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.2015年6月;7(6):802-18.
doi:10.15252/emmm.2014318。

在缺乏TP53INP1的情况下,有丝分裂缺陷会促进氧化还原驱动的代谢综合征

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在缺乏TP53INP1的情况下,线粒体自噬缺陷促进氧化还原驱动的代谢综合征

马里恩·塞利尔等。 EMBO分子医学. 2015年6月.

摘要

代谢综合征包括代谢异常,包括肥胖和2型糖尿病(T2D)。T2D的特征是由环境和遗传因素引起的胰岛素抵抗。2010年发表的一项全基因组关联研究(GWAS)将TP53INP1确定为一个新的T2D易感位点,但尚未确定其病理机制。在这项研究中,我们发现缺乏TP53INP1的小鼠容易发生氧化还原驱动的肥胖和胰岛素抵抗。此外,我们证明TP53INP1缺陷细胞中活性氧物种的增加是由于与PINK/PARKIN有丝分裂受损相关的缺陷线粒体的积累所致。这种慢性氧化应激也有利于脂滴的积聚。综上所述,我们的数据提供了证据,证明GWAS鉴定的TP53INP1基因通过线粒体内稳态调节预防氧化应激的机制来预防代谢综合征。总之,本研究强调TP53INP1是氧化还原驱动代谢综合征的分子调节器,并为代谢综合征临床研究提供了一种新的临床前小鼠模型。

关键词:自噬;糖尿病;线粒体;肥胖;氧化应激。

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图1
图1
TP53INP1缺陷小鼠由于其慢性氧化应激而对HFD诱导的肥胖高度敏感。TP53INP1-KO(−/−)和WT(+/+)雄性小鼠接受高脂肪饮食(HFD,60%脂肪)或对照饮食(CTRL)16周。小鼠饮用自来水或补充NAC的自来水(10mg/ml或1%)。
  1. 曲线显示每周记录的小鼠体重。CTRL键:P(P)(−/−与+/+;t吨=8瓦)=0.047;P(P)(−/−与+/+;t吨=9瓦)=0.023。HFD(高频驱动):P(P)(−/−与+/+;t吨=7瓦)=0.039;P(P)(−/−与+/+;t吨=8瓦)=0.029;P(P)(−/−与+/+;t吨=9瓦)=0.021;P(P)(−/−与+/+;t吨=10w)=0.014;P(P)(−/−与+/+;t吨=11瓦)=0.0046;P(P)(−/−与+/+;t吨=12瓦)=0.0028;P(P)(−/−与+/+;t吨=13w)=0.0025;P(P)(−/−与+/+;t吨=14瓦)=0.00051;P(P)(−/−与+/+;t吨=15瓦)=0.00027;P(P)(−/−与+/+;t吨=16瓦)=0.00013。

  2. 方案结束时,处死小鼠;取肝、附睾和肾脂肪块并称重。直方图显示器官重量。肝脏:P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.014;P(P)(HFD与CTRL;+/+)=0.00063;P(P)(HFD与CTRL;−/−)=0.0010;P(P)(HFD与CTRL;+/+NAC)=0.034;P(P)(HFD与CTRL;−/−NAC)=0.027;P(P)(NAC与无NAC相比;−/−HFD)=0.014。附睾脂肪量:P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.011;P(P)(HFD与CTRL;+/+)=0.028;P(P)(HFD与CTRL;−/−)=0.000017;P(P)(HFD与CTRL;+/+NAC)=0.019;P(P)(HFD与CTRL;−/−NAC)=0.0054;P(P)(NAC与无NAC;+/+CTRL)=0.037;P(P)(NAC与无NAC;−/−HFD)=0.0025。肾脂肪团:P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.0041;P(P)(HFD与CTRL;+/+)=0.028;P(P)(HFD与CTRL;−/−)=0.000013;P(P)(HFD与CTRL;+/+NAC)=0.019;P(P)(HFD与CTRL;−/−NAC)=0.0078;P(P)(NAC与无NAC;−/−HFD)=0.0047。

数据信息:结果表示为平均值±SEM,代表两个独立实验。*−/−与+/+相对;£HFD与CTRL;§NAC与无NAC的比较;1个字符:P(P) < 0.05; 2个字符:P(P) < 0.005; 4个字符:P(P) < 0.00005.
图2
图2
TP53INP1缺乏小鼠出现中度氧化还原相关胰岛素抵抗综合征,该综合征因HFD方案而加重。16周内,雄性TP53INP2 KO和WT小鼠被喂食高脂肪饮食(HFD,60%脂肪)或对照饮食(CTRL)。小鼠饮用自来水或添加NAC的自来水(1%)。
  1. A、 B直方图显示方案开始(第0周)和/或结束(第16周)时禁食6小时的小鼠的血糖(A)或血浆胰岛素(B)水平。第16周空腹血糖:P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.0052;P(P)(CTRL与HFD;−/−)=0.000081;P(P)(NAC与无NAC;−/−HFD)=0.0019;P(P)(w16与w0;+/+CTRL)=0.012;P(P)(w16相对于w0;−/−CTRL)=0.050;P(P)(w16相对于w0;−/−HFD)=0.0023。空腹血浆胰岛素:P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.043;P(P)(CTRL与HFD;+/+)=0.028;P(P)(CTRL与HFD;−/−)=0.013;P(P)(CTRL与HFD;+/+NAC)=0.011;P(P)(CTRL与HFD;−/−NAC)=0.0015;P(P)(NAC与无NAC;−/−HFD)=0.038。

