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.2013年4月;9(4):550-67.
doi:10.4161/auto.23662。 Epub 2013年2月4日。

高渗应激促进自噬和微管依赖性自噬体簇

附属公司

高渗应激促进自噬和微管依赖性自噬体簇

保拉·奈斯等。 自噬. 2013年4月.

摘要

渗透稳态对大多数细胞来说是基本的,它们面临着环境渗透压的反复变化,从而挑战细胞的生存能力。蛋白质损伤是高渗应激的结果,但自噬是否有助于渗透压保护反应尚不清楚。在这里,我们研究了自噬和微管组织对高渗应激反应的可能影响。我们发现,高渗能快速诱导长寿命蛋白质降解、LC3-II生成和Ptdlns3K依赖性形成LC3-和ATG12-阳性斑点。溶酶体促生长剂氯喹和巴非霉素A 1,但没有营养剥夺或雷帕霉素治疗,进一步增加了LC3-II的生成,以及ATG12阳性斑点,表明高渗应激增加了自噬流量。高渗应激诱导自噬可提高细胞存活率,因为ATG12 siRNA介导的敲除可增加细胞死亡,而雷帕霉素可降低细胞死亡。我们还发现,高渗诱导了微管网络的快速重组,这与中心体微管的强烈重组和高尔基带的断裂有关。微管重构与与SQSTM1/p62和泛素共定位的ATG12阳性自溶体的中心体周聚集有关,表明高渗应激诱导的自噬至少具有部分选择性。高渗应激引起的有效自噬需要微管重塑,并且是DYNC/动力蛋白依赖性的,因为自噬体聚集通过紫杉醇诱导的微管稳定而增强,并通过诺可达唑诱导的微管蛋白解聚以及化学(EHNA)或遗传[DCTN2/动力蛋白2(p50)过表达]而减少DYNC活性的干扰。数据记录了一种迄今为止被忽视的普遍机制,其中自噬和微管重塑在渗透保护反应中发挥着重要作用。

关键词:ATG12;高尔基体;MAP1LC3/LC3;MAPRE1/EB1;MTOC;SQSTM1/p62;细胞凋亡;自噬;动力蛋白;溶酶体;微管;渗透胁迫;蛋白酶体;雷帕霉素;微管蛋白;泛素。

