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.2015年10月7日6:8457。
doi:10.1038/ncomms9457。

Merlin剪接变异体促进肝细胞癌转移

附属公司

Merlin剪接变异体促进肝细胞癌转移

扎伊·李洛等。 国家通讯社. .

摘要

由肿瘤抑制基因Nf2编码的Merlin在肿瘤发生和转移中起着关键作用。然而,对于梅林剪接形式的功能重要性知之甚少。在这项研究中,我们发现Merlin在人类肝细胞癌(HCC)中呈低水平,尤其是在转移性肿瘤中,它与不良预后相关。令人惊讶的是,缺少外显子2、3和4的Merlin剪接变异体((Δ2-4)Merlin)在肝癌和门静脉癌栓(PVTT)标本以及从PVTT衍生的CSQT2细胞系中扩增。我们的研究表明,(Δ2-4)Merlin干扰野生型Merlin结合β-catenin和ERM的能力,并且它在细胞质中而不是在细胞表面表达。此外,(Δ2-4)Merlin过表达增加了β-catenin和干细胞相关基因的表达水平,诱导上皮-间质转化表型,促进体外细胞迁移和体内肺转移的形成。我们的结果表明,(Δ2-4)Merlin变体破坏了Merlin的正常功能并促进肿瘤转移。

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数字

图1
图1。Merlin在HCC和PVTT中的低表达与恶性肿瘤预后相关。
()肝癌组织微阵列切片中Merlin表达降低,PVTT表达降低。Merlin在邻近肿瘤组织、无PVTT的肿瘤组织、有PVTT和PVTT组织的肿瘤组织中染色(放大倍数:×100;小方形放大倍数:x 400)。(b条)TMA中的梅林染色分数(0-5表示不同程度的IHC染色;5表示最大程度,0表示最小程度)。数据显示为平均值±标准差,148例HCC伴PVTT,37例HCC无PVTT和29例肿瘤邻近组织标本*<0.05; **<0.01,基于单因素方差分析。(c(c))来自八对具有PVTT的HCC肿瘤和使用Merlin抗体的肿瘤邻近组织的Merlin蛋白的蛋白质印迹。面板下方显示了相对于GADPH的波段量化。(d日)根据148例肝癌患者Merlin的表达情况,对其进行5年随访,得出无病生存率和总生存率**<0.01,基于学生的t吨-测试。
图2
图2。干扰Merlin的表达可促进肝癌细胞株的转移。
()用所示抗体对转染Merlin shRNAs的HCCLM3细胞的裂解液进行免疫印迹。(b条)生成shMerlin稳定的HCCLM3、Huh7和L02细胞系。(c(c))Transwell和(d日)侵袭实验检测肝癌细胞的迁移和侵袭能力。下方窗格中显示了各自的渗透单元编号。(比例尺,50μM)。结果显示为平均值±标准差。,n个=3. **<0.01***<0.001,基于学生的t吨-测试。(e(电子))显示了各组在13周时处死的BALB/C小鼠的代表性肺组织切片(H&E;放大倍数:×100,比例尺,300μM)。箭头表示肺转移瘤(下图)。每组每个肺的平均肺转移瘤数(n个=5)计算(上面板)。结果显示为平均值±s.d。,n个=5. **<0.01,基于学生的t吨-测试。((f))处理Huh7细胞在体外使用GTPγS或GDP激活Rho和Cdc42。细胞裂解物(501时为μl毫克毫升−1)Western blotting显示shMerlin细胞系和对照组中的活性Rho和Cdc42水平。
图3
图3。通过PCR和western blotting检测肝癌中Merlin的选择性剪接。
()的表达式编号2HCC、无PVTT的HCC和有PVTT组织的HCC中的基因。(b条)检测NF2型通过从肝癌、癌旁组织和PVTT组织设计的引物编号2外显子1和5。(c(c))的拼接模式编号2在正常肝脏中,HCCLM3、Huh-7、CSQT2和L02细胞。(d日)通过抗体(C-18和C-19)检测Merlin及其突变体在HCC细胞系(CSQT2、Huh-7、HCCLM3和HepG2细胞)和肝细胞L02细胞中的表达。(e(电子))检测重量梅林和Δ2–4梅林受不同抗体的影响。((f))用抗体C-18检测Merlin及其突变体在HCC、PVTT和肿瘤邻近组织中的表达。()检测Δ2–4梅林特异性抗体Δ2–4梅林(Merlin-N15)。(小时)检测Δ2–4Merlin N15抗体检测HCC、PVTT和肿瘤邻近组织中的Merlin。T: 肝癌;N: 非肿瘤邻近组织;P: PVTT;M/G:Merlin/GAPDH密度。
