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.2014年5月;32(5):1347-60.
doi:10.1002/stem.1648。

追踪难以捉摸的纤维细胞:小鼠伤口愈合过程中产生胶原蛋白的造血细胞的鉴定和表征

附属机构

追踪难以捉摸的纤维细胞:小鼠伤口愈合过程中产生胶原蛋白的造血细胞的鉴定和表征

Hirotaka Suga公司等。 干细胞. 2014年5月.

摘要

据报道,纤维细胞是一种独特的循环细胞群,具有造血细胞和间充质细胞的特性,在伤口愈合中发挥着重要作用。然而,已发现推测的纤维细胞在分化过程中失去造血表面标记物(如CD45)的表达,这使得用传统方法在体内追踪这些细胞变得困难。在本研究中,为了区分没有表面标记的造血细胞和非造血细胞,我们利用vav 1基因,该基因仅在造血细胞上表达,而在其他细胞类型上不表达,并建立了一种新型转基因小鼠,其中造血细胞被不可逆地标记为绿色荧光蛋白,非造血细胞被标记为红色荧光蛋白。在该小鼠模型中使用单细胞转录分析揭示了两种离散类型的I型胶原(Col I)表达细胞的造血谱系招募到切除性皮肤伤口中。我们在蛋白质水平上证实了这一发现,其中一个Col I合成细胞亚群是CD45+和CD11b+,符合纤维细胞的传统定义,另一个是CD45-和CD11b-,代表一个先前未确认的人群。发现这两种细胞类型最初达到峰值,然后减少愈合后,这与伤口部位的消失一致,而不是失去识别表面标记物的表达。综上所述,我们明确地确定了两种造血来源的细胞,它们被招募到伤口部位并沉积胶原蛋白,明确证实了皮肤愈合过程中纤维细胞的存在和自然时间过程。

