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.2015年5月21日;521(7552):316-21.
doi:10.1038/nature14413。 Epub 2015年5月6日。

另一种多能性状态赋予种间嵌合体能力

附属机构

另一种多能性状态赋予种间嵌合体能力

吴军等。 自然. .

摘要

多能性是指产生身体任何类型细胞的能力,是胚胎细胞的一种消逝属性。在胚胎发生的不同时间点可以捕获暂时性多能干细胞,并在培养中保持为胚胎干细胞或外胚层干细胞。由于个体发生在空间和时间上都是一个动态过程,所以这两种时间状态代表了生物体多能性的全谱似乎是违反直觉的。在此,我们表明,通过调节培养参数,可以从小鼠胚胎和灵长类多能干细胞(包括人类)中高效获得具有独特空间特征和独特分子和功能特征的干细胞类型,即区域选择性多能干细胞(rsPSCs)。培养和编辑人类rsPSC基因组的容易性为再生医学应用提供了优势。人类rsPSCs产生植入后种间嵌合体胚胎的独特能力可能有助于我们理解人类早期发育和进化。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有竞争性的经济利益。

数字

扩展数据图1
扩展数据图1。培养参数对表皮外植体的影响
从E5.75胚胎中分离的外胚层在以下培养基中被镀到有丝分裂失活的MEF上。,In-EpiSC衍生培养基中含有20%敲除血清替代物(KSR),20 ng ml−1Activin-A和12 ng ml−1用多能性标记OCT4和SSEA-1对第3天的生长进行染色。b,在N2B27培养基中添加指示的生长因子和小分子。4天后,对镀膜外胚层的外生长物进行OCT4和SSEA-1染色。c(c),SSEA-1的百分比+/华侨城4号+N2B27中第4天的细胞外胚层生长KSR+F/A公司和N2B27F/R1层培养条件。采用一种简单的随机方法随机选取显微镜视场,以计数SSEA-1的数量+/华侨城4号+单元格和总单元格数。PC,相位对比度。为了检查不同培养参数的影响,将所有分离的E5.75外胚层汇集在一起,并随机分配给每个条件。
扩展数据图2
扩展数据图2。rsEpiSC推导的机理研究
从E5.75胚胎中分离的外胚层在以下培养基中被镀到有丝分裂失活的MEF上。,在N2B27介质中,进行指定处理。NT,无治疗。4天后,用内胚层标记FOXA2、中胚层标记T、神经外胚层标记SOX2和多能性标记OCT4对镀膜外胚层的生长进行染色。b,在N2B27培养基中添加20%FBS(顶部)或20%敲除血清替代物(KSR;底部)。第4天,用中胚层标记物T和多能性标记物OCT4固定并染色。用DAPI对细胞核进行复染。比例尺,125µm。
扩展数据图3
扩展数据图3。rsEpiSCs的高效推导
用不同的传代方法衍生rsEpiSCs:胶原酶IV(顶部)和胰蛋白酶(底部)。所示为第4天外胚层的生长和第1代(P1)和第10代(P10)的细胞的相控图像。b使用三种不同小鼠菌株分离的E5.75外胚层比较了EpiSCs和rsEpiSC的衍生效率。c(c),利用从植入后胚胎不同发育阶段分离的外胚层衍生rsEpiSCs。左侧面板显示了E5.25、5.75、6.5、7.25和7.5阶段胚胎的典型形态。显示第2天和第4天外胚层的生长以及P1的菌落。d日、多能性表达的实时定量PCR分析(10月4日,Sox2系统纳克),天真(雷克斯1Klf2型)并涂上底漆(其他2Fgf5型)小鼠胚胎干细胞和rsEpiSCs中的PSC标记基因来源于不同的植入后发育阶段。误差条表示s.d(n个=3,生物样品)。e(电子),从E3.5植入前囊胚中衍生rsEpiSCs。用酸性蒂罗尔溶液去除透明带,然后用免疫外科手术去除滋养外胚层。分离的内细胞团用于衍生rsEpiSCs。箭头和箭头分别指向完整的滋养层和损坏的滋养层。(f),将分离的E6.5表皮母细胞分离为四块的示意图:前近端(AP)、前远端(AD)、后近端(PP)和后远端(PD)。,从E6.5外胚层的四个区域衍生rsEpiSCs。显示第2天和第4天外胚层的生长以及第5代(P5)的菌落。