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.2011年10月;31(19):4107-18.
doi:10.1128/MCB.05546-11。 Epub 2011年8月1日。

人类CABIN1是人类HIRA/UBN1/ASF1a组蛋白H3.3伴侣复合物的功能成员

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人类CABIN1是人类HIRA/UBN1/ASF1a组蛋白H3.3伴侣复合物的功能成员

Taranjit Singh Rai公司等。 分子细胞生物学. 2011年10月.

摘要

哺乳动物HIRA/UBN1/ASF1a复合体是一种组蛋白伴侣复合体,从酵母(酿酒酵母)保存到人类。这种复合物以DNA复制无关的方式优先将组蛋白变体H3.3沉积到染色质中,并与从基因激活到异染色质化的各种染色质调节事件有关。在酵母中,同源复合物由三种Hir蛋白(Hir1p、Hir2p和Hir3p)、Hpc2p和Asf1p组成。酵母Hir3p与人类复合体的第四个成员CABIN1具有弱同源性,表明Hir3p和CABIN1可能是同源基因。在这里,我们显示HIRA和CABIN1在细胞内异位和内源性表达水平上相互作用,并且我们分离出由重组蛋白组装的四元HIRA/UBN1/CABIN1/ASF1a(HUCA)复合物。突变分析支持HIRA作为支架将UBN1、ASF1a和CABIN1组合成四元复合体的观点。我们表明,与HIRA、UBN1和ASF1a一样,CABIN1参与衰老人类细胞基因组的异染色质化。此外,在增殖细胞中,HIRA和CABIN1调节重叠的基因集,这些基因富含组蛋白变体H3.3。总之,这些数据表明CABIN1是人类HUCA复合体的功能成员,也是酵母Hir3p的可能同源物。

