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.2015年1月15日;29(2):144-56.
doi:10.1101/gad.249748.114。 Epub 2014年12月29日。

终末表皮分化受Fra-2/AP-1与Ezh2和ERK1/2的相互作用调节

附属公司

终末表皮分化受Fra-2/AP-1与Ezh2和ERK1/2的相互作用调节

斯蒂芬妮·沃尔姆等。 基因开发. .

摘要

表皮分化改变是影响25%以上人口的多种皮肤病的特征。在此,我们确定Fra-2/AP-1是终末表皮分化的关键调节因子。Fra-2的上皮限制性异位表达诱导位于表皮分化复合体(EDC)内的表皮分化基因的表达。此外,在乳头状瘤-蛋白背景下,通过Fra-2的表达,观察到早熟角质形成细胞分化导致肿瘤负担减轻。重要的是,由于分化基因表达减少,基底上角质形成细胞中Fra-2的缺失足以导致皮肤屏障缺陷。在机械上,Fra-2结合并转录调节EDC基因启动子,这些启动子被转录阻遏物Ezh2共同占据。Fra-2在未分化的角质形成细胞中保持转录活性,在Lys104上发现其单甲基化和二甲基化,并与Ezh2相互作用。角质形成细胞分化后,ERK1/2在Ser320和Thr322上磷酸化Fra-2的C末端,导致转录激活。因此,Fra-2对表皮分化的诱导受一种双重机制控制,包括Ezh2依赖的甲基化和ERK1/2依赖的磷酸化激活。