小时、多能性表达的实时定量PCR分析(10月4日,Sox2系统纳克),天真(雷克斯1Klf2型)并涂上底漆(其他2Fgf5型)rsEpiSCs中的PSC标记基因来源于E6.5外胚层的整体、AP、AD、PP和PD区域。误差线表示s.d(n个=3,生物样品)。,使用其他Wnt抑制剂衍生rsEpiSCs:XAV939(2.5µM)和IWP2(2.5μM)。第4天,显示第10代(P10)的外胚层生长和菌落。j个、多能性表达的实时定量PCR分析(10月4日,Sox2系统纳克),内胚层(Sox17系列Gsc公司),中胚层(脱中胚蛋白混合物1)和神经外胚层(Sox1系列第6页)使用不同Wnt抑制剂衍生的rsEpiSCs中的标记基因。误差线表示s.d(d、 h、j,n个=3,生物复制)。
扩展数据图4
扩展数据图4。rsEpiSCs的特性
定量PCR分析小鼠ESCs、EpiSCs和rsEpiSC中多能性、朴素和引物PSC标记的表达。误差条表示s.d(n个=3,生物复制);t吨-测试**P(P)< 0.01, *P(P)< 0.05.b用免疫荧光法分析小鼠rsEpiSCs中OCT4、NANOG、SOX2、DNMT3B和SSEA-1蛋白的表达。小鼠rsEpiSC也显示出弱碱性磷酸酶活性,并显示出阳性H3K27me3灶,证实了雌性rsEpiSC中的X染色体失活。c(c)Western blot分析小鼠ESCs、EpiSCs和四种不同rsEpiSCsOCT4、NANOG和SOX2蛋白水平。β-actin作为负荷对照。对于NANOG,显示了额外的长曝光图像(未加载ESC样本)。对于与关联的完整扫描b,请参阅补充信息。d日,DNA甲基化模式10月4日,Dppa5型斯特拉mESCs、EpiSC和rsEpiSC中的启动子。e(电子),典型的亮视野图像显示,克隆密度(每孔500个细胞)放置并培养5天后,通过免疫组织化学染色检测OCT4表达的菌落。以10µM添加Y27632。(f)小鼠rsEpiSCs的核型分析表明其二倍体染色体含量正常。、流式细胞术分析小鼠ESCs、EpiSCs和rsEpiSC中OCT4、SOX2和NANOG的表达。小时流式细胞术分析小鼠ESCs和rsEpiSCs的细胞周期特征。rsEpiSCs生成的畸胎瘤血红素和曙红染色图像显示了向三个胚层的谱系分化。j个通过使用FOXA2(内胚层)、TUJ1(神经外胚层)和ASMA(中胚层)抗体进行免疫荧光分析,rsEpiSCs产生的畸胎瘤显示出三线分化。k个,注射NOD/SCID雄性小鼠睾丸中指示数量的细胞产生的畸胎瘤。使用EpiSCs和三个不同的rsEpiSC系进行比较。一个月后,对小鼠实施安乐死。取出畸胎瘤并测量其大小和重量。(EpiSC,n个=1,生物复制,两个技术复制;rsEpiSC,n个=3,生物复制,每行两个技术复制;误差条,s.d.)流式细胞术分析由EpiSCs和三种不同的rsEpiSC株产生的畸胎瘤中TUJ1、ASMA和Ep-CAM的表达。、分离的非接触和非存活E7.25–7.5小鼠胚胎前后的亮场图像在体外胚胎培养。
扩展数据图5
扩展数据图5。rsEpiSCs自我更新的机制研究
,显示指示处理4天后rsEpiSC的集落形态的相位对比图像。左,仅N2B27介质;右侧,N2B27F/R1.b、多潜能表达的定量PCR分析(10月4日,索氏2型纳克),内胚层(Sox17系列Gsc公司),中胚层(脱中胚蛋白混合物1)和神经外胚层(Sox1系列第6页)标记物在培养基中指示处理4天后。误差线表示s.d(n个=3,生物复制)。c(c),不同信号通路如何参与促进或抑制rsEpiSCs自我更新的示意图。
扩展数据图6
扩展数据图6。全球转录组学和表观基因组分析
