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.2012年6月;23(12):2373-87.
doi:10.1091/mbc。E12-01-0060。 Epub 2012年4月25日。

Ras样蛋白R-Ras2/TC21对乳腺的正常发育很重要

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Ras样蛋白R-Ras2/TC21对乳腺的正常发育很重要

罗曼·拉里夫等。 分子生物学细胞. 2012年6月.

摘要

R-Ras2/TC21是一种与Ras亚家族成员具有高序列和信号相似性的GTPase。尽管已经使用细胞系中的过表达研究对其进行了广泛研究,但其生理作用的特征仍然很差。在这里,我们使用在内源性RRas2启动子调控下表达β-半乳糖苷酶的RRas2基因敲除小鼠来研究该GTPase在体内的功能。尽管RRas2(-/-)小鼠在组织中的表达对机体的生存能力至关重要,但在生存能力、生长速度、心血管参数或生育能力方面没有重大变化。相比之下,它们在青春期的乳腺发育中表现出明显而特殊的缺陷。在缺乏R-Ras2/TC21的情况下,该腺体形成的终末芽(TEB)和导管分支数量减少,导致乳腺脂肪垫中腺体树的延伸和树状化出现暂时延迟。这种表型与TEB中存在的上皮细胞的细胞自主增殖缺陷有关。这些细胞还显示Erk活化减少,但磷酸化Akt的野生型水平降低。使用化合物RRas2-、HRas-和NRas-敲除小鼠,我们证明这些GTPase在这一形态发生过程中以非协同和非加性方式发挥作用。

