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.2013年1月4日;288(1):355-67.
doi:10.1074/jbc。M112.405761。 Epub 2012年11月12日。

重新评估钙稳态内质网蛋白(CHERP)在细胞钙信号传导中的作用

附属公司

重新评估钙稳态内质网蛋白(CHERP)在细胞钙信号传导中的作用

亚平林莫舍等。 生物化学杂志. .

摘要

由内质网内细胞内Ca(2+)通道激活引起的细胞质Ca(2+)浓度的变化,调节细胞生长和分化的几个方面。Ca(2+)稳态内质网蛋白(CHERP)是一种广泛表达的蛋白质,被认为是内质网Ca(2+)通道、肌醇1,4,5-三磷酸受体(IP(3)Rs)和ryanodine受体(RyRs)两大家族的调节器,对有丝分裂循环产生影响。然而,CHERP调节细胞内Ca(2+)通道以影响细胞生长的方式尚不清楚。在这里,我们对之前的研究结果提出质疑,即CHERP作为IP(3)Rs和RyRs的直接细胞质调节器,并提出CHERP通过调节U2 snRNA剪接体复合体的功能,在细胞核中影响细胞增殖。因此,先前报道的CHERP对细胞生长的影响可能是剪接体功能改变的间接影响,这与先前的数据一致,即U2 snRNP组分的功能丧失可能会干扰细胞生长并诱导细胞周期阻滞。