关键词:ERK1/2;Ezh2/PRC2;Fra-2/AP-1;表皮分化复合体;非组蛋白底物。

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数字

图1。
图1。
Fra-2诱导终末表皮分化。(A类)第2帧Ca期间的mRNA表达2+-体外诱导mKC分化。第1页飞行高度(Flg)指示早期和晚期表皮分化标记的诱导。n个= 3; (*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±标准偏差(SD)。(B类)Ca期间Fra-2蛋白的表达2+-诱导体外mKC分化。ΔNp63的缺失表明分化的诱导。n个= 4. (C类)第2帧从新生幼崽中分离的基础(α6整合素高)和分化(α6整合素低)mKCs的mRNA表达。第1页飞行高度(Flg)指示早期和晚期表皮分化标记的诱导。n个= 3; (*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD(D类)E17.5处野生型皮肤的Fra-2 IF。n个= 6; 放大40倍。(E类)EDC基因的差异表达飞行高度(Flg),洛尔,Tchhl1型,Lce1k公司、和第2帧外源性表达突变体在表皮样品中的表达第2帧(第2帧Ep-设置关闭)与E17.5的对照窝友相比。n个=每个基因型6个;(*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD(F类)基底细胞标记表达(K5,绿色)和晚期分化标记表达(Lor,红色,顶部面板;Flg,红色,底部面板)英寸有限公司第2帧Ep-设置关闭E17.5处的皮肤。n个=每个基因型6个;放大40倍。白色条表示分化表皮层的厚度,如补充图S1C所示。(G公司)EDC基因差异表达和第2帧初级表达第2帧Ep-设置关闭在基础条件和钙水平下,mKCs与对照mKCs的比较2+体外处理24小时。n个= 3; (*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD(H(H))宏观外观紧急求救信号+第2帧Ep-设置关闭 紧急求救信号+5周龄时出现乳头状瘤。n个=每个基因型6个。()分析紧急求救信号+第2帧Ep-设置关闭 紧急求救信号+乳头状瘤。健康与环境(顶部面板)、基底细胞标记表达(K5,绿色)和晚期分化标记表达(Lor,红色,中间的面板;Flg,红色,底部面板)英寸紧急求救信号+第二框架Ep-设置关闭 紧急求救信号+5周龄时出现乳头状瘤。放大20倍。这个插入图中显示了40倍的放大倍数。补充图S1D中量化了Lor和Flg平均荧光强度。n个=每个基因型6个。
图2。
图2。
Fra-2/AP-1是表皮分化调节EDC基因所必需的。(A类)H&E和Fra-2 IF有限公司(第2帧飞行/飞行),第2帧Δsb(第2帧飞行/飞行; FoxN1 Cre公司+/T型)、和第2帧Δep(第2帧飞行/飞行; K5 Cre公司+/T型)胚胎在E17.5。n个=每个基因型6个;放大40倍。(B类)甲苯胺蓝染料渗透试验有限公司,第2帧Δsb、和第2帧Δep胚胎在E17.5。n个=每个基因型6个。(C类)增殖/基底细胞标记物表达(Ki67,绿色,顶部面板;K5,绿色,底部面板)和晚期分化标记表达(Lor,red,顶部面板;Flg,红色,底部面板)英寸有限公司,第2帧Δsb、和第2帧Δep胚胎在E17.5。n个=每个基因型6个;放大40倍。(D类)EDC基因的差异表达第2帧Δsb第2帧Δep胚胎与E17.5的对照窝卵进行比较。n个=每个基因型4个;(*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD(E类)野生型mKC分化过程中EDC启动子处Fra-2的ChIP分析(0–72 h Ca2+).n个= 5; (*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD。
图3。
图3。
Fra-2和Ezh2协同调节表皮分化基因并相互作用。(A类D类)Ezh2的ChIP分析(A类),苏西12(B类),H3K27me3(C类),和阴性对照IgG(D类)mKC分化期间(0–72 h Ca2+).n个= 3; (*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD(E类)Ezh2的Co-IP和基础mKCs中Ezh2和Fra-2的Western blot分析。n个= 5. (TCL)总细胞裂解物。(F类)mKC分化期间Fra-2的Co-IP(0-48 h Ca2+)以及Fra-2、Ezh2和甲基化赖氨酸(甲基K)的Western blot分析。n个= 5. (G公司)基底mKCs中GSK126和EPZ6438抑制Ezh2后甲基K的免疫沉淀和Fra-2的Western blot。n个= 3.
图4。
图4。
Lys104甲基化改变了Fra-2转录活性。(A类)通过液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)分析确定的Fra-2的序列覆盖率,其中红色残基代表确定的肽。(B类)未修饰Fra-2 89–104肽的MS/MS谱(框入A类). 显示了Fra-2 89-104肽的质量误差、识别分数和后验误差概率(PEP)。(C类)Fra-2 89–104肽的MS/MS光谱,其中单甲基化明确指定为K104残基。显示了Fra-2 89–104肽的质量误差、识别分数和PEP。(D类)二甲基化明确归属于K104残基的Fra-2 89–104肽的MS/MS光谱。显示了Fra-2 89–104肽的质量误差、识别分数和PEP。(E类)慢病毒感染原代mKCs后Fra-2蛋白的表达第2帧野生型(第2帧重量)或Fra-2 K104F与空载体感染的细胞(pLVX)相比。n个= 3. (F类)差速器第2帧和表达原代mKCs的EDC基因表达第2帧野生型和Fra-2 K104F与空载体感染细胞相比。n个= 3.
图5。
图5。
在mKC分化时,Fra-2被ERK1/2磷酸化并稳定。(A类)E17.5野生型胚胎皮肤中的p-ERK1/2免疫组织化学。箭头指向基底上的表达,白色虚线表示基底膜。n个= 3. (B类)p-ERK1/2蛋白印迹显示体外mKC分化过程中ERK1/2活化(0–72 h Ca2+).n个= 3. (C类)mKC分化过程中Fra-2的免疫沉淀(0-48 h Ca2+)以及Fra-2和p-Fra-1/2的Western blot分析。n个= 3. (D类)钙离子上Fra-2的Western blot分析2+处理(48 h)和用FR180204抑制ERK1/2。n个= 3. (E类)Fra-2在Ca上的免疫沉淀2+用FR180204和Fra-2和p-Fra-1/2的Western blot处理(48 h)并抑制ERK1/2。n个= 3. (F类)钙离子上EDC基因的mRNA表达分析2+处理(48 h)和用FR180204抑制ERK1/2。n个= 3; (*)P(P)< 0.05; bar表示平均值±SD(G公司)慢病毒感染原代mKCs后Fra-2蛋白的表达第2帧野生型(第2帧 重量)或C末端磷酸受体位点缺失的突变型Fra-2(Fra-2 S320A/T322A)与空载体感染细胞相比。n个= 3. (H(H))原代mKCs表达的差异Fra-2和EDC基因表达第2帧野生型或Fra-2 S320A/T322A与空载体感染细胞相比。n个= 3. ()Fra-2、Ezh2和ERK1/2调控EDC基因的示意模型:在基底细胞中,甲基化Fra-2(Fra-2-Me)结合在EDC基因启动子的TPA-反应元件(TRE)上,并与Ezh2相互作用,阻止EDC基因表达。mKC分化后,Fra-2被ERK1/2磷酸化(Fra-2-P)并失去甲基化,EDC启动子TSS处Ezh2蛋白水平和H3K27甲基化降低,共同诱导EDC基因表达。

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