,来自ESCs、EpiSCs、rsEpiSC和体内分离E5.75和E6.5外胚层。b,EpiSCs和rsEpiSC的RNA-seq基因表达数据的双向散点图。黑线表示表达水平差异的四倍截止。皮尔逊相关系数(第页)样本之间的数据显示在右上角。c(c)前五个基因本体(GO)术语丰富了rsEpiSCs和EpiSC之间差异表达至少四倍(向上或向下)的一组基因。d日,rsEpiSCs(紫色)和EpiSC(绿色)中Polycomb靶基因的平均H3K27me3信号。e(电子),DNA甲基化和组蛋白甲基化(H3K4me3和H3K27me3)图围绕代表性基因类的转录起始位点发出信号。给出的例子包括多能基因(销售4,Klf4公司林28a),神经相关基因(Sox2系统,Gbx2Sox1系列)和细胞膜相关基因(第6类,氯化物3加拿大存托凭证1).(f),EpiSC和rsEpiSC的CG位点(mCG)水平的整体胞嘧啶甲基化(左上)。rsEpiSCs中发现的超-DMR和亚-DMR的数量(右上角)。启动子相关(转录起始位点±2.5 kb)、远端(距离转录起始位点>10 kb)和近端(转录起始点±2.5至10 kb的)rsEpiSCs高-DMR和低-DMR的数量(底部)。,基因体非CG DNA甲基化量与基因表达水平呈正相关。小时、与rsEpiSCs超-DMR相关的基因组区域的基因本体生物学过程和分子功能术语富集。,PC1–PC2平面,来自本研究样本(rsEpiSCs(用红线圈出)和EpiSC(用黄线圈出(体内从不同发育阶段(CAV,空洞;PS,流前;LMS,晚中条纹;LS,晚条纹;OB,无芽;EB,早芽;LB,晚芽)和EpiSCs(用粗蓝线圈出)分离出的外胚层。绿色箭头穿过体内样本描绘了一个不断发展的“发展轴”。j个使用所有注释探针的数据,对rsEpiSCs(红色)、EpiSC(均来自本研究(黄色)和参考(蓝色))和CAV、PS、LMS、LS、OB、EB和LB阶段的外胚层(绿色)进行分层聚类。k个、rsEpiSCs与体内前肠系膜(AME)、前界内胚层(ADE)、前原始条纹(APrS)、全原始条纹(PrS)和后原始条纹(PPrS)基因特征的晚期外胚层(参考文献6)。,Blimp1–YFP mESCs和rsEpiSCs的原始生殖细胞诱导。左侧,诱导前,mESCs和rsEpiSCs均为YFP阴性;mESCs诱导成功,如细胞聚集物中的YFP阳性信号所示,但rsEpiSCs诱导无效。没错,对Blimp1–YFP mESCs和rsEpiSCs之间的PGC诱导效率进行了比较。误差条表示s.d(n个=3,独立实验);t吨-测试**P(P)< 0.01, *P(P)< 0.05. CAV,腔;PS,流前;ES,早期连胜;MS,中等条纹;LMS,中后期连续;LS,晚连胜;OB/EB,无芽/早芽;LB,晚芽。
扩展数据图7
扩展数据图7。EpiSC和rsEpiSC的代谢谱
,基础呼吸,b、 c(c),最大呼吸(b)和ATP生产(c(c))通过计算EpiSC和rsEpiSC中每个阶段的平均耗氧量(OCR)来确定。d、 e、f,糖酵解(d日),糖酵解能力(e(电子))和储备糖酵解((f))通过计算EpiSC和rsEpiSC中每个阶段的平均细胞外酸化率(ECAR)来确定。(图形板棱镜v5)。,显示EpiSC和rsEpiSC对寡霉素、FCCP和鱼藤酮/抗霉素反应的耗氧率的代表图(n个= 4).小时,从RNA-seq数据集中选择的线粒体复合物COX和参与糖酵解和三羧酸循环的酶的差异表达基因的热图,P(P)< 0.05.i、 j个,亲水性(代谢组学)和疏水性(脂质组学)代谢物的火山图显示EpiSCs和rsEpiSC之间代谢物水平的广泛变化。误差线表示s.d。;t吨-测试**P(P)< 0.01, *P(P)< 0.05 (,n个=6,技术复制)。
扩展数据图8
扩展数据图8。基于F/R1的文化支持人类ESC的自我更新以及iPSC的生成
多能性标记SOX2、NANOG、TRA-1-60、TRA-1-80和SSEA-4在人类H1 rsESCs中的表达。b,典型的亮视野图像,显示克隆密度(每孔1000个细胞)电镀并培养6天后,碱性磷酸酶(AP)染色显示的菌落。以10µM添加Y27632。c(c)多能性标记基因表达的实时定量PCR分析(华侨城4号,索2,NANOG公司第28行)和谱系标记基因(T型,NKX1-2型WNT3号机组)在H1胚胎干细胞、人包皮素-成纤维细胞衍生的多能干细胞、H1 rsESC和人包皮蛋白-成纤维基因衍生的rs-iPSC中。误差条表示s.d(n个=3,生物复制)。d日人H1 rsESCs产生的畸胎瘤的血红素和曙红染色图像显示了三个胚层的谱系分化。