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图1:
图1:
RRas2型小鼠胚胎发育过程中的基因表达。(A–F)E10.5(A,B)、E11.5(C,D)和E13.5(E,F)的全贴装X-gal染色RRas2号机组+/−胚胎显示(蓝色)RRas2型基因。心脏(A–D,F)、指间区(F)和脊髓(E)分别用实心箭头、黑色箭头和开放箭头表示。比例尺,1 mm。(G,H)X-gal的矢状截面-染色E14.5(G)和E16.5(H)RRas2号机组/胚胎。比例尺,1 mm。在C–E中,头部区域的信号是由于X-gal染色的非特异性扩散所致。在G中,闭合箭头和开放箭头分别表示心室和心房。在H中,闭合箭头和开放箭头分别表示心室和肠道。黑色和白色箭头分别表示胸腺和肺。(I–L)X-gal/伊红染色E16.5中心脏(I)、胸腺(J)、肺(K)和肠(L)区域的放大RRas2号机组+/−胚胎。比例尺,50μm。E16.5的胸部(带[M,插图]或不带胸腺[M,主面板])和腹部(N)区域的(M,N)图像RRas2号机组/胚胎全部用X-gal染色。a、 主动脉;b、 膀胱;i、 肠;l、 肝脏;la,左心房;肺;左心室;pa,肺动脉;ra,右心房;rv,右心室;t、 胸腺。比例尺,500μm。
图2:
图2:
的表达式RRas2号机组成年小鼠组织中的基因。(A) 使用来自3个月大鼠指示组织(底部)的总RNA进行qRT-PCR分析RRas2号机组+/+鼠标。BAT,棕色脂肪组织;BG,球鼻腺;SSM,横纹肌;WAT,白色脂肪组织。表达式值是相对于RRas2型乳腺中的转录本(任意值为1)。考虑到内务管理的表达水平,对所有值进行了规范化Gapdh公司每个样本中的mRNA。a.u.,任意单位。(B–K)冷冻切片取自3个月大鼠的肺(B,C)、睾丸(D)、卵巢黄体(E)、白色脂肪组织(F)、心脏(G)、主动脉(H)、乳腺(I)、十二指肠(J)和膀胱(K)RRas2号机组+/小鼠进行X-gal染色(蓝色),并用曙红(紫色)进行复染。在B和C中,闭合箭头和星号分别表示平滑肌细胞和肺泡细胞。在C中,开放箭头表示分散的X-gal阳性上皮支气管细胞。在H中,闭合箭头和星号分别表示血管内皮细胞和平滑肌细胞。在I中,闭合的箭头表示肌上皮细胞的外导管层。在J和K中,闭合的箭头和星号分别表示上皮细胞和肌肉细胞层。比例尺,50μm。
图3:
图3:
R-Ras2/TC21调节青春期乳腺的适时发育。(A) 对从指定阶段提取的乳腺中获得的总RNA进行qRT-PCR分析。青春期前、青春期和成年处女对应于从3周、8周和14周龄的婴儿中采集的样本RRas2号机组+/+雌性小鼠。妊娠早期和晚期分别对应于怀孕1周和2½周内的雌性小鼠。分别于分娩后1周和2周采集早期和晚期泌乳样品。在断奶后3.5天采集退化期样本。数据是相对于处女成体状态下获得的表达水平给出的(任意值为1)。考虑到内务管理的表达水平,对所有值进行了规范化Gapdh公司每个样本中的mRNA*p≤0.05***p≤0.001(n=3)。(B) 从指定年龄(顶部)和基因型(左侧)的雌性小鼠获得的胭脂红明矾染色乳腺脂肪垫的代表性图像。比例尺,500μm。腹股沟淋巴结之一用白色星号表示。(C–F)从指定基因型和年龄的动物身上获得的乳腺总面积(C)、最大长度(D)、TEB数量(E)和分支点(F)的量化*与适当的野生型对照组获得的值相比,p≤0.05,**p≤0.01,***p≤0.001(n=每个基因型和发育阶段5-10只动物)。
图4:
图4:
R-Ras2/TC21缺陷小鼠乳腺的发育缺陷是由于MEC中固有的信号缺陷所致。(A) 所示基因型的受体雌性小鼠(左)原位移植原代乳腺上皮细胞后发育的乳腺代表性图像(上)。这些包括控制(左)和RRas2号机组/移植前用非编码慢病毒转导的(中间)细胞RRas2号机组/用编码人类R-RAS2/TC21蛋白的HA标记版本的慢病毒转导的细胞(右)。移植后7周,分离乳腺脂肪垫,用胭脂红明矾染色并拍照。比例尺,500μm。(B) A.*p≤0.05所述移植实验中乳腺所占总面积的量化**p≤0.01(n=5-8)。(C) 通过Western blot(WB)和HA抗体(top)分析所示乳腺上皮细胞培养物的总细胞提取物,以揭示异位HA-RAS2/TC21蛋白的表达。作为负荷对照,用微管蛋白α抗体对相同提取物进行免疫印迹(底部)。
图5:
图5:
