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.2015年1月23:6:6094。
doi:10.1038/ncomms7094。

T细胞白血病中位点和等位基因特异性多梳失调

附属公司

T细胞白血病中位点和等位基因特异性多梳失调

Jean-Marc纳瓦罗等。 国家公社. .

摘要

T细胞急性淋巴细胞白血病(T-ALL)是一种侵袭性恶性增生,其特点是复发率高,遗传异质性大。TAL1是最常被解除管制的致癌基因之一。然而,超过一半的TAL1(+)病例缺乏TAL1损伤,这表明未被识别的(epi)基因放松调控机制。这里我们显示,TAL1在T细胞谱系中通常沉默,并且多梳H3K27me3抑制标记在TAL1(+)T-ALL中局部减少。测序显示,在没有已知改变的单等位基因TAL1(+)患者中,>20%的患者在5'至TAL1的单个位点出现微插入或RAG1/2介导的上位体融合。使用“allelic-ChIP”和CrispR分析,我们证明这种插入在插入的等位基因处诱导H3K27me3到H3K17ac的选择性转换,而不是生殖系等位基因。我们还表明,尽管存在相当大的机制多样性,但致癌TAL1激活的模式而非表达水平会影响临床结果。总之,这些研究确立了位点特异性表观遗传学去修饰作为致癌激活机制。

