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.2013年11月;13(6):705-20.
doi:10.1016/j.mito.2013年2月2日。 Epub 2013年2月21日。

秀丽隐杆线虫和哺乳动物的线粒体SIRT4型蛋白与丙酮酸羧化酶和其他乙酰化生物素依赖羧化酶类相互作用

附属机构

秀丽隐杆线虫和哺乳动物的线粒体SIRT4型蛋白与丙酮酸羧化酶和其他乙酰化生物素依赖羧化酶类相互作用

玛蒂娜·沃思等。 线粒体. 2013年11月.

摘要

SIRT4的生物和酶功能基本上没有特征。我们发现SIRT4的秀丽隐杆线虫SIR-2.2和SIR-2.3同源基因普遍表达,也定位于线粒体和氧化应激期间的功能。此外,我们确定了与线粒体生物素依赖性羧化酶(PC、PCC、MCCC)的保守相互作用,这些酶是补体和酮体形成的关键酶。羧化酶在多个赖氨酸残基上被乙酰化,对mPC的详细分析表明,其中一个残基K748ac可能调节酶的活性。然而,在功能性SIRT4过表达或缺失时,不能检测到mPC乙酰化水平和酶活性的变化。

关键词:生物素依赖性羧化酶;秀丽线虫;蛋白质乙酰化;丙酮酸羧化酶;SIRT4;Sirtuins公司。

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图1
图1。秀丽线虫SIR-2.2和SIR-2.3是线粒体蛋白质
(A) 和(B)代表性荧光共焦图像sir-2.2::gfp成人头部和性腺中SIR-2.2::GFP表达的转基因蠕虫秀丽线虫(C)和(D)SIR-2.3::GFP在成虫头部和性腺中的表达和定位。箭头指向头部不明细胞。(E) SIR-2.2::GFP和SIR-2.3::mCherry在双转基因小鼠头部的表达和定位sir-2.2::gfp;sir-2.3::麦克里蠕虫。比例尺表示50µm的放大倍数。(F) 使用抗SIR-2.2抗体对野生型N2蠕虫进行免疫金标记。(G) ●●●●。代表性冷冻切片sir-2.3::gfp抗GFP抗体染色的转基因蠕虫。用蛋白A结合的金珠(10 nm)观察免疫复合物。高密度黑点表明SIR-2.2和SIR-2.3定位于线粒体。比例尺表示放大200 nm。(H) 野生型N2蠕虫和sir-2.3::gfp转基因蠕虫被均质并通过差速离心进行亚细胞分离。使用所示抗体,通过SDS-PAGE和Western blotting分析核后上清液(PNS)、线粒体颗粒(MP)和线粒体后上清(PMS)的等蛋白量。
图2
图2。秀丽线虫SIR-2.2和/或SIR-2.3的过度表达或缺陷表明对氧化应激的敏感性增加
(A) 在含有百草枯的RNAi供料板上,计算出在24.5°C下生长的不同蠕虫的平均寿命(向板上添加200µl 250 mM百草枯溶液)。野生型(N2),蠕虫过度表达SIR-2.2(sir-2.2::gfp)或SIR-2.3(sir-2.3::gfp),中的蠕虫突变sir-2.2(sir-2.2(tm2648))sir-2.3(sir-2.3,ok444)被喂饱了大肠杆菌HT115(数据元素3)包含空L4440矢量(控制进给)。蠕虫突变体sir-2.2(sir-2.2(tm2648))被喂饱了大肠杆菌HT115(数据元素3)包含编码的质粒sir-2.3标准(sir-2.3标准喂食)和蠕虫突变sir-2.2(sir-2.2(tm2648))被喂饱了大肠杆菌HT115(数据元素3)包含编码的质粒sir-2.2标准(sir-2.2标准喂料)。每个菌株至少进行3次试验。误差条显示平均值的标准误差(S.E.M.);星号表示野生型(N2)蠕虫的平均寿命存在显著差异(p值<0.001);使用标准Student t检验计算p值;n: 分析的蠕虫数量。(B) (A)中分析的蠕虫菌株的平均存活曲线。(C) [NAD分析+]/野生型N2全虫裂解物中的[NADH]水平,sir-2.2::gfpsir-2.3::gfp过度表达的蠕虫。误差条表示平均值的标准误差;***与使用Student’st吨-测试。
图3
图3。线粒体生物素羧化酶作为SIR-2.2相互作用因子的鉴定
(A) 用于识别SIR-2.2交互伙伴的策略的示意图概述。在内源性启动子的控制下,产生了一个稳定的表达SIR-2.2并带有C末端Strep-GFP-tag的整合转基因蠕虫菌株,并用于提取物制备。GFP标记的SIR-2.2用抗GFP特异性抗体或来自总蠕虫提取物或线粒体蠕虫提取物的抗SIR-2.2特异性抗体免疫沉淀。分离的蛋白质进行SDS-PAGE并通过质谱分析。(B) 的蛋白质序列线虫D2023.2(PYC-1)。(C) 的蛋白质序列秀丽线虫F27D9.5(PCCA-1)。(D) F32B6.2(MCCC-1)的蛋白质序列。质谱分析确定的肽在蛋白质序列上突出显示。显示了总序列覆盖范围。
图4
