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.2016年2月8日;213(2):189-207。
doi:10.1084/jem.20150894。 Epub 2016年1月11日。

IL-33增强退化视网膜的先天免疫反应

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IL-33增强退化视网膜的先天免疫反应

西红康等。 实验医学杂志. .

摘要

老年性黄斑变性(AMD)是老年人视力损害的主要原因,其特征是视网膜色素上皮(RPE)细胞和感光细胞的不可逆丢失,并可能与脉络膜新生血管形成有关。AMD病变中通常存在单核吞噬细胞,但直接髓细胞募集的过程尚不清楚。在此,我们确定IL-33是视网膜应激或损伤后炎症和感光细胞变性的关键调节因子。与无AMD的年龄匹配对照组相比,晚期AMD患者的IL-33(+)Müller细胞更丰富,IL-33细胞因子升高。在啮齿类动物中,视网膜应激导致生物活性IL-33的释放,进而增加激活的Müller细胞中炎性趋化因子和细胞因子的表达。ST2、IL-33受体α链的缺失或可溶性IL-33诱饵受体的处理显著减少了穆勒细胞炎症介质的释放,抑制了单核吞噬细胞在视网膜外的积聚,并保护了视网膜损伤后的光感受器杆和视锥。本研究证明IL-33在调节单核吞噬细胞向光感受器层的募集中起着核心作用,并将IL-33信号定位为黄斑变性疾病的潜在治疗靶点。

