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.2012年12月27日;2(6):1684-96.
doi:10.1016/j.celrep.2012.10.021。 Epub 2012年11月29日。

FGF通过调控let-7 miRNA表达调节TGF-β信号转导和内皮-间充质转化

附属公司

FGF通过调控let-7 miRNA表达调节TGF-β信号转导和内皮-间充质转化

陈培余等。 单元格代表. .

摘要

维持正常的内皮功能对血管功能的各个方面都至关重要,但对其调节却知之甚少。在本研究中,我们表明,破坏内皮细胞的基线成纤维细胞生长因子(FGF)信号导致let-7 miRNA水平显著降低,进而增加转化生长因子(TGF)-β配体和受体的表达以及TGF-β信号的激活,导致内皮细胞向间充质细胞转化(Endo-MT)。我们还发现,Endo-MT是小鼠移植动脉病模型中新生内膜形成和人类移植损伤排斥反应的重要驱动因素。内皮细胞FGF信号输入的减少是由于FGF抵抗状态的出现,其特征是FGF信号级联关键成分的表达和激活的炎症依赖性减少。这些结果确立了FGF信号作为维持内皮细胞稳态的关键因素,并指出Endo-MT在血管病理学中的意外作用。

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数字

图1
图1。FRS2通过TGFβR1途径调节间充质标志物基因表达
(A) 对照组和FRS2击倒HUAEC的VE-钙粘附素(红色)和SM-钙蛋白(绿色)的免疫荧光染色。细胞核用TO-PRO-3(蓝色)进行复染。比例尺:50µm。(B) 对照组和FRS2击倒HUAEC的SMC标记物的免疫印迹。(C) 用流式细胞术分析对照组或FRS2敲低的HUAEC的CD31和Dil-acLDL。(D) 来自对照或FRS2敲除细胞的TGFβ家族基因的qPCR阵列mRNA表达谱。(E) 对照组和FRS2敲低HUAEC的TGFβRs及其下游靶基因表达的qRT-PCR分析。(与对照组相比,*p<0.05;***p<0.001)。β-actin用于标准化模板加载的可变性。(F) 对照组和FRS2击倒HUAEC的TGFβR1、Smad2、间充质细胞和内皮细胞标记物的免疫印迹。SM-calponin和间充质标志物纤维连接蛋白和波形蛋白表达的(G-I)qRT-PCR分析(**p<0.01;**p<0.001;NS:与对照组相比无显著性差异)。β-actin用于标准化模板加载的变异性。所示数据代表了四个独立实验(除了(D))。
图2
图2。FRS2击倒下调let-7家族
(A) 对照或FRS2敲除HUAEC用DMSO或10µg/ml放线菌素D(ActD)处理指定时间。然后用qRT-PCR测定TGFβR1的表达。18S rRNA用于标准化模板加载的变异性。(B) 对齐let-7βR1的3'UTR序列。(C) 使用实时PCR miRNA阵列和来自对照细胞或FRS2敲除细胞的cDNA评估miRNA表达谱。(D) 转Lin28的HUVEC中TGFβR1和SM-钙蛋白的qRT-PCR,let-7海绵表示或空向量。β-肌动蛋白用于标准化模板负载的可变性。(E) 对照组TGFβR1、p-Smad2、Smad2和FRS2的免疫印迹以及用let-7慢病毒。(F) 用qRT-PCR方法分析对照组和FRS2敲除的HUAEC中TGFβR1、TGFβ下游靶分子、平滑肌标志物和间充质标志物基因的表达let-7慢病毒(与对照组相比,*p<0.05;**p<0.01;**p<0.001)。β-actin用于标准化模板加载的变异性。所示数据(A和D–F)是三个独立实验的代表。(G) 小鼠静脉注射对照药物或胆固醇制剂安替戈米尔-let-7b/c(单次注射2mg/kg),6d时分离肝内皮细胞。的表达式let-7用qRT-PCR分析miRNAs。SNORD66用于标准化模板加载的变异性(***p<0.001;NS:与对照组相比不显著)。(H) 经对照或配方安替戈米治疗的小鼠肝内皮细胞中K-ras、N-ras、HMGA2、CDK6、CDC25A、TGFβR1和波形蛋白的基因表达水平-let-76天。β-actin用于标准化模板负荷的变异性(与对照组相比,*p<0.05;***p<0.001)。(一) CD31/波形蛋白的免疫荧光染色(细胞核用DAPI(蓝色,比例尺:7µm)复染),在用对照药物或配方安替戈米尔治疗的小鼠肝切片中-let-76天。(J) 注射对照或配方安替戈米尔的小鼠肝脏EC表达波形蛋白的定量-let-7(与对照组相比***p<0.001)。
图3
图3。炎症细胞因子(IFN-γ、TNF-α和IL-1β)下调FGF受体,从而使EC在体内外对FGF的反应降低
(A) 对照组和人IFN-γ处理的HUVEC中平滑肌和间充质标志物基因表达的qRT-PCR分析(与对照组相比*p<0.05;**p<0.01;***p<0.001)。β-actin用于标准化模板加载的可变性。(B) 对照组和人干扰素-γ治疗的HUVEC中平滑肌和间充质标记物的免疫印迹。(C) 用人干扰素-γ(10 ng/ml)、人TNF-α(10 ng/ml)或人IL-1β(10 ng/ml)在完全生长培养基中处理HUVEC 6天,然后在0.5%FBS饥饿培养基中培养18小时。用FGF2(50 ng/ml。FGF信号下游靶点的免疫印迹。(D) 成熟的qRT-PCR分析let-7对照组和人干扰素-γ处理的HUVEC中的表达。SNORD47用于标准化模板加载的可变性。所示数据(A–D)代表四个独立实验。(E) 左图:Cdh5-CreERT2中邻近主动脉和移植物切片中p-ERK的免疫荧光染色;mT/mG小鼠。比例尺:10µm。右:注射FGF2的小鼠内皮细胞表达p-ERK的定量(***p<0.001,与相邻主动脉相比)。