  2. 在每公斤体重注射1克葡萄糖后120分钟内,对禁食6小时的小鼠进行葡萄糖耐量试验(GTT)。左侧曲线显示注射葡萄糖后监测的血糖水平。右侧的直方图显示曲线下面积(AUC)。空腹血糖:P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=0分钟)=0.045;P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=15分钟)=0.013;P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=30分钟)=0.016;P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=60分钟)=0.030;P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=90分钟)=0.017;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=60分钟)=0.041;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=90分钟)=0.043;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=120分钟)=0.034;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=15分钟)=0.0076;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=30分钟)=0.0067;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=60分钟)=0.00058;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=90分钟)=0.0010;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=120分钟)=0.023;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=60分钟)=0.032。资产负债表:P(P)(−/−与+/+;CTRL)=0.023;P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.035;P(P)(HFD与CTRL;+/+)=0.042。

  3. 在每公斤体重注射0.70 U胰岛素后150分钟内,对禁食6小时的小鼠进行D胰岛素耐受性试验(ITT)。左侧曲线显示注射胰岛素后监测的血糖水平。右侧的直方图显示了曲线上方的区域(AAC)。空腹血糖:P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=15分钟=0.012;P(P)(−/−与+/+;CTRL;t吨=30分钟)=0.022;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=0分钟)=0.027;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=15分钟)=0.011;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=30分钟)=0.0037;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=60分钟)=0.0028;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=90分钟)=0.041;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=120分钟)=0.0032;P(P)(−/−与+/+;HFD;t吨=150分钟)=0.0025;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=15分钟)=0.0082;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=30分钟)=0.033;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=90分钟)=0.047;P(P)(HFD与CTRL;+/+;t吨=150分钟)=0.028;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=15分钟)=0.026;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=30分钟)=0.0095;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=60分钟)=0.0031;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=90分钟)=0.033;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=120分钟)=0.0068;P(P)(HFD与CTRL;−/−;t吨=150分钟)=0.0082。澳大利亚咨询委员会:P(P)(−/−与+/+;HFD)=0.030;P(P)(HFD与CTRL;−/−)=0.037。

数据信息:结果表示为平均值±SEM,代表两个独立实验。*TP53INP1−/−与TP53INP2+/+;£HFD与CTRL;$第16周与第0周;§NAC与无NAC的比较;1个字符:P(P) < 0.05; 2个字符:P(P) < 0.005; 4个字符:P(P) < 0.00005.
图3
图3
编码TP53INP1的基因在胰腺内分泌细胞中表达
  1. A、 B(A,B)小鼠胰腺切片(A)和单个人胰岛β细胞(B)中TP53INP1(红色)和胰岛素(绿色)的免疫荧光染色。比例尺代表50μm(A)和10μm(B)。

  2. C-E定量PCRTp53输入1喂食正常饮食(5%脂肪;ND)或高脂肪饮食(45%脂肪;HFD)的大鼠(C)和C57BL/6J小鼠组织和细胞中的mRNA水平(D,E)。结果表示为平均值±SEM,代表两个独立实验。n个大鼠肝脏、胰岛和小鼠脾脏=2;n个=INS-1E电池为4;n个=5(对于小鼠外分泌胰腺);n个对于Min6细胞以及ND和HFD胰岛,=6;n个对于小鼠胰岛为11*P(P)相对于ND,HFD=0.035。

图4
图4
由于线粒体数量增加,TP53INP1的缺失增加了线粒体(mt)ROS水平和质量。TP53INP2的永久性MEF(MEFi)缺陷(−/−)或非永久性MEFs(+/+)在4小时内未经治疗(NT)或用3-甲基腺嘌呤(3-MA,5 mM)治疗。
  1. 直方图显示通过流式细胞术在MitoSox染色后测量的mt ROS水平。P(P)(−/−与+/+;NT)=0.019;P(P)(−/−与+/+;3-MA)=0.025;P(P)(3-MA与NT;+/+)=0.031。

  2. 直方图显示使用MitoTracker染色通过流式细胞术评估KO或WT MEFi中的mt质量。P(P)(−/−与+/+;NT)=0.012;P(P)(3-MA与NT;+/+)=0.036。

  3. 直方图显示MitoSox荧光与MitoTracker荧光标准化。P(P)(−/−与+/+;NT)=0.041;P(P)(−/−与+/+;3-MA)=0.030;P(P)(3-MA与NT;+/+)=0.045。

  4. 在正常介质中恢复4小时后,h2O(运行)2通过透射电子显微镜(TEM)观察到TP53INP1(1 h,100μM)或非处理(NT)MEFi缺陷(−/−)或非(+/+)。N=核;白色箭头=线粒体空泡。比例尺代表0.5μm。

