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.2011年8月;39(15):6369-79.
doi:10.1093/nar/gkr255。 Epub 2011年4月22日。

Gcn5促进波姆裂殖酵母Pol II的进展,而不是向核小体缺失的应激启动子募集

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Gcn5促进波姆裂殖酵母Pol II的进展,而不是向核小体缺失的应激启动子募集

米里亚姆·桑索等。 核酸研究. 2011年8月.

摘要

在裂变酵母中,MAP激酶Sty1和转录因子Atf1调节多达400个基因以响应环境信号,并且这两种蛋白质都被证明以压力依赖的方式与它们的启动子结合。在基因搜索中,我们分离出了组蛋白H3乙酰转移酶Gcn5,它是SAGA复合物的一种成分,对氧化应激生存和这些基因的激活至关重要。应激时,Gcn5以Sty1和Atf1依赖的方式被招募到应激基因的启动子和编码序列中,导致组蛋白H3的乙酰化增强和核小体驱逐。出乎意料的是,RNA聚合酶II(Pol II)在Δgcn5细胞中的募集没有受到损害。我们在这里显示,即使在激活之前,应激基因在转录起始位点上游也显示出一个400-bp长的核小体亏损区域。应激处理不会改变启动子核小体结构,但诱导应激基因下游核小体的驱逐,这在Δgcn5细胞中未观察到。我们的结论是,虽然Pol II以转录因子依赖的方式被招募到无核小体应激启动子中,但Gcn5介导位于启动子下游的核小体的驱逐,从而使Pol II沿着基因高效地进行。

