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.2016年2月22日;11(2):e0149728。
doi:10.1371/journal.pone.0149728。 电子收集2016。

睾丸间质细胞内胆固醇转运中的非特异性脂质转运蛋白甾醇载体蛋白-2

附属公司

睾丸间质细胞细胞内胆固醇运输中的类固醇载体蛋白-2,一种非特异性脂质转移蛋白

南希·C·李等。 公共科学图书馆一号. .

摘要

甾醇载体蛋白-2(SCP2),也称为非特异性脂质转运蛋白,被认为在细胞内脂质转运和代谢中起着重要作用,它与脂质转运异常相关的疾病有关,如Zellweger综合征。Scp2基因编码58kDa固醇载体蛋白-x(SCPX)和15kDa原-Scp2蛋白,这两种蛋白的C末端均含有13kDa Scp2结构域。我们发现22-NBD-胆固醇(胆固醇的荧光类似物和首选SCP2配体)未定位于过氧化物酶体中。这就对以往关于SCPX和SCP2蛋白定位及其与细胞内胆固醇转运中过氧化物酶体和线粒体的关系的报道提出了质疑。小鼠睾丸和MA-10小鼠肿瘤Leydig细胞冷冻切片的免疫荧光染色显示,SCPX和SCP2存在于小鼠睾丸间质组织和MA-10细胞中。利用SCPX和SCP2的荧光融合蛋白,以及共焦活细胞成像,研究这些蛋白的亚细胞靶向性和假定的线粒体靶向序列的功能。结果表明,SCPX和SCP2通过C末端PTS1结构域靶向过氧化物酶体,但仅假定的N末端线粒体靶向序列不足以将SCPX与SCP2定位到线粒体。同源模型和分子对接研究表明,SCP2结构域结合胆固醇、,但缺乏结合和/或转运的特异性。这些发现进一步加深了我们对SCPX和SCP2在细胞内胆固醇转运中作用的理解,并对这些蛋白质在胆固醇转运中的作用提出了新的观点。