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数字

图1
图1。ChIP-seq分析TAL1(目标1)基因座TAL1(目标1)-表达和TAL1(目标1)-被抑制的细胞。
()正常小鼠CD4染色质标记的ChIP-seq图谱+CD8(CD8)+胸腺细胞。这个TAL1(目标1)第4染色体上的基因组区域(包括在该发育阶段生理表达的相邻STIL基因)显示了TATA-结合蛋白-GTF招募到启动子(TBP)、聚合酶II(Pol II)、H3K4me1(增强子/调控区的活性染色质标记)、H3 K4me3(启动子的活性染色质标记)、,H3K36me3(基因体的活性染色质标记)和H3K27me3(依赖于PcG的抑制染色质标志)。这个TAL1(目标1)区域被缩放,插入断点定位到人类同源区域(114722607)由红色箭头指示。(b条)正常人TAL1中多梳抑制染色质标记H3K27me3的ChIP-seq图谱+(HSC;成红细胞)和TAL1(外周CD4+T细胞)谱系,与TAL1比较+(Jurkat)和TAL1(DA)T-ALL细胞。这个TAL1(目标1)显示了1号染色体上的基因和周围区域(包括STIL基因)。插入断点位置(47704964,HG19坐标)由箭头指示。除HSC和成红细胞外,所有的资料都被输入减去,而HSC和红细胞的输入数据不可用。显著富集区域表示为车道下方的绿色矩形(MACS2峰值)。
图2
图2。Jurkat插入断点处组蛋白甲基化/乙酰化标记的位点和等位基因特异性分析。
()H3K27me3标记的等位基因ChIP检测。顶面板:通过替换一个GL引物来区分种系(GL)和插入的等位基因(Ins.)的分析,该引物允许检测插入位点的GL配置(版本TAL1),并使用插入特异性引物来检测插入的配置(版本Ins,重叠12 bp插入)。引物对在GL p(GL)或插入p(Ins)克隆片段(以及在含有或不含有插入(Jurkat)(DND)的细胞系上)上进行测试,以专门扩增每个配置,并且不发生交叉反应。底部中间面板:在shMock或EZH2敲除条件下EZH2蛋白含量的western blot。在存在非沉默sh-RNA(shControl)或sh-RNA靶向EZH2(shEZ82)(左面板)或在Jurkat细胞与GSK126(0.5)孵育后进行Allelic-ChIP分析μM,72H)或车辆(二甲基亚砜,DMSO;右侧面板)。GAPDH和HoxD11被用作激活/抑制基因的对照,根据多梳依赖性H3K27me3标记进行调节。注意,EZH2敲除/抑制仅触发PcG-抑制的HoxD11控制基因H3K27me3标记的部分减少,可能是由于成人淋巴谱系中多梳成分的不完全敲除/抑制剂和/或冗余。(b条)乙酰化标记在TAL1(目标1)轨迹。H3K27Ac ChIP是用Jurkat细胞与载体(DMSO)或组蛋白脱乙酰酶抑制剂丁酸钠(SOB)(5mM、4H);然后通过ChIP-seq(左图)或通过等位基因ChIP(下图)分析DNA。对于ChIP-Seq,显示了插入点处标签序列数量的量化(右侧面板)***P(P)<0.001; **P(P)<0.001*P(P)<0.05,未配对t吨-测试。误差条表示95%的置信区间。
图3
图3。在单等位基因TAL1中反复发现微小和上位插入+“未决案件”。
()外膜/微插入的核苷酸序列。所有的插入都是特异性的,并且只位于指定的基因组位置,用红色表示。核苷酸缺失用红色破折号表示。该位置未引用SNP(补充图8);(b条)相对TAL1(目标1)T-ALL患者的表达(n个=111)根据双等位基因(BI)或单等位基因表达;微小/会阴插入的患者用红色表示;SIL-TAL病例单独显示;信息丰富的案例:SNP在TAL1(目标1)3'UTR允许确定表达是单等位基因还是双等位基因。NI:非信息性病例(TAL1(目标1)3′UTR不允许确定表达是单等位基因还是双等位基因)。平均生理学TAL1(目标1)胸腺中的水平显示为参考值(胸腺);水平条表示中间表达水平**表明BI和MONO表达之间存在显著差异(Mann–WhitneyU型-测试,P(P)<0,01); 注意,一些双等位基因患者达到/低于生理胸腺水平,可能是由于残留TAL1(目标1)-肿瘤细胞间表达成红细胞;TAL1(目标1)表达通过Taqman分析进行分析,并归一化为ABL(见方法)。
图4
图4。患者OC的会厌再融合示意图。
显示TCRβ轨迹(顶部车道,不按比例)。表示一种功能性Vβ7.4到Dβ1重排,产生一个切除的TRECβ,并包含一个(Vβ7.4/Dβ1)信号关节(SJ)。在整合到第1染色体之前,外种皮可能在SJ通过缺口过程打开,产生3′羟基末端。外泌体以反向整合10STIL公司基因,和7上游kbTAL1(目标1)基因(中间车道)。插入位点出现10 bp缺失(Δ,下划线)。非法V(D)J介导的SIL-TAL缺失和t(1;14)TCRδ使用的隐秘RSS的定位/TAL1(目标1)移位用黑色箭头表示。TAL1(目标1)指示启动子(P1a、P1b、P4)。显示了断点序列(Bkp1/2)(底部车道)。N个,N个区域;指示了Vβ7.4和Dβ1 RSS,并描述了七聚体(7)和九聚体(9)。
图5
图5。插入突变与表观遗传调控和TAL1(目标1)基因表达。
()主要患者插入断点处H3K27me3标记的等位基因ChIP分析。参见图2a的图例。一个TAL1中GL等位基因的标记+双等位基因(RENE)和一个TAL1(DAV)患者作为对照组***P(P)<0.001,未配对t吨-测试;相对折叠图:插入和/或GL等位基因ChIP值计算为相对于GAPDH(蓝色数字)或HoxD11(红色数字)的折叠增加,折叠图为相对百分比(GAPDH相对折叠:蓝色直方图;HoxD11相对折叠:红色直方图)。超过50%的蓝色直方图表明与表达的控制基因相比差异更大,并且对应于(部分)抑制的TAL1(目标1)表达;相反,50%以上的红色直方图表明,与表达的控制基因相比,受抑制基因的差异更大,对应于(部分)去抑制基因TAL1(目标1)表达;直方图按降序排列TAL1(目标1)镇压。(b条)表观调制和TAL1(目标1)通过DNA编辑模拟插入突变进行基因表达。左面板:用于同源重组的CRISPR设计示意图TAL1(目标1)PEER细胞系中两个编辑过的克隆的位置和构型。指出了PCR引物(普通箭头)用于检测成功靶向事件和基因组行走的位置。左下图:预期基因组供体和供体-插入边界的PCR证实同源重组成功。右上方面板:RQ-PCR分析TAL1(目标1)编辑后的表达式。将转录物归一化为ABL,并报告为非编辑PEER细胞的相对值。在1个(克隆2.4,由于生长受损)或2个(克隆5.10)独立的RNA提取液上进行四次PCR复制。右下面板:编辑克隆5.10中H3K27me3和H3K17ac标记的等位基因ChIP分析。参见图2a的图例***P(P)<0.001,未配对t吨-测试。
图6
图6。生存分析。
Kaplan–Meier分析显示GRAALL试验中治疗的165名原发性心脏病患者的DFS和OS,依据:(,b条)TAL1(目标1)表达四分位数;(c(c)(f))的模式TAL1(目标1)表达式。P(P)指示值,进行log-rank(地幔-考克斯)测试。

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引用人

工具书类

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