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数字

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图1。高渗应激增加自噬流量。(A类)LLC-PK的变化1连续暴露于等渗培养基或用NaCl(350和500 mOsmol/kg)激发的细胞中的细胞体积。黑色箭头表示细胞受到挑战的时间。细胞体积的一半最大恢复时间(Rv(v)t吨1/2)和稳态恢复体积(Rv(v)max)显示在右边。(B类)营养剥夺或NaCl-高浓度胁迫(500 mOsmol/kg)导致的蛋白质降解被量化为[【H】-缬氨酸在细胞培养基中释放。(C类)在营养靶细胞、NaCl激发的细胞或同时受到这两种刺激的细胞中,LC3-I转化为LC3-II。LC3-II水平的量化如右图所示。(D类)共聚焦z堆叠显示营养剥夺1小时或NaCl激发30分钟后ATG12阳性点状细胞数量增加。白色箭头描绘了NaCl挑战时的大型顶端颗粒。(E类)共焦z堆描绘了用NaCl(400 mOsmol/kg)攻击30分钟的原代人单核细胞和分化的巨噬细胞中形成核周ATG12阳性斑点(F类)左侧的免疫印迹描绘了用NaCl(500 mOsmol/kg)刺激30分钟、雷帕霉素(Rapa;200 nM)刺激24小时或雷帕霉素和NaCl刺激细胞后LC3-I转化为LC3-II的过程。右侧的免疫印迹描绘了用NaCl(500 mOsmol/kg)刺激90分钟、氯喹(100µM)刺激30分钟、巴非霉素A刺激的细胞中LC3-I转化为LC3-II的过程1(100 nM)刺激1小时,或先用NaCl刺激细胞,然后在剩余刺激时间内用溶酶体促生长剂刺激细胞。LC3-II水平的定量显示在免疫印迹下面。白条:10µm。
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图2。高渗应激诱导自噬有助于保护细胞免受死亡。(A类)用干扰siRNA或siRNA转染细胞ATG12型在量化细胞死亡之前,用NaCl(400或500 mOsm0l/kg)激发或不激发(Ctl)48小时。左侧的面板描述了典型流式细胞术实验的数据,细胞死亡在右上角以图形表示。右下角的图表描绘了转染siRNA的细胞释放LDH的增加ATG12型高渗应激48h(B类)相位对比显微镜显示转染siRNA的细胞空泡化和脱离增加ATG12型用高渗介质激发48h。(C类)在流式细胞仪分析细胞死亡之前,用雷帕霉素(200 nM)预处理或不预处理细胞(Ctl)24 h,然后用等渗或NaCl-高渗透培养基(600或700 mOsmol/kg)再激发48 h。细胞死亡在右侧以图形表示。(D类)在无雷帕霉素或有雷帕霉素的情况下,用等渗或高渗培养基激发细胞的相差显微镜观察。白条:10µm。
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图3。高渗应激诱导自溶体的核周聚集。(A类)共焦z堆叠描绘了随着时间的推移,通过NaCl激发(500 mOsmol/kg)形成ATG12-阳性斑点。他们的组成被双方废除ATG12型siRNA和LY-294002(5µM),并通过甘露醇(500 mOsmol/kg,30分钟)进行复制。粒子的尺寸分布如右图所示。(B类)免疫印迹显示,在受到NaCl(500 mOsmol/kg)攻击的细胞中,LC3-I随着时间的推移转化为LC3-II。LC3-II水平的量化如下所示。(C类)单帧共聚焦图像描绘了在不存在和存在氯喹(100µM)或巴非霉素A的情况下,NaCl激发(30分钟)后,ATG12与RFP标记的LAMP1在核周簇中共定位1(100 nM)。ATG12与LAMP1共同定位的百分比如下图所示。(D类)用NaCl刺激或不刺激细胞(Ctl)30分钟、雷帕霉素(200 nM)24小时、氯喹(100µM)6小时、巴非霉素A刺激或不攻击细胞(Ct1)中ATG12阳性点状物的共聚焦z堆叠1(100 nM)刺激1小时,MG132(10µM。(E类)ATG12阳性细胞点状点的顶部共焦z轴叠加由白色矩形勾勒(D类)如图所示。(F类)显示了z堆栈和顶点z堆栈中包含的粒子的大小分布和数量。顶点z堆栈的获取如所述材料和方法。白条:10µm。
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图4。高渗应激会增加选择性自噬。(A和B)描述ATG12与SQSTM1共定位的单帧共焦图像(A类)和泛素化蛋白(B类)NaCl激发后的核周簇(500 mOsmol/kg,30分钟)。白色箭头显示了显示良好协同本地化的区域示例。(C类)表中描述了ATG12和SQSTM1之间的共定位或核周簇中的泛素。(D类)免疫印迹显示,在NaCl激发30和60分钟后,SQSTM1表达降低。右侧显示了SQSTM1水平的量化。白条:10µm。