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数字

图1
图1。22-NBD-胆固醇与线粒体和过氧化物酶体的亚细胞定位。
(A) 用22-NBD-胆固醇染色的MA-10细胞的共焦激光显微镜图像(左),用丝裂原-DsRed-pero转染的细胞(中),以及22-NBD胆固醇和丝裂原DsRed-pero染色的重叠(右)。(B) 比较线粒体和过氧化物酶体(P)的荧光强度分布(红色)和22-NBD-胆固醇的荧光强度(绿色)。22-NBD-胆固醇(绿色)不与线粒体-DsRed-pero标记的过氧化物酶体定位,如MA-10细胞系中的小高强度点(红色)所示。22-NBD-胆固醇和过氧化物酶体的荧光强度不相关的区域用红星标记。(C) 22-NBD-胆固醇(绿色)与过氧化物酶体标记物DsRed-pero(红色)的显色。图像右侧的面板显示了具有重叠绿色和红色通道、仅绿色通道和仅红色通道(从上到下)的高亮区域。(D) 22 NBD胆固醇(绿色)与线粒体标记TSPO DsRed(红色)的共定位。图像右侧的面板显示了具有重叠绿色和红色通道、仅绿色通道和仅红色通道(从上到下)的高亮区域。
图2
图2。小鼠氨基酸预测序列的序列比对与分析Scp2系列人类的基因和亚型1和2Scp2系列基因。
序列比对表明Scp2系列基因编码SCPX和前SCP2蛋白,这两种蛋白都包含SCP2蛋白质或C末端结构域的序列。预测的线粒体靶向序列(有丝分裂或预序列)、过氧化物酶体靶向PTS1信号(PTS1[P])以及SCPX和SCP2中L/V-(X)1-5-Y-(X。红色向上箭头表示预测的SCP2序列的开始(GenBank ID:M62361用于小鼠,M55421用于人类),包含虚线方框中突出显示的拟议的mito-seq。
图3
图3。低转录表达Scp2系列MA-10细胞系中的基因。
(A) RNA-Seq数据表明Scp2系列Scpx公司转录物在MA-10细胞系中具有低表达。(B) 在控制基因座没有发现Scp2d1号机组基因,在RNA-seq中用作阴性对照。(C) 详细查看Scp2系列该基因显示该外显子的低表达水平,并说明B2衍生的启动子正好位于该基因之前。(D) 详细查看Scpx公司显示该外显子的低表达水平。
图4
图4。使用SCPX和SCP2特异性抗体对小鼠睾丸组织进行免疫荧光染色冰冻切片。
该分析旨在研究SCPX和SCP2在野生型小鼠睾丸中的内源性分布。(A–B)SCPX在小鼠睾丸的间质结缔组织中高度表达,该区域富含睾丸间质细胞,但在曲精管的生殖细胞中不表达。(C–D)SCP2与SCPX的分布相同,但表达水平较低。比例尺,50μm。
图5
图5。MA-10细胞内源性SCPX和SCP2蛋白的双重免疫荧光染色和免疫印迹分析。
(A) MA-10细胞(红色)、PMP70(过氧化物酶体标记蛋白,绿色)和VDAC1(线粒体标记蛋白,蓝色)内源性SCPX的双重免疫荧光染色。用DAPI(涂成绿色)对细胞核进行复染。比例尺,5μm。(B) MA-10细胞裂解物亚细胞组分中内源性SCPX的免疫印迹分析。COXIV用作线粒体标记蛋白,GAPDH用作全细胞裂解物负荷控制。M、 蛋白质标记,以kDa表示;全细胞裂解液总量;细胞、胞质部分;线粒体富集组分。(C) MA-10细胞(红色)、PMP70(涂成绿色)和VDAC1(涂成绿色)中内源性SCP2的双重免疫荧光染色。nNucleus用DAPI(涂成绿色)复染。比例尺,5μm。(D) MA-10细胞裂解物亚细胞组分中内源性SCP2的免疫印迹分析。VDAC1用作线粒体标记蛋白,GAPDH用作全细胞裂解物负荷控制。(E–F)对分离的MA-10亚细胞组分进行免疫印迹分析,确定线粒体基质蛋白HSP60(E)和过氧化物酶体基质蛋白过氧化氢酶(CAT)(F)。GAPDH用作加载控制。M、 蛋白质标记,以kDa表示;全细胞裂解物总量;细胞、细胞溶质组分;线粒体富集组分。
图6
图6。通过共焦激光显微镜对MA-10细胞中SCPX、SCP2和mito-DsRed-pero荧光融合蛋白的亚细胞定位进行活体细胞成像。
(A–H)ECFP–SCPX(A–D)和ECFP-SCP2(E–H)融合蛋白与mito-DsRed-pero共转染。过氧化物酶体和线粒体双重标记物。重叠表明ECFP–SCPX和ECFP-SCP2蛋白在过氧化物酶体中的定位(如白色箭头所示)。比例尺,5μm。(I–J)SCPX-ECFP(I)和SCP2-ECFP(J)蛋白与mito-DsRed-pero共转染。当过氧化物酶体靶向信号被阻断时,SCPX–ECFP和SCP2-ECFP在细胞质中广泛分布,SCP2–ECFPs也分布在细胞核中。比例尺,2μm。(K) 使用Hoechst 33342进行核酸染色,单独转染ECFP-N1载体。比例尺,5μm。(L–M)使用SCPX和SCP2特异性抗体对MA-10细胞中的内源性SCPX和SCP2进行免疫荧光染色,其中SCP2的核染色由白色箭头指示。(N) 丝裂原-DsRed-pero荧光融合蛋白与过氧化物酶体膜标记AmCyan-Pex11α的克隆化,除了线粒体定位外,还表明丝裂原DsRed-per的过氧化物酶定位。
图7
图7。SCPX和SCP2的前序列在线粒体靶向中没有作用。
(A) SCPX(SCPX-mito)和SCP2(SCP2-mito)的预测线粒体靶向序列与已知线粒体蛋白ACBD2(ACBD2-mito)的序列比对。(B-E)用ACBD2-mito-DsRed作为阳性对照(红色),对SCPX-mito-EGFP(B-C)和SCP2-mito-EGFP(D-E)荧光融合蛋白(绿色)的亚细胞定位进行活细胞成像。白色箭头,表示B和D中未染色的线粒体,C和E中分别用ACBD2-mito-DsRed染色的线粒体。比例尺,5μm。
图8
图8。小鼠SCP2结构域的同源性建模以及SCP2与其潜在配体胆固醇(Chol)和22-NBD-胆固醇(22-NBD-Chol)的分子对接研究。
(A–B)利用基于兔SCP2的X射线晶体学结构的同源模型进行分子对接研究(PBD:1C44)。(C–D)使用基于人类SCP2核磁共振结构的同源模型进行分子对接研究(PBD:1QND)。(E–F)使用基于人类过氧化物酶体多功能酶2型(MFE-2;PDB:1IKT)配体结合SCP2样结构域的X射线晶体学结构的同源模型进行分子对接研究。指示了胆固醇(Chol)、22NBD胆固醇(22NBD-Chol)、负责结合胆固醇的Trp70残基以及过氧化物酶体靶向PTS1信号(-AKL)。Autodock-Vina计算的对接亲和力(kcal/mol)在每个相应构象下显示。

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