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.2015;6(6):490-506.
doi:10.1080/19491034.2015.1128610。

雷帕霉素降低成纤维细胞增殖而不引起静止,并诱导STAT5A/B介导的细胞因子产生

附属公司

雷帕霉素降低成纤维细胞增殖而不引起静止,并诱导STAT5A/B介导的细胞因子产生

佐伊·吉莱斯皮等。 . 2015.

摘要

雷帕霉素是雷帕霉素靶向信号级联的著名抑制剂;然而,该药物对正常原代细胞中全球基因组功能和组织的影响尚不清楚。为了探讨这种影响,我们用雷帕霉素治疗原代人包皮成纤维细胞,观察到细胞增殖减少而不会导致细胞死亡。雷帕霉素处理后,18号和10号染色体被重新定位到与血清还原诱导成纤维细胞进入静止状态相似的位置。尽管在定位上发生了类似的变化,但比较转录组分析表明,雷帕霉素处理的成纤维细胞和静止诱导的成纤维纤维细胞之间的基因表达模式存在显著差异。雷帕霉素治疗诱导细胞因子基因的上调,包括来自白细胞介素(IL)-6信号网络的基因,如IL-8和白血病抑制因子(LIF),而静止的成纤维细胞则表现出参与补体和凝血级联反应的基因的上调。此外,雷帕霉素处理显著上调的基因显示,转录因子信号转导子和转录激活子5A/B(STAT5A/B)的启动子占用率增加。总之,我们证明,用雷帕霉素治疗成纤维细胞可降低增殖,导致染色体区域重新定位,并诱导STAT5A/B介导的细胞因子富集基因表达变化。