R-Ras2/TC21在青春期乳腺发育期间与H-和N-Ras GTPase无重复和非加性作用。(A) 从指定年龄(顶部)和基因型(左侧)的雌性小鼠获得的胭脂红明矾染色乳腺脂肪垫的代表性图像。比例尺,500μm。(B–E)量化从指定基因型和年龄的动物获得的乳腺的总面积(B)、最大长度(C)、TEB数量(D)和分支点(E)*与适当的野生型对照组获得的值相比,p≤0.05,**p≤0.01,***p≤0.001(n=5-11只动物/基因型和发育阶段)。
图6:
图6:
的表达式RRas2号机组青春期乳腺中的基因。(A) 6周龄婴儿的乳腺切片RRas2号机组/雌性小鼠用X-gal(蓝色)和平滑肌细胞肌动蛋白抗体(棕色)染色,并用核固红(紫色)复染。左图为风管的代表性图像;中间和右边的两个不同方向的TEB。黑色箭头表示肌上皮细胞X-gal和平滑肌细胞肌动蛋白双重阳性。闭合箭头表示帽细胞X-gal和平滑肌细胞肌动蛋白双重阳性。打开的箭头可精确定位单个X-gal阳性体细胞。比例尺,50μm。(B) 指示的表达式Ras公司原代乳腺上皮细胞中的家族转录物来源于指定的基因型。数值是相对于野生型小鼠中每个转录物的表达水平给出的(任意值为1)。n=1个实验,一式三份。(C) Western blot分析显示内源性R-Ras2/TC21蛋白在原代乳腺上皮细胞中的表达(顶部)。作为负载对照,使用微管蛋白α抗体对相同提取物的等分试样进行免疫印迹分析(底部)。
图7:
图7:
青春期上皮细胞增殖减少和Erk激活RRas2号机组/乳腺。(A) 对所示基因型(顶部)的5周龄动物的乳腺进行切片,用平滑肌细胞肌动蛋白抗体(SMA,红色)染色,用4′,6′-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI,蓝色)孵育,并用免疫荧光显微镜进行分析。图片显示了TEB的代表性部分。大写单元格用开放箭头表示。比例尺,100μm。(B,C)使用Ki67抗体对所示基因型(top)的5周龄动物的乳腺进行免疫组织化学分析,并用标准光镜(B)进行分析,以量化TEB和周围基质中Ki67阳性细胞的数量(C)。比例尺,100μm**与适当的野生型对照相比,p≤0.01(n=6–8)。(D,E)对所述获得的乳腺进行TUNEL分析,并通过免疫荧光(D)进行分析,同时对TEB中出现的凋亡TUNEL阳性细胞数量进行量化(E)。比例尺,100μm。(F–I)用磷酸化Akt(F)或磷酸化Erk1/2(H)抗体对从所示基因型小鼠获得的乳腺进行免疫染色,以量化TEB和邻近基质中存在的磷酸化Akt阳性(G)和磷酸化Erk1/2阳性(I)细胞的百分比。p、 磷。G和H中的比例尺,100μm。在I中,***p≤0.001,与野生型小鼠的值相比(n=5)。
图8:
图8:
体外增殖缺陷RRas2号机组/初级乳腺上皮细胞。(A,B)使用标准细胞数(A)和BrdU掺入(B)测定实验测定指定基因型的原代乳腺上皮细胞的增殖***与对照细胞(n=3)中获得的值相比,p≤0.001。外径、光密度。(C) 原发性乳腺上皮细胞,来源于RRas2号机组/用空慢病毒转导小鼠(RRas2号机组/)或编码HA-RAS2/TC21蛋白的慢病毒(RRas2型/+RRAS2(RRAS2))以及使用BrdU掺入分析测定的增殖。作为对照,我们同时测定了模拟感染的野生型乳腺上皮细胞的增殖(RRas2号机组+/+). ***与模拟转导中获得的值相比,p≤0.001RRas2号机组/细胞(n=3)。(D,E)将所示的乳腺上皮细胞(顶部)嵌入Matrigel中,并在饥饿培养基(SM)或生长培养基(GM)中培养10天。在每个实验时间点,拍摄培养物(D),并测定形成的菌落体积(E),如材料和方法在D中,比例尺为50μm。在E中,与模拟感染相比,*p≤0.05和**p≤0.01RRas2号机组/细胞(n=3)。(F,G)所示基因型的乳腺上皮细胞(左)保存在含有饥饿培养基(F,左)、含有DMSO载体的生长培养基(F,中)或添加PD98059 MEK抑制剂的生长培养液(F,右)的Matrigel培养基中。10天后,对形成的菌落拍照(F)并测定其体积(G)。在F中,比例尺为50μm。在G中,***p≤0.001(n=3)。(H) Western blot分析显示在上述实验中使用的适当实验样品中异位HA-RRAS2/TC21蛋白的表达(顶部)。作为负荷控制,用微管蛋白α抗体对相同提取物的等分样品进行免疫印迹分析(底部)。

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