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.2012年2月28日;109(9):3576-81.
doi:10.1073/pnas.113409109。 Epub 2012年2月9日。

SWI2/SNF2染色质重塑ATP酶克服多梳阻遏并通过LEAFY和SEPALLATA3转录因子控制花器官的一致性

附属公司

SWI2/SNF2染色质重塑ATP酶克服多梳阻遏并通过LEAFY和SEPALLATA3转录因子控制花器官的一致性

吴敏凤等。 美国国家科学院程序. .

摘要

花器官的图案由四类同源调节器精细控制和执行。其中,B类和C类花的同源调节物至关重要,因为它们规定了雄性和雌性生殖器官。B类基因APETALA3(AP3)和C类基因AGAMOUS(AG)的不适当诱导导致生殖适应性降低,并通过多梳抑制加以阻止。在花样形成开始时,需要克服多梳抑制,以诱导AP3和AG并形成生殖器官。我们发现,SWI2/SNF2染色质重塑ATP酶SPLAYED(SYD)和BRAHMA(BRM)是花型形成和AP3和AG激活所必需的冗余酶。SWI2/SNF2 ATP酶在花发育过程中被招募到AP3和AG的调节区域,并与B类和C类基因表达的两个直接转录激活物LEAFY(LFY)和SEPALLATA3(SEP3)进行物理相互作用。在花型形成过程中,SYD和LFY与AP3和AG调节基因座的关联同时达到峰值,并且在LFY和LFY-sep3突变体中,与这些基因座的SYD结合受到影响。这表明SWI2/SNF2 ATP酶在正确的阶段和正确的细胞中募集到这些位点的机制。SYD和BRM作为三胸蛋白,卷曲叶(clf)突变体中对SYD和BRM的需求可以通过polycomb活性的部分丧失来克服,这表明SWI2/SNF2染色质重塑物逆转了polycomb抑制。

