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.2013年10月;9(10):e1003916。
doi:10.1371/journal.pgen.1003916。 Epub 2013年10月31日。

禾谷镰刀菌组蛋白H3 K27甲基转移酶KMT6调节次级代谢产物基因簇的发育和表达

附属公司

禾谷镰刀菌组蛋白H3 K27甲基转移酶KMT6调节次级代谢产物基因簇的发育和表达

拉内尔·康诺利等。 公共科学图书馆-基因. 2013年10月.

摘要

谷物病原体禾谷镰刀菌(Fusarium graminearum)产生对人类和动物有毒的次级代谢产物,但基因簇的协同转录调控在很大程度上仍是一个谜。通过染色质免疫沉淀和高通量DNA测序(ChIP-seq),我们发现具有次级代谢产物簇的区域富含三甲基化组蛋白H3赖氨酸27(H3K27me3),这是一种与基因沉默相关的组蛋白修饰。H3K27me3主要发现于与其他镰刀菌物种缺乏同工酶的地区,通常是亚砾岩地区。二甲基或三甲基化H3K4(H3K4me2/3),两种与基因活性相关的修饰,以及H3K27me3主要存在于基因组的互斥区域。为了寻找H3K27me3的功能,我们删除了H3K27甲基转移酶KMT6的基因,KMT6是果蝇增强子E(z)的同源物。如western blot和ChIP-seq所示,kmt6突变体缺乏H3K27me3,表现出生长缺陷,不育,并组成性表达真菌毒素、色素和其他次级代谢产物的基因。转录组分析表明,4449个沉默基因中有75%富含H3K27me3。在WT中富集H3K27me3的基因子集在kmt6中获得H3K4me2/3。大量重叠的一组基因在kmt6中的表达增加。其余2720个注释沉默基因中,几乎95%的基因在kmt6中未表现出H3K27me3或H3K4me2/3的富集。在这些情况下,仅仅缺乏H3K27me3不足以表达,这表明需要额外的变化来激活基因。综上所述,我们发现H3K27me3的缺失允许额外14%的基因组表达,导致主要参与次级代谢途径和其他物种特定功能的基因的去表达,包括假定的分泌致病因子。本研究的结果为控制“隐秘基因组”,特别是次级代谢产物表达的新型靶向策略提供了框架。