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数字

图1。
图1。
人类黄斑Müller细胞中IL-33的表达。(A) 人类视网膜的代表性立体图像,显示为RNA测序而解剖的黄斑区和周边视网膜区域。Bar,1 mm.(B)黄斑区IL-1α、IL-1β、IL-18和IL-33表达的RNA-序列分析,以每千碱基读数/百万总读数(RPKM)表示(n个=14眼)和周边视网膜(n个=22眼)。(C) 显示了供眼的代表性横截面以及用于定量分析的中央和外围区域。条形,5 mm。(D)IL-33定量+来自7只年龄在67-89岁之间(平均年龄84岁,男性5只,女性2只)的对照供眼中央和周边区域视网膜层的细胞。(E) 来自84岁男性供体的对照眼IL-33(绿色)、波形蛋白(红色)和GFAP(黄色)免疫组化三重染色的代表性图像。角括号,IL-33+GCL中的星形胶质细胞;箭头,IL-33+INL中的细胞;实心箭头,IL-33+RPE中的细胞;开放箭头,IL-33+脉络膜血管中的细胞。棒材,50µm。(F) IL-33的典型高倍图像+对照供体眼中央区域GCL、INL、RPE和脉络膜中的细胞。图示为IL-33+星形胶质细胞(GFAP+,尖括号)和IL-33+米勒细胞(波形蛋白+,箭头)。白介素-33+IL-33(红色)和PLVAP(绿色)联合染色显示脉络膜血管的内皮细胞(开放箭头)。闭合箭头,IL-33+RPE。DAPI(蓝色),核染色。棒材,10µm。GCL,神经节细胞层;INL,内核层;ONL,外核层。*,P<0.05;**,P<0.01;***,P<0.0001;ns,不显著;未配对双尾学生的t吨测验。
图2。
图2。
黄斑变性区域IL-33的表达增加。(A) 对一名无眼部疾病史的84岁男性和一名诊断为AMD的82岁女性捐赠者的对照捐赠者眼球中央视网膜中的IL-33(绿色)、Iba1(红色)和GFAP(黄色)进行免疫组织化学三重染色。IL-33的数量+米勒细胞和单核吞噬细胞(Iba1+细胞)在视网膜变性区域(AMD:病变)、同一供体无视网膜变性的邻近区域(AMD:无视网膜变性)和对照供体眼的中央视网膜(对照:中央)进行定量。箭头,IL-33+INL中的细胞;箭头,Iba1+视网膜下间隙的细胞。DAPI(蓝色),核染色。棒材,50µm。(B) 代表对照眼的中央视网膜以及AMD眼的病变和非病变区域中IL-33(绿色)、Iba1(红色)和GFAP(黄色)的免疫化学的高倍图像。亮场(BF)图像显示AMD病变部位RPE丢失。棒材,50µm。(C) 白介素-33+INL、脉络膜和Iba1中的细胞+对7名年龄在67–89岁(中位数为84岁)的对照供体的中央视网膜内的~500-µm切片以及7名年龄为82–92岁(中位为86岁)的AMD供体的眼部病变区和非病变区的视网膜细胞进行计数。(D) AMD患者和对照组患者玻璃体中IL-33水平。AMD患者玻璃体样本中IL-33的浓度(n个=6名,男1名,女5名,年龄68-91岁,中位年龄79岁),黄斑皱褶患者为对照组(n个=12,三男九女,年龄56-79岁,中位年龄72岁),黄斑裂孔(n个=21,男性5人,女性16人,年龄46-75岁,中位年龄65岁),P<0.01;***,P<0.001;****,P<0.0001;使用Tukey的后测试进行单因素方差分析。水平条代表平均值。
图3。
图3。
光毒性应激后,Müller细胞在体内外释放IL-33 C末端。(A) BALB/c小鼠和Sprague-Dawley(SD)大鼠视网膜IL-33(棕色)的免疫组织化学染色。大鼠视网膜与波形蛋白(红色)共染色。箭头,IL-33+米勒细胞。(插图)IL-33+波形蛋白+米勒细胞。白介素-33+沿~500-µm的切片对INL、RPE、GCL和中央和外周视网膜脉络膜中的细胞进行计数。棒材,10µm。ND,未检测到。(B) ELISA法检测BALB/c小鼠视网膜中IL-1家族基因(IL-1α、IL-1β、IL-33和IL-18)的表达。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个= 5). (C) rMC-1细胞核(核)和细胞质(细胞)部分IL-33表达的Western blotting。(D) ELISA和Western印迹分析在含有高葡萄糖(HG)和低葡萄糖(LG)的培养基中培养的rMC-1细胞分泌的IL-33。大鼠VT,大鼠玻璃体。通过膜联蛋白V的FACS分析和PI染色评估细胞活力。活细胞作为Annexin V进行门控圆周率所示数据为三口井的平均值±SEM。(E) CLE后大鼠玻璃体和视网膜IL-33 p19的表达和分泌。SD大鼠暴露于强光下10天。通过ELISA和Western blotting分析玻璃体和视网膜中IL-33的表达。用Image J软件定量视网膜中IL-33 p19与IL-33 p 30的比值。重组大鼠IL-33蛋白(rrIL-33;aa 109–264,~18 kD)用作检测抗体的阳性对照。ELISA中的每个数据点代表单个小鼠(n个=8/时间点)。(F) IL33号tm2/tm2具有完整IL-33核定位序列(NLS)和染色质结合域(CBD),但IL-33细胞因子域被dsRed取代的小鼠显示IL-33 N-term-dsRed定位于INL中Müller细胞的细胞核中。