图4
图4。Endo-MT参与小鼠动脉硬化
(A) 通过抗Notch3、抗αSMA和抗胶原蛋白1免疫染色对动脉移植物进行组织学分析。Cdh5-GFP公司+/槽口3+(红色)和Cdh5-GFP+/α形状记忆合金+(红色)共定位表示Endo-MT,并显示为黄色。细胞核用DAPI(蓝色)复染。比例尺:Notch3和αSMA为10µm,胶原蛋白1为63µm。五十、 流明;N、 新生内膜;白色三角形表示内皮细胞;黄色三角形表示内部弹性层;箭头表示内皮细胞表达SMC标记物。(B) 缺口百分比3+(左)或αSMA+(右)Cdh5-GFP细胞+新生内膜(与对照组相比,p<0.05;p<0.01)。(C) Cdh5-GFP百分比+Notch3细胞+(左)或αSMA+(右)新生内膜(与对照组相比,**p<0.01)。(D) Cdh5-GFP的百分比+Notch3细胞+(左)或αSMA+(右)流明(与对照组相比,*p<0.05;**p<0.01;**p<0.001)。(E–F)通过计算机辅助显微镜对胶原1区域和动脉移植内膜厚度进行形态计量学评估(与对照组相比,*p<0.05;**p<0.01)。PBS(N=7只小鼠/组)、Luc对照(N=6只小鼠/组)、iEC-FRS2KO(N=4只小鼠/组)、安他戈米-let-7(N=9只小鼠/组),以及let-7b模拟(N=6只小鼠/组)。
图5
图5。Endo-MT参与人移植动脉硬化
(A–B)人类正常和慢性排斥反应人冠状动脉的CD31和Notch3免疫荧光染色的代表性图像。比例尺:62µm。L表示流明;白色三角形表示IEL(内部弹性板)。(C–D)人慢性排斥反应冠状动脉管腔和新生内膜EC的高倍图像,用Notch3染色共定位。比例尺:16µm。箭头表示内皮细胞表达SMC标记物。(E) CD31的百分比+Notch3细胞+管腔(与正常动脉相比,***p<0.001)。(F) CD31的百分比+Notch3细胞+新生内膜(Ø,未检出)。(G) 缺口百分比3+CD31细胞+新生内膜(Ø,未检出)。(H–I)人CD31和Notch3免疫荧光染色在SCID/米色小鼠中的人冠状动脉移植的代表性图像,用或不用人PBMC重建。比例尺:62µm。L表示流明;白色三角形表示IEL(内部弹性板)。(J–K)经人PBMC管腔和新生内膜EC处理的动脉移植物的高倍图像,用Notch3染色共定位。比例尺:16µm。箭头表示内皮细胞表达SMC标记物。(五十) CD31的百分比+Notch3细胞+流明(与无PBMC相比***p<0.001)。(M) CD31的百分比+Notch3细胞+新生内膜(Ø,未检出)。(N) 缺口3的百分比+CD31细胞+新生内膜(Ø,未检出)。
图6
图6。Endo-MT在股动脉钢丝损伤和静脉适应模型中的应用
(A) A–b:后肢血管解剖。蓝线表示内皮层剥落。A、 动脉;五、 静脉;星号表示导线插入的位置。c–d:未损伤(左)和损伤(右)股动脉的典型横截面图像。e–f:损伤3周后损伤股动脉切片中αSMA(红色)的免疫荧光染色。五十、 流明;N、 新生内膜;M、 媒体。(B) a:静脉-动脉移植示意图。b–c:下腔静脉低倍镜下CD31(红色)和αSMA(红色)的免疫荧光染色。d: 高倍放大下腔静脉αSMA(红色)的免疫荧光染色。e–f:低倍放大静脉移植物中CD31(红色)和αSMA(红色)的免疫荧光染色。g&i:移植后2周和4周静脉移植物的高倍放大CD31(红色)免疫荧光染色。h&j:移植后2周或4周静脉移植物高倍镜下αSMA(红色)的免疫荧光染色。
图7
图7。FGF依赖性调节TGFβ信号和Endo-MT的模式

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    1. Basile DP、Friedrich JL、Spahic J、Knipe N、Mang H、Leonard EC、Changizi-Ashtiyani S、Bacallao RL、Molitoris BA、Sutton TA。内皮细胞增殖和间充质转化受损导致急性肾损伤后血管稀疏。美国生理学杂志肾脏生理学。2011;300:F721–F733。-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Chang AC、Fu Y、Garside VC、Niessen K、Chang L、Fuller M、Setiadi M、Smrz J、Kyle A、Minchinton A、Marra M、Hoodless PA、Karasan A。Notch通过可溶性鸟苷酸环化酶的自分泌激活,启动房室管内皮-间充质转化。发育细胞。2011;21:288–300.-公共医学
    1. Chen PY,Simons M,Friesel R.FRS2通过成纤维细胞生长因子受体1参与血小板衍生生长因子受体β介导的血管平滑肌标记基因表达调控。生物化学杂志。2009;284:15980–15992.-项目管理咨询公司-公共医学
    1. Costa MA,Simon DI。再狭窄和药物洗脱支架的分子基础。循环。2005;111:2257–2273.-公共医学

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