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图5。高渗应激改变MT动力学。(A类)在等渗条件下(−NaCl)或NaCl激发后(+NaCl,500 mOsmol/kg),每隔12秒在6分钟的时间内收集GFP标记的TUBA1B在活细胞基底区的旋转圆盘图像。每个延时帧都被分配了不同的颜色,所有30张图像都被叠加为一张图像。在等渗条件下,运动的纤维丝产生彩色图像,而在高渗条件下图像则少得多,说明纤维运动减少。顶部显示的是激发前300秒和12秒以及激发后12秒和2700秒相同细胞放大区域的单帧图像。视频S1描述了高渗激发时MT运动性降低。(B类)基础GFP标记的MAPRE1的旋转磁盘图像,显示在NaCl、紫杉醇(紫杉醇,10µM)或诺可唑(10µM)激发后,MT plus-ends释放MAPRE1。指示挑战后的时间(秒)。视频S2描述了高渗激发时MAPRE1的释放。(C类)在高渗激发(500 mOsmol/kg)或添加诺卡唑(10µM,10 min)或紫杉醇(10μM,10分钟)后,对GFP标记的TUBA1B聚合进行量化。量化图像的示例如图S3C所示。(D类)TUBA的共聚焦z堆栈显示了高渗激发、诺卡唑和紫杉醇(30分钟)引起的MT组织改变。(E类)左侧TUBA的共聚焦z堆栈显示了在等渗条件下(Ctl)和高渗激发后30分钟(NaCl,500 mOsmol/kg)的MT网络。白色箭头表示中心体MT通过高渗应力成核。TUBA(绿色)和TUBG(红色)的放大3D投影,中心体MTOC的标记,在底部描绘了中心体MT成核。视频S3中也显示了这一点。右侧的共聚焦图像显示了高渗激发30分钟(400 mOsmol/kg)后,人类原代单核细胞和分化的巨噬细胞中心体MT核化。显示了基底面和顶面的单帧图像,相对于它们与玻璃盖玻片的粘附,以及覆盖整个细胞的z堆叠。白条:10µm。
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图6。MT网络在高渗压力下重组。(A类)在等渗条件下(Ctl)或高渗激发30分钟后(500 mOsmol/kg),TUBA(绿色)与GOLGA2(顺-高尔基标记物)或TGOLN2(反-高尔基标志物)(红色)共聚焦z叠加。(B类)共聚焦z堆显示了等张条件下(Ctl)的基底GFP标记MAPRE1彗星,它们在NaCl激发2分钟(500 mOsmol/kg)后扩散,以及激发30分钟后顶端彗星的出现。下面显示的是由白色矩形勾勒的细胞基底、中段和顶端区域的单帧图像。(C类)在等渗条件下(Ctl)或NaCl激发30分钟后,GFP标记的MAPRE1(绿色)与GOLGA2或TUBG(中心体MTOC的标记物(红色)共聚焦z叠加。右侧显示的是GA和中心体所在的细胞中段和顶端区域的单帧图像。(D类)在等渗条件下(Ctl)或高渗激发30分钟后,TUBA(绿色)与ATG12或LysoTrackerRed共聚焦z叠加。白条:10µm。
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图7。MT网络和DYNC的重排是高渗应激引起核周自溶体积聚的必要条件。(A类)一种典型的免疫印迹描绘了在单独用NaCl(500 mOsmol/kg)激发30分钟、单独用诺卡唑(10µM)或紫杉醇(紫杉醇,10µM)激发45分钟、或首先用药物激发,然后在培养的最后30分钟内添加NaCl的细胞中LC3-I转化为LC3-II的过程。LC3-II水平的量化如右图所示。(B类)左侧的共聚焦z堆栈显示了受到NaCl、诺卡唑或紫杉醇攻击的细胞中ATG12阳性点状物,如(A类)或用EHNA(500µM)单独或在培养的最后30分钟内添加NaCl激发24小时。右侧的共聚焦z堆显示了用DCTN2或空载体转导的细胞中ATG12阳性点状突起,然后用NaCl激发或不激发30分钟(C类)ATG12阳性细胞点状点的顶部共焦z轴叠加由白色矩形勾勒(B类)如图所示。(D类)显示了z堆栈和顶点z堆栈中包含的粒子的大小分布和数量。顶点z堆栈的获取如所述材料和方法. (E类)在不存在或存在EHNA的情况下,用NaCl攻击的细胞中TUBA的共聚焦z堆叠。白条:10µm。

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