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数字

图1。
图1。
抗CHERP抗体的验证。 A类,蛋白质印迹(工作分解结构)由HEK293细胞制备的WCL,在不存在CHERP抗体的情况下进行检测(左边)或存在碱性磷酸酶(AP公司,正确的). 斑点与抗肌动蛋白抗体共同孵育,作为负荷控制。B类,用于检测内源性和过表达CHERP构建体的HEK293 WCL样品的蛋白质印迹。用抗CHERP抗体检测样本(左边)然后用抗GFP抗体进行复制(正确的).实心箭头,GFP标记的CHERP;开箭头,内源性CHERP。C类用IgG免疫沉淀HEK293细胞制备的WCL样品的Western blot(抗CHERP)(左边)或CHERP抗体(正确的).D类,顶部双电荷单同位素前体615.316的代表性串联质谱/z(z)在CHERP序列中与肽ITADGAHFELR匹配,质量准确度为1.4 ppm,肽置信度为99%。理论b条-和-标记与实验产品离子峰匹配的类型片段离子类型(从ProteinPilot Viewer软件粘贴的光谱)。底部质谱检测121个独特肽的蛋白质覆盖率(54%)(下划线的序列),肽置信度≥95%。
图2。
图2。
内源性CHERP蛋白的核分布。 A、 顶部内源性CHERP的免疫细胞化学(红色)在HEK293中(左边)和SKBR3细胞(正确的). DAPI染色(蓝色)如所示中间面板,并作为合成合并图像(底部).B、,内源性CHERP的三重染色(红色),急诊室(绿色)、和细胞核(蓝色)在HEK293细胞中。C类、用抗CHERP抗体检测的指示细胞系制备的细胞质和核组分的Western blot(顶部)和核标记(CREB,底部).D、,骨骼内源性CHERP蛋白的免疫荧光染色(底部)和心肌细胞(顶部).E、,CHERP的免疫定位(红色),细胞核(蓝色)和类似ER(绿色)在大鼠心肌细胞中。F、,Western blots解析CHERP在心肌细胞和Jurkat细胞细胞质和核组分中的分布。G、,人工分离核中CHERP的Western blot爪蟾卵母细胞(共8个细胞核),与剩余细胞含量相比。图像显示孤立的细胞核(N个)在溶液中靠近一个完整的卵母细胞。A中,动物杆;V、,植物杆。
图3。
图3。
CHERP基因家族的生物信息学注释。 A类,的示意图智人CHERP结构(NP_006378.3)显示特征注释,包括SURP域(圆圈)、CID(灰色矩形),聚谷氨酰胺束(黑色条),精氨酸/丝氨酸(无线电)-富裕地区(深灰色矩形)、和G补丁域(梯形). 使用保守域搜索工具注释蛋白质域(38)。先前注释的跨膜区域(TM(TM))(8)如图所示在上面示意图,以及从PhosphoSite整理的发现模式质谱数据中确定的磷酸化位点(小圆圈). 预测NLS(星星)表示为NLS1(氨基酸726–742)、NLS2和-3(778–788/784–793)和NLS4(898–912)。B类,选定模型生物中假定CHERP同源物的系统发育树(BioNJ/TreeDyn)。CHERP的参考序列如下:智人(NP_006378.3),小家鼠(NP_613051.3),褐家鼠(XP_214307.2),Gallus胆囊(XP_001233544.1),达尼奥雷里奥(NP_956368.2),黑腹角鲨(第6部分,NP_001014589.1),以及秀丽隐杆线虫(标记65,NP_506386.1)。刻度表示支管长度。百分比定义了单个基因的氨基酸身份智人CHERP(NP_006378.3)。C、,上文定义的指定物种中CHERP蛋白的结构域概述。
图4。
图4。
活细胞中CHERP的共焦成像。 A中,CHERP(1–916)-GFP与DAPI复染(0.1μg/ml,1 min)在HEK293细胞中的共定位(顶部)和SKBR3细胞(底部).B类,CHERP(1-916)-GFP靶向HEK293和SKBR3细胞的核亚结构域。亚核密度突出显示(箭头).C、,低浓度HEK293细胞内源性CHERP的染色(左边)和高倍放大(正确的). 如图所示,细胞与SC-35和DAPI共同染色。D类是核下病灶中CHERP的一个耐洗涤剂部分。左侧用编码Myc-CHERP的构建物瞬时转染HeLa细胞的免疫荧光图像,并在固定前用0.2%Triton预先提取。赖特免疫荧光图像与同一细胞的相控图像叠加。E、,瞬时转染Myc-CHERP结构体HeLa细胞的免疫荧光图像(左边),内源性SC35共染色(中间的). 用洗涤剂预提取细胞后,显示出较大的CHERP病灶。覆盖(正确的)显示大多数但不是全部SC35-foci与CHERP foci重叠(白色箭头).限定在下部面板。F、,CHERP没有定位到Cajal尸体。下部(顶部)以及更高(底部)Myc-CHERP分布的免疫荧光图像(左边)和p80-coilin(中间的)在HeLa细胞中。合并的图像显示在正确的。G公司,用5,6-二氯-1-β处理的细胞-d日-呋喃核糖基苯并咪唑(DRB(争议评审委员会)) (100 μ与未经处理的细胞相比,显示与SC35共定位的CHERP病灶扩大(顶部).
图5。
图5。
CHERP截断突变体分析确定了负责核靶向的区域。 A中,CHERP截断变异体的示意图(图3中定义的符号A类). GFP部分没有用图形描述。B类,Western印迹(工作分解结构)由HEK293细胞制备的细胞质和核组分中,HEK292细胞转染了指示的CHERP截断突变体或GFP单独,并用GFP抗体检测(左边)或CREB抗体(正确的).C类共聚焦活细胞图像显示野生型CHERP(1–916)-GFP)(NH)的核定位2-末端截短突变体(CHERP(342–916)-GFP)和COOH末端截短突变体(CHERP(1–725)-GFP)。D类,HEK293细胞共转染CHERP(1-725)-GFP和DsRed2-ER的代表性共焦图像,随后用DAPI染色(蓝色).E、 顶部,代表性Western blot(GFP抗体),使用来自HEK293细胞的WCL样本(模拟转染转染指定结构)证实外源CHERP蛋白的表达。底部,NH系列示意图2-和CHERP的COOH末端截断突变体。F类,在HEK293细胞中表达的GFP标记CHERP截断结构的活细胞共焦图像。亲本GFP载体作为对照(GFP)。G、,共焦图像中CHERP结构分布的定量分析,在可比较的核和细胞质区域(*,< 0.01).
图6。
图6。
CHERP与核蛋白相互作用,包括SR140。 A类,基因本体注释(顶部、本地化;底部,功能)。B类,当几个质谱候选物的身份被提交到蛋白质相互作用组数据库时,预测了它们之间的关联(见“实验程序”)。联合免疫沉淀证实的相互作用如下所示黑线SF3B3是SF3B复合物中已知的合作伙伴,未在质谱数据集的最高严格级别进行鉴定,但在随后的免疫沉淀分析中进行了询问。C、,通过免疫共沉淀和蛋白质印迹对质谱候选物进行验证。左侧/中间的、蛋白质斑点(工作分解结构)用IgG免疫沉淀HEK293细胞制备的WCL样品(抗SR140和CHERP)(左车道)或CHERP抗体(右车道)如图所示。赖特,双荧光Western blot显示对照组和CHERP-GFP过度表达细胞中的CHERP和SR140抗体之间没有交叉反应。D、,SF3B3与CHERP的联合免疫沉淀。E类,代表性的Western blot结果显示CHERP(顶部)和SR140蛋白质水平(中间的)在模拟、扰乱和CHERP siRNA-转染的HEK293细胞中。β-肌动蛋白(ACTB公司)用作加载控件。F、,Western blotting结果的量化E类. *,<0.01,模拟和干扰siRNA与CHERP siRNA的比较;#,<0.01,模拟与干扰siRNA的比较。

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工具书类

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