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图1
图1。组蛋白标记区分镰刀菌属中的同步区和非同步区。
同步映射生成于http://www.broadinstitute.org/annotation/genome/fusarium_group/Chromomap.html对于禾谷镰刀菌PH-1型(Fg公司),F.垂直二极管7600 (Fv公司)、和尖孢F.oxysporum4287 (法罗群岛).Fg公司超级染色体在顶部显示为交替的灰色阴影(参考染色体)。之间的同步区域Fg公司和每个染色体Fv公司法罗群岛以不同颜色显示,其中特定颜色代表特定染色体;白色表示没有同步性。为了显示重组增加的区域,在Fg公司与参考菌株PH-1相比,菌株00-676显示为黑色阴影。显示H3K27me3(橙色)和H3K4me2(绿色)的ChIP-seq结果(读取/kb)。
图2
图2。这个6公里突变体缺少H3K27me3。
A.从WT或6公里,公里1高功率放大器突变体显示H3K27me3在6公里但水平不变公里1,一种缺乏Su(var)3-9、Clr4和DIM-5的H3K9甲基转移酶同源物的突变体高性能操作异染色质蛋白1(HP1)同源物被删除的突变体(L.R.Connolly和M.Freitag,正在准备中)。使用了两种不同的抗体(AM39535和ab6147)。B.H3K27三甲基化发生在大块中。H3K27me3(橙色)与H3K4me2(绿色)和-me3(蓝色)相互排斥,它们位于1号染色体的相同区域(第2至4章的图像见图S3)。H3K27me3的特定富集在6公里突变但在补充菌株中恢复(6公里+).
图3
图3。这个6公里突变体显示出生长和发育的改变。
A.重量和6公里菌株生长在最小(MIN)或YPD培养基上。突变体在MIN上生长稀疏,在YPD上菌丝体致密、生长缓慢且呈深橙色。下部面板显示带有补充应变的YPD板(6公里+6公里+)和质粒控制(6公里+质粒)。B.重量和6公里在MIN或YPD上通过小试管进行生长,以测量25至33天的线性生长。结果是三次重复的平均值,条形图表示标准误差。C.在胡萝卜琼脂(CAR)平板上诱导性发育。WT板上的黑色斑块表明大量完全发育的鞘周,而在6公里盘子。补体菌株(6公里+公里t6+)能够以与WT相似的水平产生鞘外和子囊孢子。原生质体融合以补充kmt6新+WT菌株马力+细胞核不能恢复鞘周的形成。这些异核体没有分解,因为从CAR板的不同区域分离出了对G418和Hyg都有抗性的菌落,并在YPD+G418+Hyg(中心和边缘)上生长。
图4
图4。组蛋白修饰在全套禾谷镰刀菌基因。
每个修改的左侧面板显示了所有基因的读取计数(读取/基因),这些基因被对齐以使已知或假定的转录起始位点(TSS)位置为“0”。中间的面板显示了所有基因的读取计数(读取数/基因数),这些基因按基因长度进行了标准化(x轴表示基因长度的百分比)。右侧面板显示每个基因的标准化读取计数(NLCS;密度)分布。对于大多数修改,观察到两个峰值,背景水平读取(“B”)和富集(“E”)。结果是低氮实验,但在高氮培养基上生长的样品获得了无法区分的结果。
图5
图5。组蛋白修饰的全局转录分析和相关性。
A.生物复制高度相关。在所有四种条件下,生物复制品1的FPKM与每个基因的生物复制品2相比较,证明了复制实验之间的强相关性(r是相关系数)。B.每个基因的RPKM成对比较,WT与kmt6相比和低与。每个菌株的高氮含量显示了基因表达的全球变化。虽然基于氮的有效性,表达有一些变化,但在WT和6公里(橙色和绿色区域)。C.组蛋白修饰与表达状态相关。绘制每个基因的表达(RPKM)与。低氮条件下生长的WT对H3K27me3(橙色)、H3K4me2(绿色)、H4K4me3(灰色)和H3K36me3(黑色)的组蛋白富集(NLCS)。对于每个修改,除了H3K36me3,在y轴上可以看到两个点簇,与分布曲线中的背景和富集基因组相关(见图5)。D.低氮条件下与沉默和表达基因相关的组蛋白修饰。基因被分类为沉默(≤3 RPKM)或表达(>3 RPKM),H3K27me3、H3K4me2和H3K4me3的富集由EpiChIP NLCS值确定。绘制维恩图以显示WT(A–B)或6公里(C–D)。
图6
图6。初级(A)和次级(B)代谢中单个基因的热图(左侧面板)以及八个中心周围的基因簇(右侧面板)。
很少有初级代谢基因受到6公里与大多数次级代谢基因相比,突变导致6公里。日志值2RPKM的比率公里t6/每个菌株的WT或高/低氮条件都是彩色编码的,标尺如右图所示。例如,在(A)的左图中,红色代表对数2(6公里/WT),共10个,表示6公里RPKM是WT RPKM的1024倍。簇2和簇5中的初级代谢基因在6公里表S2中列出了在高氮中下调的、和簇7及其假定功能。簇1、簇4和簇7中的次级代谢基因在6公里表S2中列出了在高氮中下调的、和簇8及其假定功能。
图7
图7。参与次级代谢的基因存在于H3K27me3区域,但并非所有基因都是由公里t6.
A.NRPS(蓝色,顶部)、PKS(灰色,中间)和细胞色素P450(浅蓝色,底部)基因被定位到四条染色体上,与H3K27me3(低氮条件)相关。几乎所有基因都位于H3K27me3覆盖的区域。低氮条件下转录的变化以紫色表示为对数2RPKM比值kmt6与。WT.B.热图显示三类SM基因、细胞色素P450s、PKS和NRPS的表达变化和H3K27me3富集。热图图例如图8所示。H3K27me3富集如对数所示2NLCS的值。
图8
图8。特异性基因簇在6公里.
A.镰刀菌素C簇中的所有基因均上调(A,FGSG_07797;B,FGSG_07798,fus1/pks10C、 FGSG_13222,模糊2D、 FGSG_13223,模糊3E、 FGSG_07800,模糊4F、 FGSG_07801,模糊5G、 FGSG_07802,模糊6H、 FGSG_07803,模糊7一、 FGSG_07804,模糊8细胞色素P450;J、 FGSG_07805)。B.类胡萝卜素簇被去除6公里A.组蛋白修饰状态和类胡萝卜素生物合成基因的表达,al-1/carB植物烯脱氢酶;D、 FGSG_03066,al-2/carRA植物烯合酶;E、 FGSG_03067,cao-1号机组/卡尔X类胡萝卜素加氧酶;F、 FGSG_03068,卡尔·R转录调节因子;G、 FGSG_03069,二氢二吡啶酸合成酶;H、 FGSG_12520,环指蛋白;一、 FGSG_03070;J、 FGSG_03071,FAD依赖性氧化还原酶)。基因基地-1,铝-2和FGSG_03069是最强烈上调的,并且转录因子卡尔·R在低氮(log2 = 1.63)和1.5倍高氮诱导(log2 = 0.6)。在A和B中,日志2-表达式中的倍数变化在x轴上有实线,在2(增加4倍)和6(增加64倍)处有虚线。仅显示具有统计意义的值(第页<0.001). C.缺乏KMT6会导致类胡萝卜素的产生,并在低氮水平(尤其是高氮水平)的培养液中积累。WT和kmt6在28C的温度下,在含有6 mM或60 mM NH的液体ICI中培养7天43.

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