关键词:胶原蛋白;纤维细胞;造血细胞;表面标记;伤口愈合。

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作者表示没有潜在的利益冲突。

数字

图1
图1
VavR双转基因小鼠在造血细胞表达GFP,在非造血细胞表达RFP。(A) :在mTmG小鼠与Vav-Cre杂交时,子代中表达Vav 1(造血)的所有细胞因loxP位点的分裂而排除RFP,而是表达GFP。不表达vav 1(非造血)的细胞仍为RFP+。(B) :野生型小鼠外周血细胞的流式细胞术是非荧光的,而VavR小鼠的GFP+是无荧光的。在VavR小鼠的外周血中未检测到循环RFP+细胞。(C) 以下为:脾脏、肝脏、心脏和皮肤的组织学图像显示RFP和GFP细胞的分布。细胞核用4′,6-二氨基-2-苯基吲哚染色。比例尺=75μm。(D) :从VavR小鼠的心脏、脾脏、肝脏和皮肤中分离的细胞的流式细胞术显示了这些器官中GFP+和RFP+细胞的相对比例。(E、F):脾脏(E)中CD45和皮肤(F)中细胞角蛋白的免疫组织化学显示CD45(紫色)与GFP共定位,细胞角蛋白(紫色)和RFP共定位。白色箭头突出显示了协同本地化区域。灰色箭头显示脾脏中有少量GFP+/C45−细胞,表明CD45不是造血谱系细胞的普遍标记。灰度条=75μm。白色比例尺=150μm。缩写:GFP,绿色荧光蛋白;RFP,红色荧光蛋白。
图2
图2
VavR双转基因小鼠的骨髓细胞主要是GFP+,但显示出RFP+骨髓间充质干/祖细胞(BMSCs)。(A) :对整个VavR骨髓进行流式细胞术分析,不去除血统,显示可忽略不计的RFP+细胞。大多数GFP+细胞是CD45+(相对于GFP+总细胞的百分比)。(B、C):GFP+骨髓细胞的流式细胞术分析表明,GFP+/CD45-细胞没有显示单核细胞CD11b+或巨噬细胞F4/80+的标记物(相对于总GFP+细胞的百分比)。(D) :骨髓细胞的谱系缺失可以检测到RFP+细胞,其中一部分对BMSC标记物Sca-1呈阳性(相对于总RFP+电池的百分比)。(E) :体外培养骨髓细胞会增加RFP+细胞在传代过程中的患病率。比例尺=50μm。缩写:GFP,绿色荧光蛋白;RFP,红色荧光蛋白。
图3
图3
在VavR双转基因小鼠的伤口愈合过程中,造血细胞和非造血细胞得到了很好的区分。(A、B):伤口愈合过程中的组织学图像和量化显示GFP+造血细胞在第7天达到峰值,而RFP+非造血细胞在14天达到峰值。比例尺=50μm。量化包括每个高功率场(hpf)的RFP+和GFP+电池数量。(C) :流式细胞术显示伤口中的大多数GFP+细胞是CD45+(相对于GFP+总细胞的数量)。(C–E):通过流式细胞术(C)(相对于RFP+细胞总数的百分比)和免疫染色的定量(D,E),发现RFP+/CD31+内皮细胞在伤口中在第14天达到峰值。蓝色:CD31。白色箭头突出显示RFP/CD31共同定位的区域。比例尺=100μm。值得注意的是,(C)中的RFP和GFP百分比是相对数值(即RFP计数与RFP+GFP计数),并不反映绝对单元格数的变化。缩写:GFP,绿色荧光蛋白;RFP,红色荧光蛋白。
图4
图4
单核细胞/巨噬细胞系细胞是伤口的主要招募人群。(A,B):第7天F4/80(蓝色)的标准和三维免疫组织化学成像显示伤口中的F4/80+细胞与GFP+和CD45+(紫色)细胞共定位。白色刻度条=40μm;灰度条=20μm。白色箭头突出显示GFP+/CD45+/F4/80+协同定位区域。(C) :伤口裂解液的流式细胞术显示GFP+/CD11b+/F4/80+细胞分数(相对于总细胞的百分比)在第7天达到峰值,并在第28天恢复到基线水平。缩写:GFP,绿色荧光蛋白;RFP,红色荧光蛋白。
图5
图5
单细胞转录分析揭示了单核细胞/巨噬细胞谱系细胞及其胶原蛋白表达在伤口愈合中的重要性。(A) :伤口中绿色荧光蛋白+细胞的部分聚集。列表示单个细胞,行对应于基因。黄色表示表达增加,蓝色表示表达减少。单核细胞/巨噬细胞谱系细胞的特征是CD11b(Itgam)和F4/80(Emr1)的高表达,并表达I型和III型胶原。(B) :创伤后第7天,伤口中表达I型胶原的单核细胞/巨噬细胞的相对百分比显著增加,并在随后的时间点缓慢回归到基线水平(相对于Col I+单核细胞和巨噬细胞总数的百分比)。(C) :散点图表示I型胶原表达和表面标记物之间的相关性。在表达I型胶原的造血细胞中,CD45和CD11b的表达存在异质性。
图6
图6
确定了两个造血衍生纤维细胞群体:GFP+/CD45+/CD11b+/Col I+和GFP+/CD45-/CD11b−/Col I+。(A) :免疫组织化学证实存在沉积I型胶原的单核细胞/巨噬细胞亚群。紫色:胶原蛋白I,蓝色:F4/80。比例尺=20μm。(B) :免疫印迹显示创伤后第7天造血谱系(GFP+)Col I产生细胞的募集,正常皮肤中没有这种细胞类型。创伤后基质细胞(RFP+)Col I生成也增加。(C) :流式细胞术分析表明,GFP+/CD45+/CD11b+/Col I+细胞被招募到伤口,在第7天达到峰值,到第28天数量减少(基于总GFP+细胞的百分比)。(D) :第二种,非单核细胞造血细胞亚群(GFP+/CD45−/CD11b−/Col I+)沉积I型胶原并显示类似的招募模式,也通过流式细胞术进行了鉴定(基于总GFP+细胞的百分比)。缩写:GFP,绿色荧光蛋白;RFP,红色荧光蛋白。
图7
图7
SDF-1型α导致骨髓源性CD11b+细胞迁移,TGF-β1调节CD11b+细胞中的基因表达α肌成纤维细胞标记物SMA在体内浸润伤口的造血细胞亚群中得到证实。(A) :VavR骨髓的原代培养物为MACS,分选CD11b并重新培养。免疫荧光证实细胞为GFP+/CD11b+。蓝色:CD11b。比例尺=50μm。(B) :SDF-1趋化性测定α、MCP-1和TGF-β1显示CD11b+细胞迁移以响应SDF-1α,带有*,第页与对照组相比<0.05(n个=4).(C) :SDF-1型α、MCP-1和TGF-β1 CD11b+细胞治疗显示TGF-β1上调纤维化相关基因(I型胶原,αSMA和TIMP-1)和血管内皮生长因子(通过qPCR.*),第页与对照组相比<0.05(n个=4).(D) : αSMA在伤口早期的时间点在浸润的造血细胞亚群中表达,但随着伤口的愈合而消退。白色箭头突出显示以下区域αSMA/GFP协同定位。白色刻度条=75μm;灰度条=40μm。缩写:αSMA,平滑肌肌动蛋白;绿色荧光蛋白;RFP,红色荧光蛋白;金属蛋白酶组织抑制剂TIMP-1;血管内皮生长因子。

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引用人

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