PubMed免责声明

利益冲突声明

作者声明没有利益冲突。

数字

图1。
图1。
SYD和BRM是正确的花同源基因表达所必需的。(A类)brm-101型增强lfy-5型花同源异型缺陷。(比例尺:1 mm。)(B类)A类、B类、C类和E类花同源异型基因表达的qRT-PCR分析syd-2 lfy-5型brm-101 lfy-5型双突变体相对于lfy-5型单突变体花序。所示为平均值±SEM(C类)原位杂交AP3(AP3)AG公司在第三阶段花中的表达lfy-5型,syd-2 lfy-5型、和brm-101 lfy-5型突变体(比例尺:30μm)。
图2。
图2。
需要SYD和BRMAG公司AP3(AP3)归纳。(A类)同源缺陷雪梨-2,syd-2 pLFY::aMIRBRM、和pLFY::aMIRBRM花和C类图案缺陷的修复syd-2 pLFY::aMIRBRM通过第35S页:AG(比例尺:0.5 mm。)(B类)原位杂交AG公司(上部面板)和AP3型(下部面板)在第3阶段表达野生型和syd-2 pLFY::aMIRBRM花。(比例尺:30μm)
图3。
图3。
招募SYD和BRMAP3(AP3)AG公司基因座。(A类D类)同步花诱导系统(ap1 cal 35S::ap1-GR) (39). (A类)LFY公司,AG公司、和AP3(AP3)模拟处理或地塞米松处理(dex;1μM)中的表达ap1-1 cal-1 p35S::ap1-GR花序诱导后1或2天。(B类D类)使用抗LFY的ChIP分析(B类),反SYD(C类)和抗BRM抗体(D类)英寸ap1-1 cal-1 p35S::ap1-GR花序被视为A类. (E类)的示意图AG公司AP3(AP3)基因组区域。线条、灰色方框和黑色方框分别表示非编码区域、未翻译区域和翻译区域。箭头表示转录的方向。(下部)在ChIP qPCR中扩增的区域,包括已知的LFY结合区域AP3(AP3)启动子(pAP3)和AG公司内含子(AGi2)(19)。
图4。
图4。
LFY与SYD和BRM进行物理交互(A类)GFP-LFY(41)已知翻译报告子的表达,以及新生成的SWI2/SNF2报告子(GFP-SYD和BRM-GFP;参见SI材料和方法详细信息)。箭头指向第三阶段的花朵。(B类)LFY和[35S] 通过体外GST下拉分析确定SYD或BRM(SYDN或BRMN)的蛋氨酸标记的N末端结构域(顶部). GUS蛋白作为阴性对照。(底部)GST或GST融合蛋白水平。(赖特)近似分子质量,单位为千道尔顿。(C类)在工厂通过BiFC实现LFY与SYDN或BRMN之间的相互作用。(左侧)转化细胞表达p35S:2毫米樱桃色. (赖特)交互测试。SWI3C和一个无关核蛋白分别作为阳性和阴性对照(参见SI材料和方法详细信息)。(D类)两种独立的核裂解物的免疫沉淀ap1-1 cal-1 p35S::ap1-GR pSYD::GFP-SYD小鼠抗GFP抗体转基因株系(A和B系)。用兔抗LFY抗体通过Western blot检测免疫沉淀复合物(“IP”)、无抗体对照物(“no AB”)和核裂解物(“input”)中的LFY蛋白。星号表示IP和对照样品中存在非特异性带。(E类)野生型抗-SYD ChIP(WT),lfy-6型,或syd-2型花序。区域放大AP3(AP3)AG公司位点如图3所示。技术顾问3逆转录转座子基因座。显示平均值±SEM。
图5。
图5。
SEP3可能有助于SYD招募。(A类)单突变体和双突变体中的花同源异型缺陷。比较syd-2 lfy-6型,brm-101 lfy-6型、和ap1-1 lfy-6号机组lfy-6型lfy-1 9月3日至2日lfy-1。lfy-1型属于哥伦比亚生态型9月3日至2日,携带与lfy公司-6.(比例尺:0.5 mm。)(B类)原位杂交AG公司AP3(AP3)在第3阶段野生型中表达(哥伦比亚),lfy-1型、和lfy-1 9月3日至2日花原基。(比例尺:30μm)(C类)使用GST-SEP3和体外翻译放射性标记的SYDN、BRMN或GUS进行GST下拉分析。相关带用星号标记。分子质量在右边以千道尔顿表示。(D类)SEP3和SYDN或BRMN的BiFC实验(左侧)转换控制(p35S::2毫米樱桃色). (赖特)同一细胞中的YFP荧光。箭头指向原子核。(E类)野生型抗-SYD ChIP(WT;哥伦比亚),lfy-1型、和lfy-1 9月3日至2日花序标准化如图4所示D类.在AP3型AG公司基因座如图3所示。所示为平均值±SEM。
图6。
图6。
SWI2/SNF2 ATP酶和多梳阻遏物之间的相互拮抗。(A类)CLF活动损失氯氟化物-2null突变体修复了syd-2 pLFY::aMIRBRM鲜花和救援AP3(AP3)AG公司第3阶段的表达clf-2系统-2 pLFY::aMIRBRM花原基。(比例尺:花为0.5 mm,截面为30μm)(B类)的qRT-PCRAG公司AP3(AP3)28日龄时的表达syd-2 pLFY::aMIRBRMclf-2 syd-2 pLFY::aMIRBRM花序。(C类)SYD活性丧失syd-2型null突变体恢复叶身份clf-2型突变体。图中显示了23年生植物的玫瑰花叶。(比例尺:0.5厘米。)(D类)的qRT-PCRAG公司AP3(AP3)在13日龄野生型(L。),氯氟化物-2,syd-2型、和clf-2系统-2幼苗。误差条代表SEM(E类)野生型中普遍存在的组蛋白修饰,第2类,syd-2型、和clf-2系统-2幼苗。进行抗H3K4me3和H3K27me3 ChIP试验。对于的地图AP3(AP3)AG公司扩增的位点和区域,见图3E类. (F类)的模型AP3(AP3)AG公司诱导和逆转多梳抑制。在幼苗和叶片以及花的非表达组织(OFF状态)中,存在以下修饰或蛋白质:PRC1和PRC2,高水平H3K27me3(红星)和低水平H3K4(绿星)(本研究)(10、11、18、46、51、52)。两种TrxG蛋白,PKL和ATX1,也被认为在此时存在,而第三种(ULT1)的占有率未知(-18)。花同源异型基因激活(ON状态)需要LFY、SEP3和可能的附加转录因子(TF),这些转录因子将SYD和BRM招募到AP3(AP3)AG公司(本研究)。ULT1(18)和其他染色质因子(CHR)也可能在此时被募集。此外,LFY直接抑制推定PRC1复合物成分EMF1(7)的表达(19)。联合活动导致PRC2、H3K27me3和PRC1的损失,并导致H3K4me3的积累(本研究)(-19、46)。

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