e(电子),人类H9 rsESCs的核型分析表明二倍体染色体含量正常。(f),典型的亮场图像显示了在基于F/A-的传统人类ESC培养和基于F/R1的培养条件下假定iPSC菌落的形态(顶部)。核感染后第25天的碱性磷酸酶染色表明F/R1培养基中的菌落较大(底部)。,在基于F/A-的传统人类ESC培养条件和基于F/R1的培养条件下产生iPSC的效率。误差条表示s.d(n个=3,独立实验)。小时,在基于F/A和基于F/R1的培养条件下产生的人类iPSC样菌落的质量。使用右图所示的标准分别计算部分和全部碱性磷酸酶阳性iPSC-like菌落。误差条表示s.d(n个=3,独立实验)。,显示人包皮成纤维细胞衍生的rs iPSC的形态学的相位对比图像。j个,H1 ESCs和H1 rsESCs中Polycomb靶基因转录起始位点(TSS)附近H3K4me3和H3K27me3 ChIP-Seq信号的图形表示。k个,H1 rsESCs(紫色)和H1 ESCs(绿色)中Polycomb靶基因的平均H3K27me3信号。,通过流式细胞术分析H1 ESCs和H1 rsESCs的细胞周期谱。流式细胞术分析H1 ESCs和H1 rsESCs中OCT4、SOX2、NANOG和TRA-1-60蛋白的表达。
扩展数据图9
扩展数据图9。人类rsESCs中的基因组编辑
,CRISPR/Cas9对人类ESCs和rsESCs中使用的靶向突变方法的示意图。b,目标突变效率LRRK2型人类ESCs(用Y27632,10µM处理)和rsESCs中的基因座。c(c),CRISPR/Cas9或TALEN介导的基因校正方法在人类ESCs和含有突变GFP基因的rsESCs中的示意图。d日CRISPR/Cas9或TALEN对人类ESCs(用Y27632,10µM处理)和rsESCs的GFP校正效率。这个axis表示基因校正效率,计算为每5×10个GFP阳性细胞5细胞。误差线表示s.d(n个=3,独立实验)。
扩展数据图10
扩展数据图10。非人灵长类rsPSC
、恒河猴rsESCs(ORMES22和ORMES23)、恒河猕猴rsIPCs和黑猩猩rsiPCs群体形态的相控图像。b、ORMES23 rsESCs中NANOG、SOX2、DNMT3b、TRA-1-60和TRA-1-80蛋白表达的免疫荧光图像。ORMES23 rsESCs还进行了碱性磷酸酶(AP)活性和OCT4免疫组织化学染色(右上)。c(c)黑猩猩rsiPSCs产生的畸胎瘤的血红素和曙红染色图像显示了向三个胚层的谱系分化。d日,GFP标记的ORMES23 rsESCs外胚层嫁接实验示意图(详见附图1)。A、 前部;P、 后部;D、 远端的。e(电子),移植胚胎的荧光图像在体外文化。将GFP标记的ORMES23 rsESCs移植到分离的非接触性和非存活的E7.5小鼠胚胎外胚层的后部、远端和前部,并培养在体外固定36h后,倒置荧光显微镜观察。箭头表示无法分配单元束。虚线表示移植胚胎后部分散的细胞。蓝色,DAPI。插图显示GFP标记细胞的高分辨率图像。(f),Top,GFP标记的ORMES23 rsESCs移植到E7.5小鼠外胚层不同区域后细胞扩散程度的量化。底部,移植的GFP标记的ORMES23 rsESCs在小鼠E7.5外胚层中的掺入效率。误差条表示s.d(n个,如图所示,独立实验);t吨-测试*P(P)< 0.05.
图1
图1。培养参数对表皮外植体的影响
,新鲜收集的E5.75小鼠胚胎(顶部)和分离的E5.75成表细胞(底部)。b,第4天外胚层生长的免疫染色。KSR,KnockOut血清置换。绿色,OCT4;红色,SSEA-1;蓝色,DAPI。插图,高清晰度图像。c(c),在EpiSC和rsEpiSC衍生培养基中,第1天和第4天外胚层突起的形态。底部,油道10处的EpiSC和rsEpiSC(P10)。箭头,外胚层边缘突起。d日,图解模型总结了各种培养参数对外胚层外植体的影响。
图2
图2。rsEpiSCs的特性
