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.2016年7月;14(1):737-45.
doi:10.3892/mmr.2016.5339。 Epub 2016年5月24日。

胶原支架上化学偶联的基质细胞衍生因子-1α的共传递和控制释放增强大鼠骨形态发生蛋白-2驱动的成骨作用

附属公司

胶原支架上化学偶联的基质细胞衍生因子-1α的共传递和控制释放增强大鼠骨形态发生蛋白-2驱动的成骨作用

孙海鹏等。 摩尔医学代表. 2016年7月.

摘要

骨形态发生蛋白-2(BMP-2)在新型骨形成中的递送系统和临床应用研究一直备受关注。然而,当前的递送系统需要高水平的BMP‑2才能发挥生物功能。高水平BMP‑2的使用存在一些问题,包括安全性和高治疗成本。因此,需要制定降低这些输送系统所需BMP‑2水平的策略。在我们之前的研究中,开发了一种可控释放系统,该系统使用Traut试剂和交联剂4‑(N‑马来酰亚胺‑甲基)环己烷‑1‑羧酸3‑磺基-N羟基琥珀酰亚胺酯钠盐(sulfo‑SMCC)直接在胶原膜上化学偶联BMP‑2。在当前的研究中,检测了胶原支架上交联的基质细胞衍生因子-1α(SDF‑1α)的保留效率和释放动力学。此外,还评估了大鼠皮下植入后SDF‑1α的成骨活性和胶原盘上交叉连接的BMP‑2的次优剂量。分析采用了独立的双尾t检验和单因素方差分析。在本研究中,证明了胶原支架上化学偶联的SDF‑1α的可控释放。通过优化Traut试剂和Sulfo‑SMCC交联剂的浓度,与物理吸附法相比,SDF‑1α共价保留在胶原支架上的水平明显更高。间充质干细胞归巢表明,胶原支架上交联的SDF‑1α的生物学功能保持不变。在大鼠体内,与物理吸附法相比,使用SDF‑1α和在胶原支架上交叉连接的次优剂量BMP‑2联合治疗可诱导较高水平的异位骨形成。单独使用次优剂量的BMP‑2治疗后,未观察到异位骨形成。因此,SDF‑1α和胶原支架上化学偶联的次优剂量BMP‑2的联合递送可降低骨损伤治疗所需的BMP鄄2水平,降低副作用风险。

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数字

图1
图1
胶原蛋白盘尺寸。(A) 胶原蛋白支架概述(长2.5cm;宽2cm)。(B) 均匀的圆形胶原蛋白盘(直径6.4mm;厚度×0.5mm)。(C) 胶原蛋白盘的扫描电子显微镜(比例尺=50μm) ●●●●。
图2
图2
胶原蛋白SH的形成和与SDF-1α的结合。(A) Traut试剂的分子结构及其与胶原支架的相互作用。(B) 使用磺化-SMCC在胶原-SH支架上偶联SDF-1α。SDF-1α,基质细胞衍生因子-1α;磺化SMCC,4-(N-马来酰亚胺-甲基)环己烷-1-羧酸3-磺化-N-羟基琥珀酰亚胺酯钠盐。
图3
图3
SDF-1α与磺化-SMCC交联剂和胶原蛋白-SH(SDF-1β交联胶原蛋白组),以及与磷酸盐缓冲盐水和胶原蛋白(SDF-α物理吸附胶原蛋白)的结合曲线。使用ELISA进行测量。数据表示为平均值±标准偏差,**P<0.01。SDF-1α,基质细胞衍生因子-1α;磺化SMCC,4-(N-马来酰亚胺-d-甲基)环己烷-1-羧酸3-磺化-N-羟基琥珀酰亚胺酯钠盐;OD,光密度。
图4
图4
胶原支架中SDF-1α的释放动力学体外试验。数据表示为平均值±标准偏差,*P<0.05,**P<0.01。SDF-1α,基质细胞衍生因子-1α。
图5
图5
载SDF-1α胶原支架作为间充质干细胞化学吸引剂的能力。(A) 下Transwell室迁移的间充质干细胞的4′,6-二氨基-2-苯基吲哚染色图像;比例尺,50μm。(B)空白胶原、SDF-1α交联胶原和SDF-1α物理吸附胶原组中细胞归巢的结果。数据表示为平均值±标准偏差,**P<0.01。SDF-1α,基质细胞衍生因子-1α。
图6
图6
植入后4周进行Von Kossa染色。黑色/棕色染色显示钙沉积阳性。(A、B)空白胶原组;(C和D)低剂量BMP-2交联胶原组;(E和F)SDF-1α/低剂量BMP-2物理吸附胶原组;(G和H)SDF-1α/低剂量BMP-2交联胶原组。白色边框表示放大区域。(A、C、E、G),比例尺=50μm、 放大倍数,×200;(B、D、F、H),比例尺=20μm、 放大倍数,×400。SDF-1α,基质细胞衍生因子-1α;BMP-2,骨形态发生蛋白-2。
图7
图7
SDF-1α/次优BMP-2交联胶原组和SDF-1β/次优BMP-2物理吸附胶原组中钙化组织的百分比。数据表示为平均值±标准偏差,**P<0.01。SDF-1α,基质细胞衍生因子-1α;BMP-2、骨形态发生蛋白-2。

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