关键词:RNA-seq;定子5a/B;原代成纤维细胞;静止;雷帕霉素。

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数字

图1。
图1。
雷帕霉素降低成纤维细胞增殖率。在正常培养条件下或在500 nM雷帕霉素存在下培养2DD成纤维细胞。监测细胞数量,并计算0小时、72小时、120小时、168小时和216小时(X轴)的群体倍增时间(Y轴)(红色条代表增殖性成纤维细胞,黑色条代表两组经雷帕霉素处理的成纤维细胞)。绘制了对照(红色)和雷帕霉素处理培养物(黑色)的种群加倍总数(Y轴)。数据表示单个生物复制,并重复2次(未显示数据),显示平行趋势。在雷帕霉素培养0h、72h、120h、168h和216h的细胞中免疫标记Ki67(C)。Ki67阳性(Ki67+)和Ki67阴性(Ki67-)细胞显示在面板左侧。Ki67为假绿色。染色质用H33342(蓝色)复染。显示了每个时间点计算的Ki67阳性(%Ki67+,Y轴)细胞百分比(X轴)。误差条表示单个计数的百分比单元格的SEM。比例尺=10μm。
图2。
图2。
雷帕霉素处理和静止诱导后的染色体重新定域。通过染色体涂片,在增殖(Pro,第一列)、静止(Qui,第二列)和雷帕霉素处理(Rap,第三列)2DD成纤维细胞中鉴定出18号染色体(顶行)、10号染色体(中行)和X号染色体(底行)。红色信号代表已识别的染色体;染色质用H33342(蓝色)反染。所有图像的比例尺=5μm。涂漆后,进行腐蚀分析,以确定染色体在核体积内的位置。核被分成5个同心的区域壳层,壳层1最外层,壳层5最内层。每个特定染色体的图形表示测量的%染色体信号除以每个外壳(Y轴)中的%H33342信号以归一化每个外壳(X轴)中DNA含量的比率。增殖定位由蓝色条表示,红色条表示静止,雷帕霉素处理为灰色。误差条=SEM。双尾Student不等方差检验用于证明染色体定位的显著差异。**表明增殖和静止测量值的p值均≤0.01。*表明只有雷帕霉素在染色体定位上有显著变化表明静态样品和雷帕霉素处理样品之间存在显著差异(p值≤0.01)。还进行了相关计算,以证明样本之间的染色体定位趋势是否相似或不同。18号染色体Pro与Qui R2=−0.83,专业vs.说唱R2=−0.99和Qui vs.Rap R2=0.87。染色体10 Pro vs.Qui R2=0.43,专业vs.说唱R2=0.64和Qui vs.Rap R2=0.95。X染色体:Pro vs.Qui R2=0.84,专业vs.说唱R2=0.98和Qui vs.Rap R2= 0.91.
图3。
图3。
散点图显示了静止诱导或雷帕霉素处理后的不同转录谱。比较静止和增殖成纤维细胞中转录物丰度的散点图。RNA-seq鉴定的增殖(X轴)和静止(Y轴)成纤维细胞的每个转录物的计数是对数基-2转换的,每个方块代表一个转录物。与增殖样本相比,静止成纤维细胞中的转录物增加或减少≥5倍,标记为红色(A)。灰色方块表示丰度不超过5倍的转录本。RNA-seq鉴定的增殖(X轴)和雷帕霉素处理(Y轴)成纤维细胞的每个转录物的计数是对数基-2转换的,每个方块代表一个转录物。灰色方块表示丰度不超过5倍的转录本。与增殖样本相比,雷帕霉素处理的成纤维细胞中的转录物增加或减少≥5倍,标记为蓝色(B)。面板A中的蓝色方块代表雷帕霉素处理的成纤维细胞中增加和减少≥5倍的转录物,面板B中的红色方块代表静止成纤维细胞增加和减少≤5倍的那些转录物。两个面板中的绿色方块表示在静止诱导和雷帕霉素治疗下,与增殖成纤维细胞相比,转录物增加或减少了≥5倍。红色或蓝色文本突出显示每个散点图中的特定基因。维恩图显示了与增殖成纤维细胞(C)相比,静止(红圈)或雷帕霉素处理(绿圈)成纤维细胞上调(左)或下调(右)的基因数量。重叠区域中的数字表明在静止和雷帕霉素处理的成纤维细胞中改变表达的基因数量。
图4。
图4。
随着雷帕霉素治疗的作用,IL-6、IL-8和LIF的蛋白水平增加。ELISA分析用于确认雷帕霉素诱导的转录谱增加来自白介素-6白介素-8克enes还导致分泌的细胞因子(A)水平增加。对来自增殖细胞(PRO)和5天雷帕霉素处理细胞(RAP)的三个生物复制培养基进行夹心ELISA,并测定IL-6和IL-8的浓度。显示了IL-6(*p=0.006)和IL-8(**p=0.038)的单尾Student t检验的p值。误差条显示了SEM。对来自增殖(PRO)和雷帕霉素处理(RAP)成纤维细胞的等量全细胞蛋白提取物进行LIF蛋白(20KDa)(B)的蛋白凝胶印迹。β-肌动蛋白印迹也被用作负荷控制。分子量(KDa)显示在印迹的右侧。
图5。
图5。
在对雷帕霉素反应上调的基因中增加STAT5A/(B)启动子占有率,但不增加NFACT2。使用CLOVER,雷帕霉素处理后增加表达的基因的启动子富集在STAT5A/B转录因子结合位点。此装订位置的位置重量矩阵/序列标志如(A)所示。左边的刻度表示每个核苷酸信息含量的对数基-2,底部的刻度表示这些核苷酸在结合位点中的位置。增殖(对照)和雷帕霉素处理(雷帕霉素)成纤维细胞(B)中磷酸化Y694-STAT5A/B(Y694P;红色)的免疫荧光。染色质用H33342(蓝色)复染。比例尺=10μm。使用ChIP分析比较增殖(Pro/蓝色)和雷帕霉素处理(Rap/橙色)样品(C)中STAT5A/B启动子的占有率。给出了分析的启动子(X轴)和报告的输入富集百分比(Y轴)。对于所有ChIP分析,误差条代表SEM,*表示单尾t检验的p值显著富集,≤0.05。ChIP分析STAT5A/B启动子在SOCS1系列增殖(Pro)和雷帕霉素处理(Rap)下的基因(D)。维恩图显示了雷帕霉素上调的基因数量(红色;421个基因),这些基因共享STAT5A/B(绿色;143个基因)和NFAT(紫色;345个基因)结合位点(E)。还对NFATC2启动子占用率进行了ChIP分析。比较增殖(Pro/蓝色)和雷帕霉素处理(Rap/橙色)样品。底部给出了分析的启动子和报告的输入富集百分比(F)。

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引用人

工具书类

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