,西斯特雌性小鼠ESCs、EpiSCs和rsEpiSC中的RNA FISH信号。点圆圈:黄色,mESCs;白色,MEF。b、mESCs、EpiSCs和rsEpiSC的克隆效率。c(c)、EpiSC和rsEpiSCs的生长曲线。d日,外胚层嫁接实验示意图(详见附图1)。KO,Kusabira-Orange公司。A、 前部;P、 后部;D、 远端的。e(电子),代表性图像显示移植Kusabira-Orange-labellated EpiSCs和rsEpiSC到不同外胚层区域的结果。虚线,分散的单元格。箭头,细胞团。(f),EpiSC和rsEpiSCs移植到不同外胚层区域的不同结果。,后部移植rsEpiSCs的全套免疫染色。蓝色,DAPI。移植细胞的箭头、SOX2或FOXA2-阳性衍生物。顶部-中间,移植细胞的T(短切)阳性衍生物。插图,高清晰度图像。误差线,s.d。;t吨-测试**P(P)<0.01(b,n个= 6;c(c),n个= 2;(f),图中显示n,独立实验)
图3
图3。全球转录组学和表观基因组分析
,从ESCs、EpiSCs、rsEpiSC和分离的外胚层生成的微阵列数据的PCA。bEpiSC和rsEpiSC中Polycomb靶基因的H3K4me3和H3K27me3 ChIP-seq信号。c(c),与与rsEpiSCs超-DMR重叠的启动子相关的非甲基化区域的聚集。绘制了缩放的非甲基化区域和围绕非甲基化区的±10 kb区域的CG甲基化(mCG)、H3K4me3和H3K27me3水平。散点图中的虚线表示rsEpiSC与EpiSC的RNA水平存在两倍的上(蓝色)或下(红色)差异。a、 c(c),n个= 2;b,n个=1,生物复制。
图4
图4。体内rsEpiSCs的相关性
转录组rsEpiSCs与外胚层的后近端区域相比,与其他区域的相关性更好。bEMT标记蛋白表达,ACTB作为负荷控制。c(c),克隆衍生实验的工作流程示意图。d日,代表性图像显示了对第4天的E6.5和E7.5小鼠胚胎进行胰蛋白酶处理后的OCT4阳性集落外胚(左)和分离的外胚(右)。e(电子),rsEpiSCs克隆衍生的每个胚胎OCT4阳性克隆数。误差条表示s.d。t吨-测试**P(P)< 0.01. (E6.5,n个= 6; E7.5、,n个=8,独立实验)。对于与关联的完整扫描b,请参阅补充信息。
图5
图5。灵长类区域特定PSC
人和猕猴rsESCs的形态和OCT4免疫染色。b,人和猕猴ESCs与rsESCs的克隆效率。c(c),灵长类PSC和rsPSC转录体的无偏跨物种层次聚类。d日,代表性图像显示了GFP标记的H9 ESCs和H9 rsESCs移植到非接触和非存活的E7.5小鼠胚胎不同外胚层区域的结果。箭头,细胞团块。虚线,分散的单元格。蓝色,DAPI。e(电子),将H9和H9 rsESCs移植到非完整和不可存活的E7.5小鼠胚胎的不同小鼠外胚层区域的结果。(f)、后颗粒GFP标记的H9 ESCs和H9 rsESCs的免疫染色。蓝色,DAPI。插图,高倍视图。箭头表示移植细胞的T(短梗)-、SOX2-、FOXA2-或OCT4-阳性衍生物。,从早期胚胎中捕获的不同PSC及其重新进入胚胎发生的特定时间和区域的示意图。误差线,s.d。;t吨-测试**P(P)< 0.01, *P(P)< 0.05. (b,n个= 6;e(电子),n个如图所示;独立实验)。

中的注释

  • 干细胞:建立平衡。
    Loh KM、Lim B。 Loh KM等人。 自然。2015年5月21日;521(7552):299-300. doi:10.1038/521299a。 自然。2015 采购管理信息:25993958 没有可用的摘要。
  • rsPSCs:一种新型多能干细胞。
    Weissbein U,Benvenisty N。 Weissbein U等人。 Cell Res.2015年8月;25(8):889-90. doi:10.1038/cr.2015.73。Epub 2015年6月16日。 2015年细胞研究。 采购管理信息:26077383 免费PMC文章。

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出版物类型

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