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图1。
图1。
Gcn5对Sty1-、Atf1-依赖应力响应的激活至关重要。(A类)Δgcn5SAGA复合物的菌株和其他突变体对氧化应激敏感。菌株972(WT)、AV18培养物的系列稀释液(Δsty1),MS161(Δgcn5),MS183(Δada2),毫米184(Δspt8),Δhfi1,Δspt20Δspt7被发现在富有的盘子上(YE + 毫米高2O(运行)2; 是的 + 5毫米高2O(运行)2)或不使用(YE)指示的H浓度2O(运行)2. (B)赖氨酸9和14组蛋白H3乙酰化的总水平取决于Gcn5。菌株972(WT)和MS112的蛋白质提取物(Δgcn5)用乙酰化H3K9/14或总H3抗体进行western blot分析,作为负荷对照。(C类)野生型和Δgcn5细胞。菌株972(WT)、AV18的培养(Δsty1)和MS112(Δgcn5)用1个毫米高2O(运行)2对于所指示的时间。用探针northern blot分析总RNAgpd1、ctt1、hsp9,或srx1型rRNA显示为负载对照。
图2。
图2。
Gcn5被招募用于应激基因并促进组蛋白H3乙酰化和核小体驱逐。(A类)Gcn5以依赖Atf1的方式与应激促进剂物理结合。HMP47菌株的培养(gcn5-HAWT)和MS176(gcn5-HAΔatf1)用1治疗(+)或不治疗(−)毫米高2O(运行)2用于15使用仅覆盖启动子区域的引物,使用抗HA抗体进行最小ChIP实验,并通过实时PCR进行定量(gpd1、ctt1、hsp9srx1型发起人;或启动子(prom)、编码(ORF)和终止(术语)序列ctt1型基因(右侧面板)。基因间区域的引物被用作阴性对照(对照)。所有ChIP实验的误差线(SEM)均根据生物三倍体计算得出。野生型细胞应激前后Gcn5-HA与ORF结合的显著差异由学生的t吨-测试(*P(P)<0.05). (B)Gcn5在应激依赖基因的启动子和编码区的应激作用下促进组蛋白H3乙酰化。菌株972(WT)和MS112的培养(Δgcn5)用1治疗(+)或不治疗(−)毫米高2O(运行)2用于15如A所述,使用组蛋白H3(H3Ac)乙酰化赖氨酸9和14特异性抗体或针对未修饰的H3(F3)C末端结构域特异性抗体进行最小ChIP分析。乙酰化H3的免疫沉淀与总H3的百分比显示(%IP H3Ac/H3)。野生型与Δgcn5压力下ORF处的细胞由学生的t吨-测试(*P(P)<0.05). (C类)Gcn5促进H3水平降低,作为应激基因核小体驱逐的指示。图2B中的相同实验表示为总H3的免疫沉淀百分比(IP总H3百分比)。
图3。
图3。
缺乏Gcn5几乎不影响应激启动子处启动前复合物的形成,但严重损害Pol II的进展。(A类)在缺乏Gcn5的细胞中,Pol II向启动子的募集并没有缺陷。菌株393(tbp1-HA(待定)WT)和MS194(tbp1-HAΔgcn5),表达Tbp1-HA,培养并用1毫米高2O(运行)2用于15如图2A所示,使用启动子区域的引物进行最小ChIP实验。(B)在缺乏Gcn5的细胞中,Pol II对编码序列的募集受到显著影响。菌株CN011(rpb1-HA型WT)和MS52(rpb1-HAΔgcn5)培养并用1处理(+)或不处理(−)毫米高2O(运行)2用于15最小ChIP实验如图2A所示。野生型与Δgcn5ORF和终止(终末)位点的细胞在应激后由学生的t吨-测试(*P(P)<0.05). (C类)大Pol II亚基Rpb1的CTD的Ser5磷酸化。菌株972(WT)和MS161(Δgcn5)培养并用1处理(+)或不处理(−)毫米高2O(运行)2用于15如图2A所示,对磷酸化Ser5(Ser5-CTD)的特定抗体进行了最小ChIP实验。(D类)大的Pol II亚基Rpb1在CTD的Ser2处的磷酸化。菌株972(WT)和MS112(Δgcn5)培养并用1处理(+)或不处理(−)毫米高2O(运行)2用于15如图2A所示,对磷酸化Ser2(Ser2-CTD)的特定抗体进行了最小ChIP实验。野生型与Δgcn5压力下终止(足月)部位的细胞由学生的t吨-测试(*P(P)<0.05). (E类)大Pol II亚基Rpb1的CTD的Ser5磷酸化。应变和条件如(C)所示,但分析启动子处的Ser5占用情况(左侧面板)。右侧面板:与左侧面板相同的实验表示为Ser5磷酸化Rpb1-HA的免疫沉淀与总Rpb1-HA的百分比(%IP Ser5-CTD/Pol II)。
图4。
图4。
Pol II沿着ctt1型(A类)和gpd1号机组(B)基因:Gcn5介导启动子逃逸。菌株CN011(rpb1-HA型)和MS52(rpb1 HAΔgcn5)表达大分子Pol II亚单位Rpb1-HA,培养并用1毫米高2O(运行)2在图中以秒为单位的时间点。如图2A所示,使用抗HA抗体进行ChIP实验。
图5。
图5。
CESR基因的启动子核小体特征。(A类)五个大核小体亏损区S.pombe公司基因激活前的CESR启动子。包含CESR基因的基因组区域的核小体定位gpd1、ctt1、hsp9、srx1在f1。条纹和白色矩形分别表示未翻译和ORF。显示转录起始位点(黑色箭头)和NDR大小(粗条)。核小体以灰色椭圆形表示。数据来自全基因组核小体定位分析(40)和已发表的转录起始位点(50)。(B)50个基因中35个在氧化应激下表现出最高过表达的基因的核小体占用情况重叠(补充表S1). 单个基因的核小体图谱是在没有H的情况下确定的2O(运行)2.沿着基因组区域−500至+500平铺微阵列信号在平均35个基因的每个位置之前,插入每个基因(40)相对于TSS的bp。核小体占有率表示对数2单核小体与裸基因组DNA信号的比率。
图6。
图6。
CESR基因的核小体扫描分析显示氧化应激后Gcn5依赖+1核小体驱逐。从菌株972(野生型,左图)和HU799的培养物中分离出单核小体(Δgcn5,右面板)之前(闭合圆,连续线)和之后(开放圆,虚线)2最小值为1毫米高2O(运行)2qPCR使用15对重叠引物对沿着1.15或1.0进行kb,覆盖启动子、TSS(黑色箭头)和编码区(白色矩形)ctt1型(A类)或gpd1号机组(B)基因。误差条(SEM)由生物三重组(A)或重复组(B)计算。核小体以灰色椭圆形表示,其颜色强度与占用水平成正比。
图7。
图7。
描述Gcn5在两种酵母中的转录促进作用的方案。酿酒酵母,Gcn5被要求促进信号依赖性核小体在电话84启动子(40)。SAGA也被招募到CTT1型启动子在热休克后,其核小体结构也发生改变(51-53)。相反S.pombe公司Gcn5依赖的CESR基因(例如ctt1型)在基础条件下没有核小体,因此,在信号激活时只需要清除下游核小体。

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