图4。哺乳动物SIRT4与线粒体生物素依赖性羧化酶特异性相互作用
(A) 将编码SIR-2.2-GFP、SIR-2.3-GFP或GFP的表达载体与FLAG标记的表达载体共转染HEK293细胞秀丽线虫PCCA-1、MCCC-1或PYC-1或小鼠ACDH-3或HP1β。用GFP-TrapA免疫沉淀GFP标记蛋白,并使用抗FLAG、抗SIR-2.2和抗GFP抗体通过SDS-PAGE和Western blotting进行分析。一: 投入(2%);S: 免疫沉淀后上清液(2%);IP:免疫沉淀物质。(B) 与(A)中的分析类似,但使用编码小鼠SIRT4-GFP、PCCA-FLAG、MCCC1-FLAG和PC-FLAG以及GFP的载体。(C)人SIRT3、SIRT4、SIRT5和CDYL1c的表达载体(MYC-tagged)与编码小鼠PC、MCCC1、HP1βPCCA的表达载体共同转染HEK293细胞。用抗FLAG抗体免疫沉淀蛋白质,并用抗MYC和抗FLAG的抗体进行Western blotting分析(顶部)。用抗MYC抗体直接在Western blotting中分析细胞提取物(输入),以确定每个实验中标记蛋白的表达水平(底部)。
图5
图5。PC、PCCA和MCCC1的生物素羧化酶结构域特异性结合SIRT4
(A) 线粒体生物素羧化酶结构域组织的示意图。所有三种蛋白质都具有高度保守的N-末端生物素羧化酶结构域(BC)和C-末端生物素羧基载体蛋白结构域(BCCP)。括号表示为映射与SIRT4交互的区域而生成的删除构造。突变蛋白的结构域边界由氨基酸位置指示。分析与PC(B)、PCCA(C)和MCCC1(D)的相互作用。对于共免疫沉淀实验,指示的FLAG标记的生物素依赖性羧化酶的缺失构建体与人SIRT4-MYC一起在HEK293细胞中瞬时表达。将等量的免疫沉淀MYC标记的SIRT4加载到SDS-PAGE凝胶上,并使用抗FLAG和抗MYC抗体进行Western blotting分析(顶部)。用抗FLAG抗体直接在Western blotting中分析细胞提取物(输入),以确定每个实验中标记蛋白的表达水平(底部)。右侧显示了FLAG标记蛋白和抗体重链和轻链的运行位置。
图6
图6。PC乙酰化与SIRT4的相关性分析
(A) 将编码FLAG标记mPC、mPCCA和mMCCC1的表达载体或空载体(载体)转染HEK293细胞。用抗FLAG抗体从总细胞提取物中免疫沉淀蛋白质。显示了使用抗乙酰赖氨酸特异性抗体(AcK)和抗FLAG抗体对回收材料进行的蛋白质印迹分析。(B) 不同mPC-FLAG突变体在HEK293T细胞中过度表达的酶活性。使用柠檬酸合成酶偶联分析测定总细胞裂解物的丙酮酸羧化酶活性。丙酮酸通过PC的羧基化与草酰乙酸通过柠檬酸合成酶转化为柠檬酸偶联。通过测量405nm处吸光度的增加来记录生成的CoASH对DTNB的减少。根据mPC蛋白相对量的最大反应速度(ΔA/min)计算活性(通过Western blot分析定量)。相对活性(归一化为wt-mPC)表示为至少三个独立实验的方法。误差条表示标准偏差。(C) 使用SILAC对在诱导控制下单独或与SIRT4-MYC一起表达mPC-FLAG的HEK293细胞进行代谢标记。在抗FLAG免疫沉淀后,将从mPC-FLAG(在轻培养基中标记)和mPC-FLA、SIRT4-MYC(在重培养基中标识)细胞(左侧面板)或mPC-FFLAG(在轻型培养基中标签)和mPC-FLAG细胞(在重介质中标记)(右侧面板)中回收的材料混合,在SDS-PAGE上运行,并进行定量质谱分析。对从一个细胞标记实验的mPC中获得的经鉴定的乙酰化(红色)和非乙酰化(灰色)肽的标准化比率进行了印迹。
图7
图7。SIRT4不影响mPC的稳定性或酶活性
(A) mPC蛋白稳定性分析。用1µM TSA和10 mM NAM隔夜处理稳定诱导mPC-FLAG HEK293细胞或稳定过度表达人SIRT3-MYC或SIRT4-MYC的细胞。分别用环己酰亚胺(20μg/ml)和MG132(20μM)抑制蛋白质合成和蛋白酶体蛋白质降解6 h。用所示抗体通过Western blot分析细胞裂解物。(B)稳定诱导mPCFLAG HEK293细胞中的丙酮酸羧化酶活性,单独或稳定过度表达人SIRT3-MYC或SIRT4-MYC。对于葡萄糖饥饿(右图),细胞在无葡萄糖培养基中培养过夜。相关活动(在没有SIRT3或SIRT4的情况下归一化为mPC-FLAG)表示为至少三个实验的方法。误差线表示标准偏差。(C)野生型和SIRT4肝裂解物中mPC的酶活性−/−小鼠喂食(左)或禁食24小时(右)。相对活性(标准化为野生型)表示为每种条件下使用两只(喂食)至三只(禁食)小鼠进行的至少三个实验的平均值。误差线表示标准偏差。

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