治疗小鼠。(B类)各组校正后的平均梗死体积表示为平均值±SEM(n个=6–7只小鼠/组)*P(P)< 0.05; ***P(P)<0.001,采用Tukey多重比较测试的双向方差分析。(C类)各组的神经系统评分以散点图表示,水平线表示中位数**P(P)<0.01****P(P)<0.0001,等级方差分析。
图8
图8。非造血细胞中的MsrA介导了对脑缺血/再灌注损伤的保护作用。
(A类)骨髓移植方案示意图。骨髓(BM)来自MsrA公司+/+(WT)或A女士–/–将小鼠移植到WT或A女士–/–受体小鼠产生4个实验组小鼠。(B类)代表性的2,3,5-三苯基四氮唑氯化物染色(TTC染色)WT或A女士–/–移植WT或A女士–/–骨髓,tMCAO后24小时。活组织被染色为红色,而梗死区域未被染色(白色)。(C类)各组校正的平均梗死体积表示为平均值±SEM(n个=7–8只小鼠/组)*P(P)< 0.05; **P(P)<0.01,采用Tukey多重比较检验的双向方差分析。(D类)各组的神经系统评分以散点图表示,水平线表示中位数*P(P)<0.05,等级方差分析。
图9
图9。A女士–/–小鼠白细胞滚动增加。
(A类)活体内显微图像显示肠系膜毛细血管后微静脉中滚动的白细胞(箭头),并量化介于A女士+/+A女士–/–老鼠。每只小鼠的平均值从每只小鼠2到3个微静脉计算得出。数据表示为平均值±SEM(n个=5–6)。原始放大倍数,×40。(B类)用RT-PCR和(C类)酶联免疫吸附试验测定血液中可溶性E-选择素蛋白水平A女士+/+A女士–/–老鼠。(D类)用RT-PCR和(E类)酶联免疫吸附测定法测定血液中可溶性P-选择素蛋白水平A女士+/+MsrA公司–/–老鼠。数据表示为平均值±SEM(n个= 6). *P(P)< 0.05; **P(P)<0.01,双面,未配对学生t吨测试。
图10
图10。由再灌注损伤触发的神经血管炎症的机制途径示意图。
脑缺血/再灌注诱导TNF-α等细胞因子的产生,这些细胞因子可激活NF-κB依赖性基因转录,并通过经典的NFκB激活途径促进神经血管炎症:(a)结扎TNF-β受体导致受体相互作用蛋白(RIP)激酶的募集;(b) 磷酸化和激活IKK复合物;(c) IκBα的磷酸化和降解;(d)p65磷酸化和磷酸化p65转运到细胞核。同时,再灌注诱导ROS的产生,导致CaMKII Met281/282的氧化(红色箭头),导致自主激酶活性。氧化的CaMKII在路径的几个步骤(虚线箭头)中增强NF-κB的激活,并通过粘附分子(如E-选择素)的转录激活增强中性粒细胞的募集,而粘附分子加剧了神经血管炎症和脑损伤。MsrA逆转CaMKII Met281/282氧化(蓝色箭头),抑制NF-κB依赖性中性粒细胞募集,并保护大脑免受缺血/再灌注损伤。

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