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图1。
图1。
HIRA、UBN1和CABIN1的物理相互作用。(A) CABIN1和酿酒酵母Hir3p的比对示意图显示了保守的N末端TPR。(B) 通过与抗HA抗体共免疫沉淀(IP)检测外源性表达的HA-HIRA和myc-CABIN1相互作用。(C) siRNA介导的内源性HIRA和CABIN1的敲除证实了HIRA和CABIN1抗体的特异性。(D) siRNA介导的内源性CABIN1的敲除通过免疫荧光证实了CABIN1抗体的特异性。(E) 通过与HIRA抗体(WC15和D32)和CABIN1抗体(ab3349)共免疫沉淀检测骨肉瘤细胞(U2OS)和原代成纤维细胞(IMR90)中内源性HIRA和CABIN1的相互作用。分别使用抗鼠IgG(Anti-myc 9E10;Santa Cruz)和抗兔Ig G(M7023;Sigma)作为小鼠和兔抗体的对照IgG。(F) 内源性UBN1和CABIN1的相互作用,通过与CABIN1抗体(ab3349)共免疫沉淀检测。
图2。
图2。
HIRA上CABIN1交互域的映射。(A) 用所示质粒瞬时转染U2OS细胞,并用抗HA免疫沉淀(IP)。车道1,模拟;车道2,野生型HA-HIRA和野生型myc-CABIN1;泳道3,仅野生型HA-HIRA;泳道4,仅野生型myc-CABIN1;泳道5至8,野生型myc-CABIN1和指示的HA-HIRA突变体[泳道5,HA-HIRA(del 439-475);泳道6,HA-HIRA(del 520-1017);泳道7,HA-HIRA(421-729);泳道8,HA-HIRA(1-600)]。示意图的颜色编码如下:黄色条,WD40重复;红色条,B域;蓝色方框,C域。抗体。(B) 用所示质粒瞬时转染U2OS细胞,并用抗HA免疫沉淀。车道1,模拟;车道2、野生型myc-CABIN1和野生型HA-HIRA;3号车道,野生型myc-CABIN1和HA-HIRA(del737-963);车道4,野生型myc-ASF1a和野生型HA-HIRA;车道5,野生型myc-ASF1a和HA-HIRA(del737-963)。示意图的颜色编码如图A所示。(C)昆虫Sf9细胞被编码所示蛋白的杆状病毒感染,并通过反标记亲和层析纯化复合物。所示为重组蛋白的考马斯蓝(R250)染色。通道对应于以下蛋白质:1,flag-UBN1;2、国旗-UBN1和他的——HIRA;3,国旗-UBN1,他的——HIRA和GST-ASF1a;4,旗-UBN1,他的——HIRA、GST-ASF1a和myc-CABIN1;5,国旗-UBN1,他的——HIRA和myc-CABIN1;6、标志-UBN1、HIRA(1-405)和myc-CABIN1。(D) 使用面板C的输入裂解物(IN)、柱流通(FT)和洗脱物(E)的指示抗体进行Western blot分析。
图3。
图3。
CABIN1上HIRA交互域的映射。(A) 用所示质粒瞬时转染U2OS细胞,并用抗myc免疫沉淀。车道1、野生型myc-CABIN1和野生型HA-HIRA;车道2,野生型myc-CABIN1;3号车道,野生型HA-HIRA;车道4,myc-CABIN1(1-941)和野生型HA-HIRA;车道5,myc-CABIN1(942-2220)和野生型HA-HIRA;车道6,myc-CABIN1(401-2220)和野生型HA-HIRA。(B) 用编码His-HIRA、GST-UBN1(1-175)和Flag-ASF1a的杆状病毒感染昆虫Sf9细胞,通过镍亲和层析纯化重组复合物。图中显示的是重组蛋白的考马斯蓝(R250)染色。(C) 来自具有指示抗体的组B的复合物的蛋白质印迹。(D) 如图所示,将来自B组的三聚蛋白复合物与来自用野生型myc-CABIN1、myc-CABIN1(1-941)或myc-CABIN1(1-400)转染的U2OS细胞的裂解物孵育。如图所示,结合蛋白被免疫印迹。(E) 基于本文报道的结合研究和先前发表的文献的HUCA复合体示意图。
图4。
图4。
CABIN1调节衰老。(A) 对PD30和PD88 IMR90成纤维细胞进行衰老标记物、SAβ-Gal和SAHF染色。(B) 对A组细胞表达SAβ-Gal、cyclin A、SAHF、HIRA病灶和CABIN1病灶的细胞百分比进行评分。数值为三个独立实验的平均值(SEM)的平均值±标准误差。(C) A组的细胞用HIRA、PML小体和CABIN1抗体染色,用DAPI染色以显示SAHF。(D) 沿着穿过CABIN1/PML焦点的直线,DAPI、PML体和CABIN1荧光的相对强度。(E) Western blot显示IMR90细胞中致癌H-RasG12V的表达。(F) H-RasG12V表达细胞经PML小体抗体CABIN1和DAPI(4′,6-二氨基-2-苯基吲哚)染色。(G) 用pLXSN或pLXSN-myc-CABIN1感染IMR90细胞,用所示抗体对裂解产物进行蛋白质印迹。(H) 对G组的细胞进行SAβ-Gal、cyclin A、HIRA病灶和SAHF评分。数值为三个独立实验的平均值±SEM。(一) G组细胞染色检测SAβ-Gal,DAPI检测SAHF。
图5。
图5。
HIRA和CABIN1调节重叠的基因集。(A) 如图所示,用siRNAs对HeLa细胞进行HIRA、CABIN1或非靶向(NTG)对照的核感染。用Smartpool siRNAs对HIRA或CABIN1进行三次独立的核感染。对裂解液进行Western blot检测HIRA、CABIN1和β-actin,如图所示。(B) 饼图显示HIRA或CABIN1击倒后探针显著上调和下调。绿色表示上调探头,红色表示下调探头。(C) qRT-PCR分析以确认siHIRA敲除后微阵列检测到的表达变化。折叠变化是通过将siHIRA细胞中的归一化(到看家基因)表达除以siNTG细胞中的规范化(到看家基因)表示来计算的。*,P(P)> 0.05.P(P)其余9个基因均<0.05。数值为四个独立实验的平均值±SEM。(D) 表中显示了HIRA和CABIN1击倒后更换探针的重叠。(E) 热图显示了在三次独立的siHIRA或siCABIN1基因敲除后表达发生变化的基因的层次聚类,与三次独立siNTG核感染相比。绿色表示上调探头,红色表示下调探头。(F) 将来自HeLa细胞的超声染色质与GFP或HIRA抗体进行免疫沉淀,并通过qPCR检测所指示的靶基因。在HIRA敲低时,HPD和MALL的表达增加,而所有其他的表达减少。从倍数变化(FC)>1.2倍的基因列表中随机选择基因P(P)<0.05来自siHIRA敲除细胞。数值为三个独立ChIP实验的平均值±SEM。P(P)所有比较均<0.05。
图6。
图6。
HIRA激活的基因富含组蛋白H3.3。(A) 热图显示HIRA或CABIN1敲除后相对于siNTG的折叠变化排序的基因H3.3富集,以及两个独立敲除后相对siNTG平均折叠变化。轴,基因按折叠变化排序;x个轴,沿着基因的位置显示在从基因上游5kb到转录起始位点(TSS)的1-kb窗口中,以及从基因下游5kb的转录终止位点(TES)的1kb窗口。在基因体中,使用了基因长度5%的窗口。(B) 组蛋白H3.3在三类基因上的平均富集,根据它们对HIRA敲除的反应来定义。x个轴,沿着基因在1-kb窗口中的位置,从基因上游5kb到转录起始位点(TSS),以及从TES到基因下游5kb的1-kb窗。在基因体中,使用了基因长度5%的窗口。(C) 组蛋白H3.3在三类基因上的平均富集,根据它们对CABIN1敲除的反应来定义。结果的颜色编码如面板B所示。(D)组蛋白H3.3在三类基因上的平均富集,根据它们对HIRA和CABIN1敲除的平均反应来定义。结果的颜色编码如面板B所示。

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