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.2013年9月1日;99(4):632-9.
doi:10.1093/cvr/cvt121。 Epub 2013年5月21日。

补体32缺陷反应基因导致小鼠胎盘血管生成受损

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补体32缺陷反应基因导致小鼠胎盘血管生成受损

崔晓兵等。 心血管研究. .

摘要

目的:本研究的目的是确定补体32反应基因(RGC-32)在妊娠期胎盘血管生成中的作用,并探讨其潜在机制。

方法和结果:RGC-32缺陷(RGC32(-/-))小鼠由具有RGC-32基因外显子2和3缺失的C57BL/6胚胎干细胞产生。大多数RGC32(-/-)小鼠可以存活。然而,与出生时的野生型室友相比,它们的体型要小得多。通过检查性交后16.5天的胚胎发育和胎盘,我们发现RGC32(-/-)胚胎和胎儿胎盘明显小于野生型。进一步分析表明,RGC32(-/-)胎盘的迷路区较小,血管生成缺陷。从机制上讲,RGC32(-/-)胎盘中血管内皮生长因子(VEGF)受体2(VEGFR2)和胎盘生长因子(PlGF)显著下调,提示VEGFR2和PlGF-可能介导RGC-32在胎盘血管生成中的作用。事实上,shRNA敲低RGC-32可抑制VEGF诱导的内皮细胞增殖、迁移和管形成,同时阻断VEGFR2的表达。RGC-32似乎通过激活NF-kB来调节VEGFR2的表达。此外,RGC-32通过控制PlGF的表达来调节滋养层细胞的增殖。

结论:RGC-32的缺失通过中断胎盘血管生成导致胎儿生长受限,这是由于血管内皮细胞中通过NF-kB依赖性途径和滋养层细胞中PlGF表达降低VEGFR2表达所致。

关键词:血管生成;胎儿生长受限;胎盘生长因子;补体反应基因32;血管内皮生长因子受体。

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数字

图1
图1
RGC32增长受限−/−老鼠。(A类)生成RGC32的策略示意图−/−老鼠。(B类)野生型(RGC32)的基因分型+/+),RGC32+/−和RGC32−/−利用小鼠尾部基因组DNA进行RT-PCR;仅285 bp的产物表明为野生型。750和285 bp片段的存在均表明杂合,而仅750 bp则表明纯合敲除。(C类)RGC32的16.5个DPC胚胎中的RGC-32转录物+/+,RGC32+/−和RGC32−/−用qPCR对小鼠进行定量。(D类)代表性RGC32的体型−/−与野生型同窝小鼠相比,小鼠较小。(E类)野生型的出生后体重和相对生长率(n个=6)和RGC32−/−(n个=7)4周大的小鼠。
图2
图2
RGC-32缺失导致胎儿生长受限和死亡。母RGC32+/−小鼠与雄性RGC32交配+/−老鼠。在16.5 DPC时收集胚胎和胎盘。(A类)RGC32型−/−胚胎和胎盘均小于野生型同窝卵。(B类C类)野生型和RGC32重量的定量分析−/−胚胎(B类)和胎盘(C类). **P(P)与野生型组相比<0.01。(D类)RGC32的比率+/+,RGC32+/−,RGC32−/−胚胎和死胎。结果表示为平均值±SD(n个= 5).
图3
图3
RGC32血管受损−/−胎盘迷路区和卵黄囊。(A类)如图所示,将一半胎盘均匀分为三部分,并进行石蜡包埋。胎盘切片用H&E染色,迷路区用黄线环绕。(B类)不同迷宫区域的定量分析。这些区域被归一化为野生型迷宫区的第一部分。(C类)野生型和RGC32 CD31免疫组化染色的代表性显微照片−/−胎盘迷路区。(D类)迷路区胎儿毛细血管数量的量化。(E类F类)野生型和RGC32两个可比较位置的总血管−/−11.5 DPC时的卵黄囊*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01,$P(P)>与相应野生型组相比,0.05(B类)或(D类) (n个≥ 3). MS,母窦;Tr,滋养层细胞;FE,胎儿内皮细胞;FCp,胎儿毛细血管。
图4
图4
野生型和RGC32中血管生成因子的mRNA表达−/−胎盘。VEGFR2的mRNA表达(A类),PlGF(B类)和其他血管生成基因(C类)野生型和RGC32−/−用qPCR检测16.5 DPC时的胎盘*P(P)与野生型组相比,每个基因的差异均<0.05(n个= 3).
图5
图5
敲除RGC-32抑制EC功能、PlGF表达和滋养层细胞增殖。(A类)RGC-32基因敲除阻断了VEGFR2 mRNA的表达。用表达GFP(Ctrl)或RGC-32 shRNA(Ad-shRGC32)的腺病毒转导C166细胞48小时。如图所示,进行qPCR检测RGC-32、VEGFR2和PlGF的mRNA表达。(B类)RGC-32基因敲除阻断了VEGFR2蛋白的表达。C166细胞的处理与(A类). western blot检测VEGFR2的表达,并用α-微管蛋白进行归一化。(C类)RGC-32基因敲除阻断VEGF诱导的EC增殖。用Ad-GFP(Ctrl)或Ad-shRGC32转导C166细胞,然后用载体或VEGF(20 ng/mL)处理48 h。用MTT评估EC增殖。(D类)RGC-32基因敲除阻断了VEGF诱导的EC迁移。C166细胞的处理与(C类). 伤口愈合试验用于评估EC迁移。(E类)迁移距离的定量分析。(F类)RGC-32敲除阻止EC管形成。将Ad-GFP或Ad-shRGC32转导的C166细胞接种在Matrigel上24 h,观察毛细血管样管的形成。所示数据是三个独立实验的代表。()RGC-32敲除抑制滋养层细胞中PlGF的表达。用对照组(Ctrl)或RGC-32 shRNA质粒(shRGC32)转染HTR-8/SVneo细胞48 h。用qPCR检测RGC-32和PlGF的mRNA表达。(H(H))RGC-32基因敲除阻断滋养层细胞增殖。用对照(Ctrl)或shRGC32质粒转染细胞48小时后,采用MTT法评估滋养层细胞的增殖情况*P(P)< 0.05, **P(P)与Ctrl组相比<0.01, #P(P)与Ctrl+VEGF组相比<0.05(n个≥3)。
图6
图6
RGC-32通过激活NF-kB调节VEGFR2的表达。用表达GFP(Ctrl)或RGC-32(Ad-RGC32)的腺病毒转导C166细胞48小时,然后检测NF-kB p65的磷酸化(A类)和CREB(B类)并将其归一化为自身的总蛋白水平。(C类D类)用25μM PDTC预处理C166细胞,然后用Ad-GFP(Ctrl)或Ad-RGC32转导48小时。NF-kB p65活化和表达(C类),VEGFR2 mRNA(D类)和蛋白质表达(E类)检测到。NF-kB磷酸化被归一化为总NF-kB表达。VEGFR2蛋白表达归一化为α-微管蛋白*P(P)< 0.05, **P(P)与对照组相比<0.01;#P(P)< 0.05,##P(P)与Ad-RGC32组相比<0.01(n个≥ 3).

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