所示图像为IL33共焦图像的Z剖视图tm2/tm2视网膜扁平安装。箭头,IL-33+米勒细胞。棒材,5µm。IL33的流式细胞术分析tm2/tm2视网膜在Müller细胞(MC)中表达IL-33,但在杆细胞、神经节细胞(RGC)或小胶质细胞(MGL)中不表达。dsRED IL33的平均荧光强度(MFI)tm2/tm2用流式细胞术测定Müller细胞,以及CLE在d0和d7时的Müler细胞数。数据表示IL33中dsRed的MFItm2/tm2小鼠归一化为IL33+/+老鼠。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=6–7/组)。Rho,视紫红质;FSC,正向散射。***,P<0.001;****,P<0.0001;ns,不显著;双向方差分析与Bonferroni后验(D),单向方差分析与Dunnett后验(E),或非配对双尾学生t吨试验(F)。B-F中的数据代表了至少两个具有类似结果的实验。
图4。
图4。
光毒性应激后,ST2在活化的Müller细胞上表达,阻断ST2信号保护光感受器。(A) CLE后膜结合(ST2L)和可溶性(sST2)ST2的表达。用ST2L和sST2特异性探针对BALB/c小鼠暴露于光照不同时间后的视网膜RNA进行qPCR分析,并将其归一化为18s rRNA。未暴露小鼠(d0)的ST2表达设为1。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=5–6/时间点)。(B) ST2在活化的(GFAP)上的表达+波形蛋白+),休息(GFAP波形蛋白+)米勒细胞(MC)和小胶质细胞(CD45CD11b型+; MGL)曝光7天后。(C) ST2中基线(d0)和光照7天后视网膜厚度的OCT分析+/+和ST2−/−老鼠。通过将每只小鼠第0天的视网膜厚度减去第7天的视网膜厚,计算视网膜厚度增量(n个=10/基因型)。棒材,100µm。(D) ST2中的杆和锥+/+和ST2−/−用流式细胞仪对小鼠进行定量分析。FACS图显示了选通策略和百分比,以及绝对数(×105; 括号之间)ST2中的杆和锥+/+和ST2−/−老鼠。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=5–6/组)。Rho,视紫红质;汽车,锥形制动。(E) ST2 ONL厚度的形态分析+/+和ST2−/−小鼠在基线(d0)和暴露于光照14天后,绘制出与视神经头(ONH)距离的函数。所示数据为平均值±SEM(n个=5–7/组)。(F) ST2的ERG+/+和ST2−/−小鼠在基线(d0)和CLE后7天。(顶部)25 cd/s/m的代表性ERG记录2基线和第7天CLE后的光强度。所示数据为平均值±SEM(n个=10/基因型)。*,P<0.05;**,P<0.01;***,P<0.001;****,P<0.0001;ns,不显著;单因素方差分析与邓内特后测(A)、双因素方差分析(F)或非配对双尾学生后测t吨测试(C、D和E)。数据代表了至少两个具有类似结果的独立实验。
图5。
图5。
可溶性ST2保护光感受器免受光毒性应激。(A) 向BALB/c小鼠视网膜下注射表达可溶性ST2(AAV-sST2)的AAV(AAV2/5)或AAV空载体(AAV-EV)作为阴性对照。通过ELISA和Western blotting(10µg视网膜裂解物和3µg RPE/脉络膜裂解物)分析感染3周后视网膜和RPE/绒毛膜中sST2的表达。rsST2,重组可溶性ST2-His。(B) 小鼠视网膜下注射AAV-sST2或AAV-EV,并在感染后3周暴露于光照。在CLE前(d0)和7d后通过流式细胞术对杆状细胞和锥状细胞进行定量。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=10/组)。***,P<0.001;****,P<0.0001;未配对双尾学生的t吨测试。数据代表了两个具有类似结果的独立实验。
图6。
图6。
IL-33通过Müller细胞的自分泌激活诱导趋化因子和细胞因子的表达。(A) ST2视网膜CCL2、IL-6和IL-1β表达的qPCR分析+/+和ST2−/−CLE后小鼠(n个=5–6/组)。d0 ST2中的基因表达+/+小鼠设为1。ELISA法检测视网膜CCL2蛋白表达。(B) IL-33诱导rMC-1细胞分泌CCL2。流式细胞术检测rMC-1细胞表面ST2的表达。用ELISA法测定24h培养上清中CCL2的水平。所示数据为三口井的平均值±SEM。(C) IL-33 TRAP阻断rMC-1细胞CCL2的自分泌诱导。rMC-1细胞在含有HG的培养基中,在IL-33 TRAP或对照蛋白的存在下培养72小时。CCL2的表达和分泌分别通过qPCR和ELISA测定。所示数据为三次试验的平均值±SEM。(D) 视网膜CD45上CCR2的表达CD11b型+通过流式细胞术分析CLE之前(d0)和之后(d7)的髓细胞。Iba1的(E和F)免疫组织化学分析+ST2视网膜细胞+/+和ST2−/−老鼠。伊巴1+对CLE(d14)前后整个上下视网膜ONL、OS、GCL和OPL中的细胞(箭头)进行定量。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=10/基因型)。棒材,50µm。(G) ST2中单核细胞耗竭对感光细胞存活的影响+/+和ST2−/−暴露在光照下的小鼠。ST2型+/+和ST2−/−如图所示,从CLE前2天开始,每天给小鼠静脉注射氯膦酸脂质体(Clod)或对照脂质体(Ctrl)。CLE后第7天用流式细胞术对视网膜细胞进行定量。n个=4–6/组。*,P<0.05;**,P<0.01;***,P<0.001;****,P<0.0001;ns,不显著;单向(A、F和G)或双向(B和C)方差分析与Tukey的后验。数据代表了至少两个具有类似结果的独立实验。
