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.2016年1月7日;61(1):27-38.
doi:10.1016/j.molcel.2015.10.039。 Epub 2015年12月6日。

在基因激活期间,EP400将H3.3沉积到启动子和增强子中

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在基因激活期间,EP400将H3.3沉积到启动子和增强子中

苏曼·普拉丹等。 摩尔细胞. .

摘要

后生动物中的基因激活伴随着组蛋白变体H2AZ和H3.3在启动子和增强子中的出现。然而,目前尚不清楚是什么蛋白质将H3.3沉积到染色质中,也不知道变异染色质是否在基因激活中发挥直接作用。这里我们显示,含有乙酰化H2AZ和H3.3的染色质在体外刺激转录。对固定化染色质模板上的Pol II预引发复合物的分析表明,E1A结合蛋白p400(EP400)优先与乙酰化双变异染色质结合,并需要乙酰化双变染色质进行转录刺激。EP400还刺激H2AZ/H3.3沉积到启动子和增强子中,并在介体复合物下游一步影响体内转录。EP400在体外以染色质和ATP刺激的方式分别与H2AZ和H3.3有效交换重组组蛋白H2A和H3.1。我们的数据显示,EP400将H3.3与H2AZ一起沉积到染色质中,并在PIC组装后参与基因调控。

关键词:EP400;H2AZ;H3.3;RNA聚合酶Ⅱ;组蛋白交换;预引发复合物(PIC)。

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数字

图1
图1。变异染色质以EP400依赖方式体外刺激转录
(A) 体外转录。如图所示,末端生物素化G5E4T使用标准、单或双变异八聚体组装成染色质,并固定在顺磁性小球上。如图所示,染色质由Gcn5和Esa1(HAT)乙酰化,并与HeLa核提取物+/−GAL4-VP16(活化剂)中的核苷酸(NTP)孵育。显示引物延伸凝胶的磷光体图像,并使用3个重复的平均/SD光谱单位进行绘图。通过Student t检验,双星号表示p值<0.01;n.s.不重要。(B) PIC的固定模板(IT)捕获。固定化的典型或双变异染色质如(A)减去NTP。纯化的PIC用指示蛋白的抗体进行免疫印迹。(C) 乙酰化典型或双变异染色质(B)免疫印迹中选择蛋白质的定量。(D) 使用pan-H3Ac抗体测量典型和双变异染色质的H3乙酰化水平:B(结合)和S(上清液/洗涤)组分。(E) 模拟(M)和EP400缺失(EP400Δ)提取物在9倍滴定范围内的EP400免疫印迹。(F) 对Mock和EP400Δ提取物中的选定PIC成分进行IT分析。(G) EP400制剂的银染凝胶。(H) Mock或EP400Δ提取物中乙酰化染色质的体外转录。如图(A)所示,3个重复,但+/-重组EP400如图所示。学生的t检验p值<0.01,用**表示。
图2
图2。EP400是基于模型细胞的报告系统中转录所必需的
(A) U2OS Tet-On VP16报告系统示意图。(B) 在指定时间点(Dox诱导后小时:h.p.i)对未经处理、模拟和EP400 siRNA-KD细胞(KD)中的F-Luc逆转录酶-PCR产物进行定量。(C)在指定时间点用VP16、Pol II、MED1(介体)、EP400和H3.3抗体对启动子进行ChIP-qPCR。条形图表示相对于输入DNA在时间点的富集。(D) 通过GAPDH水平标准化的模拟与siRNA KD的EP400免疫印迹。(E) 交联染色质部分或全细胞提取物的H2AZ、H3.3、H3和H4免疫印迹分析。数字表示模拟(M)中归一化为1的KD信号强度;显示了具有代表性的斑点。(F) Dox后Mock与EP400 KD细胞Pol II、Mediator和H3.3的ChIP。学生的t检验p值<0.01为**;不显著用n.s表示。
图3
图3。EP400和启动子变异染色质的全基因组分析