  5. 定量线粒体的平均大小(面积)、线粒体的数量和由细胞质表面积归一化的线粒体空泡。尺寸:P(P)(−/−与+/+;H2O(运行)2) = 0.000027;P(P)(H)2O(运行)2与NT;+/+) = 0.0070;P(P)(H)2O(运行)2与NT相比;−/−) = 0.013. 核分裂数目:P(P)(−/−与+/+;NT)=0.035;P(P)(−/−与+/+;H2O(运行)2) = 0.016. 液泡数量:P(P)(−/−与+/+;NT)=0.047。

数据信息:结果表示为平均值±SEM,代表三个独立实验。在(A-C)中:*P(P)TP53INP1−/−与TP53INP2+/+之间<0.05;#P(P)3-MA与NT相比<0.05。In(E):*TP53INP1−/−与TP53INP1+/+相比;#H(H)2O(运行)2与NT.1字符相比:P(P)<0.05;2个字符:P(P) < 0.01; 3个字符:P(P) < 0.0005.
图5
图5
TP53INP1缺陷与PINK/PARKIN有丝分裂受损有关
  1. 在正常培养基中恢复4小时后2O(运行)2-通过免疫印迹分析PGC-1α、PINK1、PARKIN、BNIP3、BNIP3L/NIX、VDAC1和β-微管蛋白,分析TP53INP1在(1 h,100μM)、NAC-(24 h,10 mM)或非处理(NT)MEFi缺陷(−/−)或非治疗(+/+)的情况。

  2. HEK293T细胞与编码TP53INP1α-NTAP或TP53INP2β-NTAP的质粒共转染。用含有链霉亲和素的树脂(P)沉淀TP53INP1α或β-NTAP,通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)和用抗TP53INP(TP53INPI沉淀控制)、抗PINK1、抗PARKIN、抗BNIP3或抗BNIP3L/NIX抗体开发的Western blots进行解析。TCL上的Western blot(右侧)用作转染对照。

  3. 处死三个月大的TP53INP1缺陷和WT雄性小鼠,并收获其肝脏。从总肝裂解物(TCL)中纯化线粒体裂解物(Mito),并通过免疫印迹分析TP53INP1、PINK1、PARKIN、VDAC1和β-微管蛋白。

数据信息:结果代表三个独立实验。可在线获取此图的源数据。
图6
图6
TP53INP1缺陷MEFi包含功能失调的线粒体池
  1. 使用葡萄糖(A)、脂质相关底物(C)或复合IV底物(D),对渗透性MEFi TP53INP1缺陷(−/−,黑条)或非(+/+,白条)的MEFi进行A–D高分辨率呼吸测定。在完整的MEFi(B)上也进行了高分辨率呼吸测定。有关不同呼吸状态的详细信息(常规、3、泄漏和ETS容量),请参阅材料和方法部分。结果表示为平均值±SEM,代表三个独立实验。在(A)中:P(P)(−/−与+/+;状态3)=0.0079;P(P)(−/−与+/+;ETS)=0.0079;n个=每组5人。在(B)中:P(P)(−/−与+/+;常规)=0.0159;P(P)(−/−与+/+;泄漏)=0.0159;P(P)(−/−与+/+;ETS)=0.0159;n个=每组5人。在(C)中:P(P)(−/−对+/+;状态3)=0.029;P(P)(−/−对+/+;ETS)=0.0079;n个每组5个。在(D)中:P(P)(−/−与+/+;ETS)=0.0259;n个=每组5人*TP53INP1−/−与TP53INP2+/+;1个字符:P(P) < 0.05; 2个字符:P(P) < 0.01.

  2. 通过免疫印迹法分析MEFi的E TCL中的CPT1A、CPT1B和β-微管蛋白。结果代表了三个独立的实验。

可在线获取此图的源数据。
图7
图7
在没有TP53INP1的情况下观察到的氧化应激是MEFi MEFi缺乏(−/−)或没有(+/+)的情况下出现脂滴(LD)的原因,因为TP53INP2是在含有或不含10 mM NAC的培养基中播种的。48小时后,用100μM过氧化氢(H2O(运行)2)在无血清培养基中培养1h。在收获前,将细胞置于含有或不含NAC(10 mM)、GW-9662(PPARγ抑制剂,10μM)或PNU-74654(Wnt/β-catenin途径抑制剂,50μM)的正常培养基中恢复4 h。透射电镜观察细胞。
  1. 由细胞质表面积归一化的LD数量显示在图底部的两个直方图中。比例尺表示0.5μm。结果表示为平均值±SEM,代表三个独立实验*P(P)(−/−与+/+;NT)=0.00086;#P(P)(H)2O(运行)2与NT;+/+) = 0.013.

  2. LD的Body493/503染色(绿色)和细胞核的DAPI染色(蓝色)后,通过荧光显微镜观察细胞。L=脂滴。比例尺代表100μm。结果代表了三个独立的实验。

  3. 通过免疫印迹法分析MEFi TCL中的β-catenin、PPARγ、ATGL、MGLL和β-tubulin。结果代表了三个独立的实验。

可在线获取此图的源数据。

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引用人

参考文献

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