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.2015年1月6日;112(1):130-5.
doi:10.1073/pnas.1415261112。 Epub 2014年12月22日。

超分辨显微镜显示神经元线粒体中UCP4和F0F1-ATP合成酶的空间分离

附属机构

超分辨显微镜显示神经元线粒体中UCP4和F0F1-ATP合成酶的空间分离

恩里科·克罗茨奇等。 美国国家科学院院刊. .

摘要

由于不同的蛋白质竞争穿过线粒体内膜的质子梯度,因此需要一种有效的机制来将相关的化学势分配给不同的需求,例如ATP生成、产热、活性氧(ROS)的调节等,我们使用超分辨技术dSTORM(直接随机光学重建显微镜)观察了小鼠原代神经元中的几个线粒体蛋白,并验证了解偶联蛋白4(UCP4)和F0F1-ATP合成酶在空间上分离的假设,以消除对质子动力的竞争。我们发现UCP4、F0F1-ATP合成酶和线粒体标记物电压依赖性阴离子通道(VDAC)在不同线粒体中有不同的表达水平,支持线粒体异质性假说。我们的实验结果进一步表明,UCP4优先定位于VDAC附近,可能位于内界膜,而F0F1-ATP合成酶更集中地位于嵴膜。数据表明,UCP4不能竞争质子,因为它与质子泵和ATP合成酶都存在空间分离。因此,线粒体形态排除了UCP4作为氧化磷酸化解偶联剂的作用,但这与UCP4可能消散过量质子梯度的观点一致,而质子梯度通常与ROS生成有关。

关键词:直接随机光学重建显微镜;线粒体膜蛋白;质子扩散;活性氧物种;脱钩。

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利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
F的双色dSTORM图像0F类1-ATP合成酶、VDAC和UCP4。超分辨率图像成对显示(A–C)UCP4(用Alexa 488染色;绿色)和ATP合成酶(用Alexa 647染色;红色)和(D–F型)UCP4和VDAC(用Alexa 647染色;红色)。不同颜色的框表示放大的视图。对于每个蛋白质对,至少三个不同的图像进一步分析每个线粒体检测到的定位数量,并显示为UCP/ATP合成酶的散点图[(B类)神经元过程和(C类)神经元体]和UCP4/VDAC[(E类)神经元过程和(F)神经元体]。这些地块分为三个不同的扇区(I–III),分别覆盖0°至30°、30°至60°和60°至90°的角度。彩色圆点代表主要蛋白质簇:UCP4(绿点)、ATP合成酶(红点B类C类)和VDAC(中的红点E类F类). 黄色圆点表示集群(扇区II)内具有类似本地化数量的集群。百分比是指在各个扇区检测到的定位分数,而tot是指所分析的线粒体总量。
图2。
图2。
F的空间排列0F类1-单个线粒体内的ATP合成酶、COX、UCP4和VDAC。超分辨率图像(A类)ATP合成酶(B类)考克斯(C类)UCP4和(D类)显示了用Alexa 647染色并用dSTORM记录的VDAC。对于每个蛋白质,一个示例(A–D)显示为中的放大视图居中(绿色方框在A–D). 绿色框中的区域用高斯强度分布拟合,并以横截面图表示,其中包含每个蛋白质的半高宽。(E类)该方案显示了所分析的不同神经元区域(灰色)。在线粒体的放大图中,彩色椭圆代表CM(绿色)、IBM(紫色)和OMM(红色)。(F类)晶须盒图表示不同蛋白质分布的获得宽度(FWHM)的中位数、下四分位数和上四分位数;每个盒子包含至少50个神经元过程线粒体(白盒子)和神经元细胞体(彩色盒子)的数据。
图3。
图3。
IMM上的局部质子梯度方案(A类)低和(B类)高电位。虽然位于CM处的呼吸链蛋白(黄色)建立了质子梯度,但在CM处也发现了ATP合成酶(绿色),是它的主要消耗者。位于IBM的UCP4只有在质子梯度过度时才会耗尽沿着膜的质子梯度。蓝色区域表示局部质子浓度。MM,线粒体基质。

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