图7。
图7。
缺乏N末端的IL-33诱导ST2依赖性细胞因子和趋化因子的表达和视网膜细胞的丢失。(A) IL33号tm1/tm1缺乏N末端核定位序列和染色质结合域(如图所示)但保留C末端细胞因子域的小鼠显示dsRed-IL-33 C末端在Müller细胞细胞质中的定位。所示图像为IL33共焦图像的Z剖视图tm1/tm1视网膜扁平安装。箭头,IL-33+米勒细胞。棒材,5µm。流式细胞术证实dsRed-IL-33 C-term在Müller细胞中的表达。IL33视网膜中的IL-33 mRNA+/+,IL33tm1(tm1)/+和IL33tm1/tm1通过qPCR对小鼠进行分析。ELISA法检测视网膜和血清中IL-33蛋白水平。(B) IL33中CCL2和IL-6表达的ST2依赖性增加以及锥体和RGC的丢失tm1/tm1老鼠。IL33的视网膜+/+,IL33tm1(tm1)/+和IL33tm1/tm1ST2培养的小鼠+/−或ST2−/−背景通过qPCR和流式细胞仪进行分析。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=3–7/基因型)。**,P<0.01;***,P<0.001;****,P<0.0001;ns,不显著;使用Tukey的后测试进行单因素方差分析。数据代表了两个具有类似结果的独立实验。
图8。
图8。
在RPE细胞丢失模型中,IL-33/ST2诱导的感光细胞丢失需要单核吞噬细胞。(A) 经生理盐水或NaIO处理的小鼠Müller细胞(箭头)中GFAP的表达(红色)棒材,50µm。(B) 生理盐水或NaIO处理小鼠视网膜中IL-33的处理Western blotting分析。用Image J软件定量视网膜中IL-33 p19与IL-33 p 30的比值。(C) CCL2在ST2视网膜中的表达+/+和ST2−/−用生理盐水或NaIO处理的小鼠用ELISA测定。n个=6-7/组。(D) NaIO视网膜中的巨噬细胞浸润-处理过的ST2+/+和ST2−/−老鼠。巨噬细胞(CD45你好CD11b型+)用流式细胞术对视网膜进行定量分析。与小胶质细胞(CD45)相比,视网膜巨噬细胞表达更高水平的CCR2CD11b型+).n个=6-7/组。MΦ,巨噬细胞;MGL,小胶质细胞。(E) Iba1的免疫组织化学分析+NaIO视网膜中的细胞-处理过的ST2+/+和ST2−/−老鼠。伊巴1+盐水或NaIO中整个上下视网膜OS和ONL中的细胞-对经处理的小鼠(d3)进行定量。n个=6/组。(F) NaIO中光感受器的保护-处理过的ST2−/−老鼠。(顶部)ST2视网膜厚度+/+和ST2−/−NaIO之前(d0)和之后的小鼠治疗(d7)通过OCT进行测量。显示了典型的OCT横截面图像。通过将单个小鼠的视网膜厚度d0减去d7,计算视网膜厚度δ。棒材,100µm。(底部)ST2的杆和锥+/+和ST2−/−用生理盐水或NaIO处理的小鼠流式细胞术测定d3和d7。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=6–8/组)。(G) ST2中单核细胞耗竭对感光细胞存活的影响+/+和ST2−/−用NaIO治疗的小鼠.ST2型+/+和ST2−/−从NaIO前1天开始,每天给小鼠静脉注射氯膦酸脂质体(Clod)或对照脂质体(Ctrl)处理如图所示。在生理盐水或NaIO作用3天后,通过流式细胞术对视网膜细胞进行定量治疗。每个数据点代表一个单独的鼠标(n个=5/组)。*,P<0.05;**,P<0.01;***,P<0.001;****,P<0.0001;ns,不显著;Tukey后验(C、D、E和G)或非配对双尾Student的单因素方差分析t吨测试(F)。数据代表了至少两个具有类似结果的独立实验。

中的注释

  • 泵送B细胞发育的中断。
    德西德里奥·S。 德西德里奥·S。 《实验医学杂志》2016年2月8日;213(2):140. doi:10.1084/jem.2132insight1。 《实验医学杂志》,2016。 PMID:26858362 免费PMC文章。 没有可用的摘要。
  • 在眼睛中释放IL-33。
    Gadani SP,Kipnis J。 Gadani SP等人。 《实验医学杂志》2016年2月8日;213(2):141. doi:10.1084/jem.2132insight2。 《实验医学杂志》,2016。 PMID:26858363 免费PMC文章。 没有可用的摘要。

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