图4
图4。Δ2–4Merlin表达促进细胞迁移并诱导EMT。
()Δ2–4Merlin促进HCCLM3迁移(放大倍数:×200;比例尺,50微米)。计算迁移细胞的数量(平均值±s.d。,n个=3),并显示在面板右侧*<0.05; **<0.01,基于学生的t吨-测试。(b条)在Merlin基因敲除的Huh-7和HCCLM3细胞中检测到EMT相关基因。(c(c))在CSQT2细胞中检测到EMT相关基因。(d日)EMT相关基因在重量Mer公司(重量梅林)或Δ2–4表达Merlin的HCCLM3细胞。(e(电子))TGF-β治疗后梅林敲低的HCCLM3细胞中EMT相关基因表达的Western分析。((f))TGF-β诱导EMT相关基因的表达重量梅林和Δ2–4HCCLM3细胞中的梅林。()Western分析显示β-catenin和N-cadherin在重量梅林,Δ2–4梅林或重量梅林/Δ2–4Merlin用所示抗体瞬时转染HCCLM3细胞*<0.05; **<0.01,基于学生的t吨-测试。
图5
图5。梅林的沉默或Δ2–4梅林促进茎的活动。
()在无血清培养基的超低连接板中,shMerlin表达的Huh-7细胞比扰乱表达的Huh-7细胞形成更多更大的球体。测量了球体的数量和大小,并在每个面板下方显示。刻度条,100μm。(b条)在Huh7-scrambled和Huh7-shMerlin细胞中检测到EMT相关基因。(c(c))在shMerlin表达和打乱表达的CSQT2中测量球体的数量和大小。梅林基因的敲除增加了Huh-7细胞中球体的数量。刻度条,100μm。(d日)在CSQT2打乱细胞和CSQT2-shMer细胞中检测到EMT相关基因的表达。(e(电子))两者都有Δ2–4与对照组相比,Mer I型和II型促进HCCLM3细胞球形的形成重量Mer-expression细胞。刻度条,100μm。((f))在重量Mer表达和Δ2–4Mer-expressing HCCLM3细胞。上述分析在(f)分别重复三次。平均值表示为平均值±标准差。本图中的统计分析均基于学生的t吨-测试*<005; **<0.01; ***<0.001。()空载体中侧群细胞的比例,重量梅林,和Δ2–4表达Merlin的HCCLM3细胞。(小时)侧群细胞在打乱和shMerlin表达的CSQT2细胞中的比例。
图6
图6。Δ2–4Merlin失去了锚定膜和与ERM和β-catenin结合的功能。
()Myc-tagged公司重量Mer或Myc-taggedΔ2–4Mer在HCCLM3细胞中表达,并用抗Myc抗体进行免疫荧光染色。(比例尺,20微米)。(b条)表达shMerlin的HCCLM3细胞中β-catenin的免疫荧光分析。DAPI用于核染色。比例尺,20微米;小正方形放大倍数:×400)(c(c))共聚焦分析重量梅尔和Δ2-4HCCLM3细胞中的Mer。Myc-tagged公司重量Mer或myc-taggedΔ2-4Mer在HCCLM3细胞中表达。用β-catenin或Myc-tag抗体对细胞进行染色。细胞核用DAPI染色。(比例尺,20微米;小正方形放大倍数:×400)。(d日)免疫沉淀法重量Mer或Δ2–4与ERM和β-catenin合并。(e(电子))分馏重量梅尔和Δ2–4对表达Mer的HCCLM3细胞进行检测,并用免疫印迹法分析所示抗体的β-catenin表达。((f))Δ2-4Mer-或重量将表达Mer的HCCLM3细胞注射到BALB/C裸鼠的尾静脉。肺转移瘤用H&E染色;比例尺,100μm。计算肿瘤数量并显示在图表右侧(每组五只小鼠)*<0.05; **<0.01,基于学生的t吨-测试。

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