(A) U2OS启动子(3kb侧翼TSS)处EP400、Pol II、介体(MED26)、H3.3和H2AZ的热图。富集的P值由EP400绘制并排序。mRNA热图绘制了模拟的FPKM和对数的折叠变化(FC)2KD/Mock FPKM(绿色下调,红色上调,黑色不变)。Wilcoxon秩和差异的P值为9E-19。(B) 代表性基因组浏览器视图。(C) 通过基因表达聚类的(A)的元基因分析。彩色线条表示顶部(红色;C1)、中部(绿色;C2)和底部(紫色;C3)的每个蛋白质富集10%的表达基因;黑线(C4)是所有基因的平均值。(D) (A)中ChIP实验的EP400 KD富集倍数变化在EP400结合基因启动子上以显著峰值(TSS±3kb)绘制为log2(KD/Mock)。绿色表示指示蛋白质的结合减少。总H3(H3)ChIP数据添加到此图中,但未显示在对数的A(E)箱线图中2M和KD条件下H3.3、总H3、H2AZ、Pol II和MED26 ChIP信号的泊松p值。显示了Wilcoxon秩和检验的误差。
图4
图4。EP400对变异染色质基因表达的敲除分析
(A) EP400 KD与Mock中差异表达基因的文氏图。前9964个基因的RNA(按>1 FPKM值)分析,变化≥1.5倍。在EP400 KD条件下,4024个下调(绿色),2086个上调(红色)。(B) 用对数表示M和KD条件下FPKM下调(绿色)和上调(红色)基因的箱线图2比例尺。(C) 热图显示了FPKM在M和KD中下调(绿色)和上调(红色)的基因,并根据折叠变化进行了排序,以确保清晰。(D) 按类别对受影响基因进行基因本体分析。使用Benjamini校正对多假设检验的P值进行校正。
图5
图5。EP400敲除对增强剂占用率和基因表达的影响分析
(A) KD和/或Mock细胞中活性远端基因间U2OS增强子处H3K4me1、H3K18ac、EP400、H3.3、H2AZ和Pol II的热图(距离H3K4me1峰中心的−/+5 kb)。通过H3K4me1和H3K18ac标记对活性增强子进行评分,不包括TSS上游+3 kb或TTS下游,并通过在Mock和EP400 siRNA KD细胞中富集H3K4me1进行分类。(B) 假定增强器的浏览器轨迹。显示与活性增强子一致的标记的标记用轨迹下方的箭头表示,即Pol II、Mediator、EP400、H3.3、H2AZ、H3K18ac和H3K4me1的可识别峰值。(C) 如图3D所示,所有EP400结合增强子中H3.3、H2AZ和Pol II的富集倍数变化均为显著峰值,按H3K4me1丰度排序。H3.3和H2AZ变化的Wilcoxon秩和p值均<2E-308(饱和),Pol II为2E-148。(D) 对数的箱线图2具有p值的前10%增强子在M和KD条件下的H3.3、H2AZ和Pol II泊松p值。(E) 通过GREAT分析得出的最近邻效应。按照H3K4me1富集度排序,绘制了Top、Middle和Bottom 10%假定增强子的最近增强子近端基因的平均FPKM。
图6
图6。EP400体外组蛋白交换
300 ng固定化典型染色质与Apyrase处理的EP400和300 ng H3.3-H4四聚体或H2AZ-H2B二聚体+/-1 mM ATP孵育。捕获、清洗染色质并进行H2AZ(A)或H3(B)免疫印迹。FLAG-H3.3通过流动性与H3.1区分,并使用泛H3抗体检测;H2B作为对照。(C) 或者,150 ng固定化裸DNA或300 ng标准染色质与EP400和300 ng组蛋白变体八聚体孵育,并对H3.3进行FLAG免疫印迹。(A–C)的图表示≥3个独立实验。(D)和(E)的输入和条件如上所述。(D) I.显示H2AZ交换成珠状结合的H2A染色质;二、。显示了H2A沉积到H2AZ染色质中的反向反应。(E) ●●●●。I.显示H3.3交换为H3.1染色质;二、。显示H3.1沉积到H3.3染色质中的反向反应;三、 显示His-H3.3交换为Flag-H3.3染色质。

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